The lignocellulytic enzymes including a-amylase (EC 3.2.1.1), lignin peroxidase (EC 1.11.1.14), laccase (EC 1.10.3.2), xylanase (EC 3.2.1.8), ${\beta}$-xylosidase (EC 3.2.1.37), ${\beta}$-glucosidase (EC 3.2.1.21) and cellulase (EC 3.2.1.4) were extracted from spent mushroom compost (SMC) of Pleurotus eryngii. Different extraction buffers and conditions were tested for optimal recovery of the enzymes. The optimum extraction was shaking incubation (200 rpm) for 2 h at $4^{\circ}C$. ${\alpha}$-Amylase was extracted with the productivity range from 1.20 to 1.6 Unit/SMC g. Cellulase was recovered with the productivity range from 2.10 to 2.80 U/gf. ${\beta}$-glucosidase and ${\beta}$-xylosidase productivities showed lowest recovery producing 0.1 U/g and 0.02 U/g, respectively. The P. eryngii SMCs collected from three different mushroom farms showed different recovery on laccase and xylanse, cellulase. Furthermore, the water extracted SMC was compared to commercial enzymes for its industrial application in decolorization and cellulase activity.
Kim, Eun-Mi;Lee, Ju-Seon;Choi, Hye-Young;Choi, Hwa-Kyung;Chung, Hee-Sun
YAKHAK HOEJI
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v.52
no.6
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pp.419-425
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2008
A qualitative and quantitative analytical method was developed for detection of methamphetamine (MA) and its main metabolite amphetamine (AM) in oral fluid. Oral fluids of eleven drug abusers were provided by Police, specimens were collected by stimulation with a cotton swab treated with 20 mg of citric acid ($Salivette^{(R)}$; Sarstedt, USA). As the preliminary test, oral fluid samples were screened for amphetamines by Fluorescence Polarization Immunoassay (TDxFLx, Abbott Co.). Extraction for MA was performed using solid-phase extraction (SPE) by $RapidTrace^{TM}$ (Zymark, USA) with mixed mode cation exchange cartridge, CLEAN $SCREEN^{(R)}$ (130 mg/3 ml, UCT) after dilution with phosphate buffer. Samples were evaporated and derivatized by pentafluoropropionic acid anhydride (PFPA). Quantitation of MA and AM was performed by gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) using selective ion monitoring (SIM), the quantitation ions were m/z 204 (MA), 208 (MA-$D_5$), 190 (AM) and 194 (AM-$D_5$). The selectivity, linearity of calibration, limit of detection (LOD) and quantification (LOQ) within- and between day precision, accuracy and recoveries were examined as parts of the method validation. All oral fluid samples gave positive results to immunoassay for MA (cut-off level, 50 ng/ml as d-amphetamine). Concentrations of MA and AM by GC-MS in eleven samples were ranged 104.2${\sim}$4603.3 ng/ml and 32.4${\sim}$268.6 ng/ml, respectively. Extracted calibration curves of MA and AM were linear over the two concentration range of 1${\sim}$100 and 50${\sim}$1000 ng/ml with correlation coefficient of above 0.999. LOQ of MA and AM was 1 and 3 ng/ml, respectively. The intraand inter-day run precisions (CV) for MA and AM were less than 10%, and the accuracies (bias) for MA and AM were also less than 10% at the two different concentrations 5 and 100 ng/ml at low calibration range, 50 and 1000 ng/ml at high calibration range. The absolute recoveries of MA and AM at low and high calibration ranges were more than 82% and 75%, respectively. In this study the qualitative and quantitative analytical method of MA in oral fluid was established. Oral fluid testing may detect drug use in past hours because of its shorter detection window than urine, and be useful in post-accident situations. So oral fluids will be most useful for testing drug abuse in the driving under the influence of drug (DUID) as the alternative specimens of urine.
Recovery of ${\alpha}$-amylase (EC 3.2.1.1), lignin peroxidase (EC 1.11.1.14), laccase (EC 1.10.3.2), xylanase (EC 3.2.1.8), ${\beta}$-xylosidase (EC 3.2.1.37), ${\beta}$-glucosidase (EC 3.2.1.21) and cellulase (EC 3.2.1.4) from spent mushroom composts (SMCs) of Pleurotus cornucopiae, Pleurotus ostreatus, Pleurotus eryngii, Hericium erinaceum, Lyophyllum ulmarium, Agrocybe cylindracea, Lentinus lepideus, and Flammulina velvtipes were investigated using different extraction buffers. The maximum recovery of the enzymes was mostly detected in SMC extracts with tap water and 0.25% Triton X-100 by shaking incubation (200 rpm) for 2 h at $4^{\circ}C$. The xylanase (152 U/g) and laccase (8.1 U/g) activities were the highest in SMC extracts from F. velvtipes and P. eryngii. In addition, high enzymatic activities of ${\alpha}$-amylase (3.6 U/g) and cellulase (3.4 U/g) was detected in SMC extract of A. cylindracea. Futhermore, cellulase and laccase activities of SMCE from P. eryngii were compared to commercial enzymes.
Kim, Myoung-Sug;Hwang, Eun-A;Huh, Min-Do;Jeong, Hyun-Do
Journal of fish pathology
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v.12
no.1
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pp.24-31
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1999
Optimization and standardization of solid phase enzyme immunoassay were done for the diagnosis of edwardsiellosis in fish. The analyzed degree of immobilized antibody on surface of solid phase with peroxidase saturation method showed the optimized result by using partially purified $50{\mu}g/ml$ of rabbit anti-E. tarda Edk-2 antibody in sodium bicarbonate buffer for overnight incubation to cover the surface of polystyrene beads. Optimized immunoreaction was observed in the treatment of $50{\mu}g/ml$ of biotin conjugated antibody followed extravidin-peroxidase diluted 1 : 2,000 in PBS. The detectable concentrations of the this method were $1{\times}10^5$ cells/ml and $1{\times}10^5$ cells/ml expressed as the source of antigen amount for EDTA extraction and heat extraction, respectively. High cross-reaction of solid phase ELISA with the prepared rabbit and-E. tarda Edk-2 was observed against E. tarda strains isolated from flounder suffering from edwardsiellosis in aquatic farms of Korea. It suggested that the potential of this solid phase of ELISA technique is very powerful for the application to different strains of E. tarda isolated in farms of many different areas.
A specific analytical method able to identify and quantify traces of six glucocorticoids residues in eggs were developed. The extraction and clean-up parameters for simultaneous analysis were evaluated and HPLC and spectrometric conditions were also established. For determination of glucocorticoids, 5 g of egg was transferred into a test tube, adjusted pH 5.2 with acetate buffer and was $\beta$-glucuronidase/arylsulfatase from Helix pomatia added. The mixture was centrifuged and supernatant was extracted twice with 20 mL n-hexane. The extraction was performed with HLB cartridge using methanol, followed by clean-up with silica cartridge using methanol/ethyl acetate (4/6, v/v). The analytes were determined by HPLC/ESI-MS/MS operating in the negative ion mode. Validation studies with fortified egg samples for established method were performed. The result of method validation gave good efficiency, linearity, accuracy and precision. The correlation coefficients ($r^2$) of the calibration curves appeared to be higher than 0.99 in egg, indicating excellent linearity. LOD was ranged 0.09 to $0.17{\mu}g/kg$, and recoveries for most compounds were in the range of 55.7-69.8%. This method can be used to determine ${\mu}g/kg$ levels of glucocorticoids in eggs.
A rapid, user-friendly and simple immune-chromatographic dipstick kit named 'rapid immune-gold strip' (RIGS) kit was developed in a novel single strip format to detect on-site detection of Tomato spotted wilt virus (TSWV). Immunoglobulin G (IgG) from polyclonal antisera raised in rabbits against TSWV was purified through protein-A affinity chromatography and then the purified TSWV-IgG was conjugated to colloidal gold nano-particles which served as a test line on nitrocellulose membrane. Protein A that non-specifically binds to TSWV antibody was used as a control line on the same strip. The diagnosis process with the TSWV-RIGS involves simply grinding the suspect plant sample in a bag that contains the extraction buffer and inserting the strip the bag. Results can be seen in 2-5 minutes. The flow of the complexes of gold particles coated with TSWV-IgG and a crude sap from TSWV-infected pepper, tobacco and tomato plants resulted in intensive color formed on the test lines proportional to the concentrations of TSWV. The RIGS-TSWV kit did not show any cross-reactions against other tomato-infecting viruses unrelated to TSWV. These results indicate that the TSWV-RIGS kit is highly sensitive and is not required for laboratory training and experience prior to testing. The TSWV-RIGS kit is suitable for on-site detection of suspect TSWV-infected plants as well as for laboratory diagnosis.
Joe Kih Soo;Kim Tae Hyun;Jeon Young Shin;Jee Kwsng Yong;Kim Won Ho
Journal of Nuclear Fuel Cycle and Waste Technology(JNFCWT)
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v.3
no.1
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pp.1-7
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2005
Anion exchange chromatography and HDEHP extraction chromatography using DTPA-lactic acid as an eluent were applied in series for the separation of $^{241}$Am and $^{244}$Cm in radwaste samples. The separated elements were determined by electrodeposition at the sodium hydrogen sulfate-sodium sulfate buffer solution followed by alpha-spectrometry. The recovery yields of $^{241}$Am and $^{244}$Cm were 85.2$\pm$$15.3\%$, respectively, from the synthetic solution of spent nuclear fuel sample. The amounts of 241Am and 2440m determined in radwaste sample solutions of condensate bottoms were at the range of 1.5-1.9 Bq/g and -1.7 Bq/g, respectively.
Five electrophoretic bands of crude enzyme extracted from rice leaves were found to possess both chitinase and ${\beta}-1,3-glucanase$ activities. These $chitinase/{\beta}-1,3-glucanase$ were resolved into acidic and basic fractions of protein by DEAE-cellulose and chitin affinity column chromatography. The optimal pH and temperature for ${\beta}-1,3-glucanase$ activity of two fractions were in the same extent as pH 5 and $60^{\circ}C$, whereas those for chitinase activity differed from one another; pH 3 and $60^{\circ}C$ for the acidic and pH 4 and $50^{\circ}C$ for the basic fraction, respectively. In addition, lysozyme activity was found in both fractions.
This study aimed to develop analytical method for 8-isoprostanes as biomarkers for oxidative stress with LC/MS/MS technique and to apply the method for human urine samples. Analyzed compounds for urinary oxidative stress markers were 7 stereo-isomers of prostaglandins and the internal standard (iso-$PGF_{2{\alpha}}-d_4$) was used to adjust the recovery rate. The method for determining urinary iso-$PGF_{2{\alpha}}$ consisted of solid phase extraction and LC/MS/MS detection. Separation of isomers of prostaglandins completed by porous graphitic carbon column and buffer solution. Detection limits for urinary markers of oxidative stress, iso-$PGF_{2{\alpha}}$ with LC/MS/MS were 0.01 ng/ml by S/N ratio 3 and 0.028 ng/ml by calculated as to FDA method. The recovery (92.8~101.9%) and precision (8.8~20.7%) of analysis were feasible for detecting iso-$PGF_{2{\alpha}}$ in real human urine samples. We detected 4 isomers of prostaglandins in human urine samples. Mean (standard deviation) of urinary iso-$PGF_{2{\alpha}}$ concentration were 0.231 (0.117) ng/mg creatinine for smoking group and 0.154 (0.082) ng/mg creatinine for non-smoking group.
Kim, Sung-Chul;Yang, Jae-E.;Ok, Yong-Sik;Jung, Doug-Young;Carlson, Kenneth
Korean Journal of Soil Science and Fertilizer
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v.45
no.1
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pp.43-50
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2012
Two typical animal waste management practices, composting and stockpiling, were evaluated for their effect on the degradation of three veterinary antibiotics (VAs), chlortetracycline (CTC), tylosin (TYL), and monensin (MNS). The VAs were applied to horse manure plots subject to composting or stockpiling, and core samples were collected over a period of time. Selected buffer solutions were used to extract the VAs and analysis for concentration was conducted with solid phase extraction (SPE) followed by high performance liquid chromatography tandem mass spectrometry (HPLC/MS/MS) technique. The VAs demonstrated rapid dissipation within ten days followed by a gradual decrease in concentration until the end of the experimental period (141 days). All three VAs degraded more rapidly in the composting samples than in the stockpiling samples, particularly between 20 and 60 days of the observation period. Degradation of the three VAs generally followed a first-order kinetic model, and a fitted model with a calculated rate constant was determined for each treatment. TYL in composting showed the fastest degradation, with a calculated rate constant of $0.91day^{-1}$; the slowest degradation was exhibited by MNS in stockpiling, with rate constant of $0.17day^{-1}$. Calculated correlation coefficients ranged from 0.89 to 0.96, indicating a strong correlation between measured concentrations and fitted values in this study. Although concentration of TYL in composting treatment showed below detection limit during the test period, this study suggests that composting can reduce animal waste contaminants prior to field application as fertilizer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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