Sprague-Dawley male rats (150 g) were chronically treated with 5 v/v % ethanol admixed with nutritionally complete liquid diet and fed ad libitum for 3 weeks. Controls were pair fed with the isocaloric sucrose liquid diet. One half of each group was exposed to cold stress at $4^{\circ}C$ either for 24 h (for determination of mRNA by in situ hybridization) or for 48 h (for determination of enzyme activity). Chronic ethanol treatment (ethanol) did not affect tyrosine hydroxylase (TH) mRNA level in locus coeruleus (LC) of brain and adrenal medulla (AM) compared to controls. Cold stress showed strong increase of TH mRNA level in LC and AM compared to controls. Pretreated ethanol reduced the increased TH mRNA level by cold stress in LC and AM. Ethanol did not affect TH activity in LC and adrenal glands (adrenals). Cold stress increased TH activity in LC but not in adrenals. Pretreated ethanol did not reduce the increased TH activity by cold stress in LC but this result was not shown in adrenals. It is suggested that ethanol does not affect the message level and enzyme protein level for TH in LC and AM in normal rat. It is also hypothesized that pretreated ethanol reduces the magnitude of acute cold stress response, that is induction of TH mRNA in LC and AM, and does not reduce the increased TH enzyme protein that is also acute cold stress response in LC.
Ethanol often accumulates during the process of wine fermentation, and mitophagy has critical role in ethanol output. However, the relationship between mitophagy and ethanol stress is still unclear. In this study, the expression of ATG11 and ATG32 genes exposed to ethanol stress was accessed by real-time quantitative reverse transcription polymerase chain reaction (qRT-PCR). The result indicated that ethanol stress induced expression of the ATG11 and ATG32 genes. The colony sizes and the alcohol yield of atg11 and atg32 were also smaller and lower than those of wild type strain under ethanol whereas the mortality of mutants is higher. Furthermore, compared with wild type, the membrane integrity and the mitochondrial membrane potential of atg11 and atg32 exhibited greater damage following ethanol stress. In addition, a greater proportion of mutant cells were arrested at the G1/G0 cell cycle. There was more aggregation of peroxide hydrogen (H2O2) and superoxide anion (O2•-) in mutants. These changes in H2O2 and O2•- in yeasts were altered by reductants or inhibitors of scavenging enzyme by means of regulating the expression of ATG11 and ATG32 genes. Inhibitors of the mitochondrial electron transport chain (mtETC) also increased production of H2O2 and O2•- by enhancing expression of the ATG11 and ATG32 genes. Further results showed that activator or inhibitor of autophagy also activated or inhibited mitophagy by altering production of H2O2 and O2•. Therefore, ethanol stress induces mitophagy which improves yeast the tolerance to ethanol and the level of mitophagy during ethanol stress is regulated by ROS derived from mtETC.
Sprague-Dawley male rats (150 g) were chronically treated with 5 v/v % ethanol admixed with nutritionally complete liquid diet and fed ad libitum for 3 weeks. One half of each group was exposed to cold stress at 4 ^{\circ}C either for 24 h (for determination of mRNA by in situ hybridization) or for 48 h (for determination of enzyme activity). Chronic ethanol treatment (ethanol) did not affect tyrosine hydroxylase(TH) mRNA level in locus coeruleus(LC) of brain and adrenal medulla(AM) compared to controls. Cold stress showed strong increase of TH mRNA level in LC and AM compared to controls. Pretreated ethanol reduced the increased TH mRNA level by cold stress in LC and AM. Ethanol did not affect TH activity in LC and adenal glands(adrenals). Cold stress increased TH activity in LC but not in adrenals. Pretreated ethanol did not reduce the increased TH activity by cold stress in LC but this result was not shown in adrenals. Phenylethanolamine-N-methyltransferase(PNMT) activity in $C_{1}$$C_{2}$ and adrenals increased only in ethanol treated group. THese results suggest that ethanol does not affect TH mRNA level and activity in LC and adrenals, but increases PNMT activity in $C_{1}$$C_{2}$ and adrenals in normal rat. It is also suggested that pretreated ethanol reduces the magnitude of cold stress response, that is induction of TH mRNA in LC and AM, and does not reduce the protein activation of TH that is also cold stress response in LC.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.28
no.4
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pp.907-911
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1999
To evaluate the effect of defatted sesame flour(DSF) on the oxidative stress of ethanol feeding in rats, Wistar male rats were divided into 4 groups of control, ethanol, DSF and DSF ethanol. Each group was sacrificed after feeding for 4 weeks and was examined by measuring the formation of 2 thiobarbituric acid reactive substance(TBARS), total cholesterol(TC) in serum, redox glutathione S transferase(GST) enzyme activity and the contents of glutathione(GSH) in the liver. The formation of TBARS in the liver after ethanol feeding was significantly increased comparing to the control, but the levels were significantly decreased by the DSF as compared to the ethanol feeding group(p<0.05). When compared to fed control diet, we found that serum TC levels were significantly lower in the DSF fed group than control group (p<0.05). The activity of hepatic GST was significantly increased by DSF as compared to the control and was decreased by ethanol feeding. On the other hand, the hepatic contents of GSH were unaffected by DSF feeding. Our findings suggest that feeding DSF may inhibit ethanol induced oxidative stress may be due to the stimulation of antioxidative activity by sesaminol glucosides in DSF.
BACKGROUND/OBJECTIVE: The aim of this study was to examine the effect of high dietary methionine (Met) consumption on plasma and hepatic oxidative stress and dyslipidemia in chronic ethanol fed rats. MATERIALS/METHODS: Male Wistar rats were fed control or ethanol-containing liquid diets supplemented without (E group) or with DL-Met at 0.6% (EM1 group) or 0.8% (EM2 group) for five weeks. Plasma aminothiols, lipids, malondialdehyde (MDA), alanine aminotransferase (ALT), and aspartate aminotransferase were measured. Hepatic folate, S-adenosylmethionine (SAM), and S-adenosylhomocysteine (SAH) were measured. RESULTS: DL-Met supplementation was found to increase plasma levels of homocysteine (Hcy), triglyceride (TG), total cholesterol (TC), and MDA compared to rats fed ethanol alone and decrease plasma ALT. However, DL-Met supplementation did not significantly change plasma levels of HDL-cholesterol, cysteine, cysteinylglycine, and glutathione. In addition, DL-Met supplementation increased hepatic levels of folate, SAM, SAH, and SAM:SAH ratio. Our data showed that DL-Met supplementation can increase plasma oxidative stress and atherogenic effects by elevating plasma Hcy, TG, and TC in ethanol-fed rats. CONCLUSION: The present results demonstrate that Met supplementation increases plasma oxidative stress and atherogenic effects by inducing dyslipidemia and hyperhomocysteinemia in ethanol-fed rats.
Park Seong-Uk;Kim Jong-Bong;Heo Yong;Lee Sun-Dong;Kim Hee-Jung;Lee In-Sun;Han Jung-Ho;Park Yeong-Chul
Journal of Society of Preventive Korean Medicine
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v.8
no.1
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pp.109-114
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2004
Oxidative stress is one of the major reasons for brain aging and neurodegeneration. Ethanol and acetaldehyde increase the levle of oxidative stress in brain tissue resulting in aging and neurodegeneration related alcoholic dementia. Ginkgo biloba extracts are used as therapeutic and preventive agent for dementia. Here, it was investigated whether Ginkgo biloba extract show the effectiveness against ethanol- and acetaldehyde-induced oxidative stress in rat brain. Ethanol and acetaldehyde increased the level of oxidative stress by about 35% to 50% in rat brain tissue. However, Ginkgo biloba extracts reduced the level of ethanol- and acetaldehyde-induced oxidative stress. This result might reveal the link between the effectiveness of Ginkgo biloba extracts on oxidative stress and its effectiveness on alcoholic dementia.
We compared the preventive capacity of high intakes of vitamin C (VC) and vitamin E (VE) on oxidative stress and liver toxicity in rats fed a low-fat ethanol diet. Thirty-two Wistar rats received the low fat (10% of total calories) Lieber-DeCarli liquid diet as follows: either ethanol alone (Alc group, 36% of total calories) or ethanol in combination with VC (Alc + VC group, 40 mg VC/100 g body weight) or VE (Alc + VE group, 0.8 mg VE/100 g body weight). Control rats were pair-fed a liquid diet with the Alc group. Ethanol administration induced a modest increase in alanine aminotransferase (ALT), aspartate aminotransferase (AST), conjugated dienes (CD), and triglycerides but decreased total radical-trapping antioxidant potential (TRAP) in plasma. VE supplementation to alcohol-fed rats restored the plasma levels of AST, CD, and TRAP to control levels. However, VC supplementation did not significantly influence plasma ALT, AST, or CD. In addition, a significant increase in plasma aminothiols such as homocysteine and cysteine was observed in the Alc group, but cysteinylglycine and glutathione (GSH) did not change by ethanol feeding. Supplementing alcohol-fed rats with VC increased plasma GSH and hepatic S-adenosylmethionine, but plasma levels of aminothiols, except GSH, were not influenced by either VC or VE supplementation in ethanol-fed rats. These results indicate that a low-fat ethanol diet induces oxidative stress and consequent liver toxicity similar to a high-fat ethanol diet and that VE supplementation has a protective effect on ethanol-induced oxidative stress and liver toxicity.
Folate deficiency and hyperhomocysteinemia are found in most patients with alcoholic liver disease. Oxidative stress is one of the most important mechanisms contributing to homocysteine (Hcy)-induced tissue injury. However it has not been examined whether exogenous administration of folic acid attenuates oxidative stress and hepatic toxicity. The aim of this study was to investigate the in vivo effect of folic acid supplementation on oxidative stress and hepatic toxicity induced by chronic ethanol consumption. Wistar rats (n = 32) were divided into four groups and fed 0%, 12%, 36% ethanol, or 36% ethanol plus folic acid (10 mg folic acid/L) diets. After 5 weeks, chronic consumption of the 36% ethanol diet significantly increased plasma alanine transaminase (ALT) (P < 0.05) and aspartate transaminase (AST) (P < 0.05), triglycerides (TG) (P < 0.05), Hcy (P < 0.001), and low density lipoprotein conjugated dienes (CD) (P < 0.05) but decreased total radical-trapping antioxidant potential (TRAP) (P < 0.001). These changes were prevented partially by folic acid supplementation. The 12% ethanol diet had no apparent effect on most parameters. Plasma Hcy concentration was well correlated with plasma ALT (r = $0.612^{**}$), AST (r = $0.652^*$), CD (r = $0.495^*$), and TRAP (r = $-0.486^*$). The results indicate that moderately elevated Hcy is associated with increased oxidative stress and liver injury in alcohol-fed rats, and suggests that folic acid supplementation appears to attenuate hepatic toxicity induced by chronic ethanol consumption possibly by decreasing oxidative stress.
Zhang, Ying;Ma, Ruiqiang;Zhao, Zhonglin;Zhou, Zhengfu;Lu, Wei;Zhang, Wei;Chen, Ming
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.20
no.7
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pp.1156-1162
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2010
During ethanol fermentation, bacterial strains may encounter various stresses, such as ethanol and acid shock, which adversely affect cell viability and the production of ethanol. Therefore, ethanologenic strains that tolerate abiotic stresses are highly desirable. Bacteria of the genus Deinococcus are extremely resistant to ionizing radiation, ultraviolet light, and desiccation, and therefore constitute an important pool of extreme resistance genes. The irrE gene encodes a general switch responsible for the extreme radioresistance of D. radiodurans. Here, we present evidence that IrrE, acting as a global regulator, confers high stress tolerance to a Zymomonas mobilis strain. Expression of the gene protected Z. mobilis cells against ethanol, acid, osmotic, and thermal shocks. It also markedly improved cell viability, the expression levels and enzyme activities of pyruvate decarboxylase and alcohol dehydrogenase, and the production of ethanol under both ethanol and acid stresses. These data suggest that irrE is a potentially promising gene for improving the abiotic stress tolerance of ethanologenic bacterial strains.
Ethanol accumulation inhibited the growth of Saccharomyces cerevisiae during wine fermentation. Autophagy and the release of reactive oxygen species (ROS) were also induced under ethanol stress. However, the relation between autophagy and ethanol stress was still unclear. In this study, expression of the autophagy genes ATG1 and ATG8 and the production of ROS under ethanol treatment in yeast were measured. The results showed that ethanol stress very significantly induced expression of the ATG1 and ATG8 genes and the production of hydrogen peroxide ($H_2O_2$) and superoxide anion (${O_2}^{{\cdot}_-}$). Moreover, the atg1 and atg8 mutants aggregated more $H_2O_2$ and ${O_2}^{{\cdot}_-}$ than the wild-type yeast. In addition, inhibitors of the ROS scavenging enzyme induced expression of the ATG1 and ATG8 genes by increasing the levels of $H_2O_2$ and ${O_2}^{{\cdot}_-}$. In contrast, glutathione (GSH) and N-acetylcystine (NAC) decreased ATG1 and ATG8 expression by reducing $H_2O_2$ and ${O_2}^{{\cdot}_-}$ production. Rapamycin and 3-methyladenine also caused an obvious change in autophagy levels and simultaneously altered the release of $H_2O_2$ and ${O_2}^{{\cdot}_-}$. Finally, inhibitors of the mitochondrial electron transport chain (mtETC) increased the production of $H_2O_2$ and ${O_2}^{{\cdot}_-}$ and also promoted expression levels of the ATG1 and ATG8 genes. In conclusion, ethanol stress induced autophagy which was regulated by $H_2O_2$ and ${O_2}^{{\cdot}_-}$ derived from mtETC, and in turn, the autophagy contributed to the elimination $H_2O_2$ and ${O_2}^{{\cdot}_-}$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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