Kim, Sung-Hoon;Kim, Keun-Soo;Lee, Jin-Ha;Chung, Eul-Kwon;Park, Young-Shik;Park, You-Jeong;Lee, Hyeon-Yong
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.25
no.4
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pp.391-395
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1997
It was proved that both ethanol extracts from Mori Folium from Kangwon do and silk worm had higher inhibition acitivity on $\alpha$-glucohydrolase than the water extracts. In adding above 8.5 (mg/L) of silkworm extracts, the inhibition rate on $\alpha$-1,4 glucosidase was saturated while the inhibition rate was continuously increased in adding the extracts from Moli Folium. It was also found that the diethyl ether fraction showed much better inhibition activity than water fraction from ethanol extracts, yielding ca. 85% of inhibition rate for the extract of Moli Folium, compared to 91% for a commercially available hypoglycemic drug, Chloropropamide. In separating the diethyl ether fractions by Consecutive Sephadex gel filtration and Thin layer chromatography, three and four active spots were obtained from Moli Folium and silkworm, respectively. It is interesting that the similar Rf spots from both species among several spots in TLC have the highest inhibition acitivity on a target enzyme, which can imply that the active substances from both species are same or similar molecular weight and structure. Glucose-lowering activities of both speciese were also examined in vivo, showing that the fraction from Moli Folium had better activity than that from silkworm, and its activity was similar to that of a commercial drug.
Alternariol monomethyl ether (AME), a dibenzopyrone derivative, was isolated from Alternaria brassicae along with altertoxin II (ATX-II). The compounds were tested for the inhibitory activity of monoamine oxidase (MAO), which catalyzes neurotransmitting monoamines. AME was found to be a highly potent and selective inhibitor of human MAO-A with an $IC_{50}$ value of $1.71{\mu}M$; however, it was found to be ineffective for MAO-B inhibition. ATX-II was not effective for the inhibition of either MAO-A or MAO-B. The inhibition of MAO-A using AME was apparently instantaneous. MAO-A activity was almost completely recovered after the dilution of the inhibited enzyme with an excess amount of AME, suggesting AME is a reversible inhibitor. AME showed mixed inhibition for MAO-A in Lineweaver-Burk plots with a $K_i$ value of $0.34{\mu}M$. The findings of this study suggest that microbial metabolites and dibenzopyrone could be potent MAO inhibitors. In addition, AME could be a useful lead compound for developing reversible MAO-A inhibitors to treat depression, Parkinson's disease, and Alzheimer's disease.
An, Bong-Jeon;Choi, Hee-Jin;Son, Jun-Ho;Woo, Hee-Seob;Han, Ho-Suk;Park, Jung-Hye;Son, Gyu-Mok;Choi, Cheong
Journal of the Korean Society of Food Culture
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v.18
no.5
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pp.443-456
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2003
The lyophilization of the solution extracted from 60 percent of acetone applied to persimmon leaves, the compounding process in accordance with the solution's concentration, and the gel filteration through Sephadex G-50 of biologically activated substances obstructing enzyme activity, such as tyrosinase, xanthine oxidase, and angiotesin converting enzyme (ACE) led to the assumption that polyphenol was the compound serving as biologically activated substances obstructing enzyme activity. Xanthine oxidase involved in pruine metabolism oxidizes hypoxanthine to xanthine and xanthine to uric acid. In the continuous study for natural compound, nine flavan-3-ols have been isolated from the persimmon leaves. The structures of (+)-catechin, (+)-gallocatechin, procyanidin B-1, pyrocyanidin C-1, prodelphinidin B-3, gallocatechin-$(4{\alpha}{\rightarrow}8)$-catechin, procyanidin B-7-3-O-gallate, procyanidin C-1-3'-3'-3'-O-trigallate and (-)-epigallocatechin-$(4{\alpha}{\rightarrow}8)$-epigallocatechin-$(4{\alpha}{\rightarrow}8)$-catechin were established by NMR and their inhibitory effect on xanthine oxidase activity was investigated. Procyanidin B-7-3-O-gallate, (-)-epigallocatechin-$(4{\alpha}{\rightarrow}8)$-epigallocatechin-$(4{\alpha}{\rightarrow}8)$-catechin and procyanidin C-1-3'-3'-3'-O-trigallate showed 94%, 90.69%, 80.90% inhibition at $100\;({\mu})M$ and inhibited on the angiotensin converting enzyme respectively. Procyanidin B-7-3-O-gallate and procyanidin C-1-3'-3'-3'-O-trigallate showed 66%, 63% inhibition at $100\;({\mu})M$ and inhibited on the xanthine oxidase competitively. Procyanidin C-1-3'-3'-3'-O-trigallate showed 70% inhibition at $100\;({\mu})M$ and inhibited on the tyrosinase competitively.
Kim, Young-Man;Lee, Jung-Chi;Chung, Pil-Keun;Park, Yong-Jin;Yang, Han-Chul
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.11
no.3
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pp.205-210
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1983
Extracellular $\beta$-galactosidase was prepared from a culture of Lactobacillus sporogenes, a spore-forming lactic acid bacterium. The enzyme functioned optimally at pH 6.8 and at 6$0^{\circ}C$ o-nitrophenyl-$\beta$-D-galactopyranoside (ONPG) in 0.05M sodium phosphate buffer. The activation energy of the enzymatic hydrolysis of ONPG was about 16,000 cal/mole below $50^{\circ}C$ and 11,300 cal/mole above the temperature. It was fairly stable over a pH range from 4.0 to 8.0 losing only less than 30% of its activity after hearting at 6$0^{\circ}C$ and pH 6.8 for 3 hours. Metal ions showed no significant effect on the enzyme activity, whereas L-cysteine exerted a slight stimulatory effect at the concentration of 10mM. The km values were 1.48mM for ONPG and 64.5mM for lactose. Hydrolysis of ONPG by the enzyme was product-inhibited by galactose (Ki=13.3mM, competitive inhibition) and by glucose(Ki= 11.4mM, uncompetitive type). The enzyme activity was also noncompetitively inhibited in the presence of lactose (Ki= 17.8mM).
The effects of organophosphorus were examined with inhibition of the cholinesterase activity on tile chicken plasma in vivo and in vitro. The cholinesterase activity in chicken plasma determined by tile Ellman mettled was $23{\mu}mol$/min/g protein. After oral administration with 0.2 and 0.5 times of organophosphorus terbufos $LD_{50}$(1.81 mg/kg), cholinesterase activity were inhibited to 36% and 96% of control after 15min in vivo, respectively. After oral administration with 0.2 and 0.5 times of terbufos $LD_{50}$(1.81 mg/kg), then the recovery of cholinesterase activity followed to 99% and 56% of control after 11hr, respectively. Ki of phosphorodithioate and phosphorothioate with P=S was $74{\sim}322\;mole^{-1}min^{-1}$ in vitro. Ki of phosphate and phosphorothiolate with P=O was $13898{\sim}79610\;mole^{-1}min^{-1}$. Toxicology of organophosphorus with P=S was higher than that of organophosphorus with P=S by oxidation. $pI_{50}$ of phosphorodithioate and phosphorothioate with P=S was $21{\sim}102$ mg/L. $pI_{50}$ of phosphate and phosphorothiolate with P=O was $0.519{\sim}0.071$ mg/L. Enzyme-Inhibition method with cholinesterase was the rapid bioassay method to detect the organohpophorus pesticides in vitro.
The bimolecular inhibition rate constants of carbofuran and N-dimethylphosphinothioyl carbofuran(PSC) to acetylcholinesterase(AChE) were $7.7{\times}10^{5}\;M^{-1}{\cdot}min^{-1}$ and $1.2{\times}10^{3}\;M^{-1}{\cdot}min^{-1}$, respectively. These results showed that PSC required a bioactivation process for its toxic action because it didn't inhibit the target enzyme effectively. The potency of PSC as an inhibitor of AChE increased when PSC and AChE were incubated with microsomes fortified with NADPH compared with microsome alone. Piperonyl butoxide(PBO) addition to these coupled systems greatly reduced the inhibition of the target enzyme by blocking the bioactivation process. In vivo inhibition study of mouse brain AChE, $I_{50}$ value for AChE was 28 mg/kg for PSC and the value increased to 57 mg/kg when PBO was pretreated. This result showed that cytochrome $P_{450}$ would also play a role in the bioactivation process of PSC in vivo. And conversioin of carbofuran from PSC was 55 % in a chemical oxidation system using meta-chloroperoxybenzoic acid. The oxidative activation of PSC to carbofuran was shown to be essential for showing its toxicological action and cytochrome $P_{450}$ was identified as an important enzyme which participated in this process.
The biological and antioxidative activity of Phellinus linteus extracts from gradient ethanol concentrations were examined. The phenol contents of Phellinus linteus(28.36 mg/100 ml) was higher in the 80% ethanol extracts than other extracts. Electron donation ability on DPPH of 80% and 90% ethanol extracts(94.12% and 94.14% inhibition) from Phellinus linteus were the highest. The antioxidant activity against water soluble materials of Phellinus linteus ethanol extracts showed totally high inhibition rates above 80%, especially in 80% and 90% ethanol extracts, they showed each 94.12% inhibition and 94.14% inhibition. The inhibition against ABTS [2,2azinobis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)] radical decolorization of 80% ethanol extracts was the highest as 96.2%. The antioxidant protection factor (PF) against lipid soluble materials was the highest in 80% ethanol extracts as 1.69 PF, and TBARS of 80% and 90% ethanol extracts were lower as $1.15{\times}100{\mu}M$ and $1.21{\times}100{\mu}M$ than control($1.95{\times}100{\mu}M$. Angiotensin converting enzyme and xanthine oxidase inhibitory activity of 80% ethanol extracts from Phellinus linteus was higher as 95.10%, 85.07% than other extracts. The results to analized of simple phenolic compounds of Phellinus linteus ethanol extrcts with HPLC showed that they were procatecuic acid, caffeic acid and coumaric acid.
Salicylate is involved in the induction of pathogen-related proteins and plant defense response. The effects of salicylate on the activity isoperoxidase $A_3$ from tobacco callus (Nicotiana tabacum L.) and the protection against the enzyme inactivation by salicylate in the presence of $Fe^{2+}$ were examined. About 20% and 85% activity losses of peroxidase occurred at 0.48 mM and 0.6 mM salicylate, respectively, showing that isoperoxidase $A_3$ was inactivated by salicylate. The inactivation occurred depending on pH and showed noncompetitive inhibition mode. Moreover, inactivation of the enzyme by salicylate was completely protected in the presence of $Fe^{2+}$. Apoperoxidase without heme moiety was constructed and the effects of various metal ions on the recovery of enzyme activities were investigated. More than 80% of the activity was reconstituted by the addition of $Fe^{2+}$ or hemin. However, the enzyme activity was not recovered by $Cu^{2+},\;Zn^{2+},\;Co^{2+},\;or\;Mn^{2+}$.
Cigarette smoking is known to suppress both 1-methy14-phenyl-155,Ltetrahydropy-ridine (MPTP)-induced parkinsonism and idiopathic Parkinson's disease (PD). However, the precise mechanism underlying its protective action against PD is not clearly elucidated yet. In order to find possible clue on the mechanism of protective action of smoking, we investigated the inhibitory effect of cigarette smoke components on rat brain mitochondria1 monoamine oxidase B (MAO-B), responsible enzyme for the activation of MPTP to its toxic metabolitesr and identified the components having an inhibitory potency on this enzyme from cigarette smoke. Total 31 eligible constituents including nicotine were selected from cigarette smoke condensates via solvents partitioning and silica gel chromatographic separation, and inhibitory potencies of 19 components on MAO-B were determined. Hydroquinone and methylcatechol, the phenolic components, showed the strongest inhibitory potencies on MAO-B activity in the components tested. 3,4-Dihydroxybenzylamino, myosmine and indole in basic fracton, eugenol in phenolic fraction, and farnesol in neutral fraction also inhibited the enzyme activity dose-dependently. Among tobacco alkaloids tested only myosmine was effective for the inhibition of this enzyme. These results suggest that the decrease in MAO-B activity by such components derived from cigarette smoke seems to be related to the suppression of MPTP-induced neurotoxicity and to the less incidence of Parkinson's disease in smokers than in nonsmokers.
Ibraheem, Omodele;Adewale, Isaac Olusanjo;Afolayan, Adeyinka
BMB Reports
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v.38
no.5
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pp.584-590
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2005
Glucose 6-phosphate dehydrogenase (EC 1.1.1.49) was purified from Aspergillus aculeatus, a filamentous fungus previously isolated from infected tongue of a patient. The enzyme, apparently homogeneous, had a specific activity of $220\;units\;mg^{-1}$/, a molecular weight of $105,000{\pm}5,000$ Dal by gel filtration and subunit size of $52,000{\pm}1,100$ Dal by sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel electrophoresis. The substrate specificity was extremely strict, with glucose 6-phosphate (G6P) being oxidized by nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADP) only. At assay pH of 7.5, the enzyme had $K_m$ values of $6\;{\mu}m$ and $75\;{\mu}m$ for NADP and G6P respectively. The $k_{cat}$ was $83\;s^{-1}$. Steady-state kinetics at pH 7.5 produced converging linear Lineweaver-Burk plots as expected for ternary-complex mechanism. The patterns of product and dead-end inhibition suggested that the enzyme can bind NADP and G6P separately to form a binary complex, indicating a random-order mechanism. The enzyme was irreversibly inactivated by heat in a linear fashion, with G6P providing a degree of protection. Phosphoenolpyruvate (PEP), adenosinetriphosphate (ATP), and fructose 6-phosphate (F6P), in decreasing order, are effective inhibitors. Zinc and Cobalt ions were effective inhibitors although cobalt ion was more potent; the two divalent metals were competitive inhibitors with respect to G6P, with $K_i$ values of $6.6\;{\mu}m$ and $4.7\;{\mu}m$ respectively. It is proposed that inhibition by divalent metal ions, at low NADPH /NADP ratio, is another means of controlling pentosephosphate pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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