Activation of protein kinase C (PKC) is closely linked with endothelial dysfunction. However, the effect of $PKC{\beta}II$ on endothelial dysfunction has not been characterized in cultured endothelial cells. Here, using adenoviral $PKC{\beta}II$ gene transfer and pharmacological inhibitors, the role of $PKC{\beta}II$ on endothelial dysfucntion was investigated in cultured endothelial cells. Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) increased reactive oxygen species (ROS), p66shc phosphorylation, intracellular adhesion molecule-1, and monocyte adhesion, which were inhibited by $PKC{\beta}i$ (10 nM), a selective inhibitor of $PKC{\beta}II$. PMA increased the phosphorylation of CREB and manganese superoxide dismutase (MnSOD), which were also inhibited by $PKC{\beta}i$. Gene silencing of CREB inhibited PMA-induced MnSOD expression, suggesting that CREB plays a key role in MnSOD expression. Gene silencing of $PKC{\beta}II$ inhibited PMA-induced mitochondrial ROS, MnSOD, and ICAM-1 expression. In contrast, overexpression of $PKC{\beta}II$ using adenoviral $PKC{\beta}II$ increased mitochondrial ROS, MnSOD, ICAM-1, and p66shc phosphorylation in cultured endothelial cells. Finally, $PKC{\beta}II$-induced ICAM-1 expression was inhibited by Mito-TEMPO, a mitochondrial ROS scavenger, suggesting the involvement of mitochondrial ROS in PKC-induced vascular inflammation. Taken together, the results suggest that $PKC{\beta}II$ plays an important role in PMA-induced endothelial dysfunction, and that the inhibition of $PKC{\beta}II$-dependent p66shc signaling acts as a therapeutic target for vascular inflammatory diseases.
Changes in the Activities of several antioxidant enzymes in transformed human dermal microvascular endothelial Cells (HMEC-1) by infection with the obligate intracellular bacterium Orientia tsutsugamushi, the causative agent of scrub typhus, were investigated. The activities of glucose-6-phosphate dehydrogenase, catalase, and glutathione peroxidase were significantly decreased in HMEC-1 cells infected with Ο. tsutsugamushi. However, the level of superoxide dismutase increased slightly. Furthermore, Increased levels of intracellular peroxide was observed in HMEC-1 during infection. These results support the hypothesis that cells infected by this intracellular bacterium experience oxidant-mediated injury that may eventually contribute to cell death.
Choi, Jeong Kyu;Moon, Ki Myung;Jung, Seok Yun;Kim, Ji Yong;Choi, Sung Hyun;Kim, Da Yeon;Kang, Songhwa;Chu, Chong Woo;Kwon, Sang Mo
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.18
no.2
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pp.163-168
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2014
Endothelial progenitor cells (EPCs) are known to play an important role in the repair of damaged blood vessels. We used an endothelial progenitor cell colony-forming assay (EPC-CFA) to determine whether EPC numbers could be increased in healthy individuals through regular exercise training. The number of functional EPCs obtained from human peripheral blood-derived AC133 stem cells was measured after a 28-day regular exercise training program. The number of total endothelial progenitor cell colony-forming units (EPC-CFU) was significantly increased compared to that in the control group (p=0.02, n=5). In addition, we observed a significant decrease in homocysteine levels followed by an increase in the number of EPC-CFUs (p=0.04, n=5), indicating that the 28-day regular exercise training could increase the number of EPC colonies and decrease homocysteine levels. Moreover, an inverse correlation was observed between small-endothelial progenitor cell colony-forming units (small-EPC-CFUs) and plasma homocysteine levels in healthy men (r=-0.8125, p=0.047). We found that regular exercise training could increase the number of EPC-CFUs and decrease homocysteine levels, thus decreasing the cardiovascular disease risk in men.
In this study, we examined the effects of the methanolic extract(CL-ex) of Codonopsis lanceolata on the angiogenesis stimulated with basic fibroblast growth factor(bFGF) in vitro, using porcine pulmonary arterial endothelial cells(PPAECs). In addition, we investigated the endothelial functions involved in angiogenesis, such as proliferation, migration and secretion of matrix metalloproteinases(MMPs), using human umbilical vein endothelial cells(HUVECS). CL-ex inhibited FGF-induced sprout formation in vitro at concentrations of 0.1-100 ug/ml. Although CL-ex did not affect the proliferation of endothelial cells, CL-ex strongly inhibited the FGF-induced migration of HUVECS at concentrations of 0.1-1 ug/ml; the degree of inhibition of endothelial cells by C-ex was 49.4% at 0.1 ug/ml and 71.9 % at 1.0 ug/ml. Moreover, CL-ex inhibited the secretion of MMPs from HUVECS stimulated with FGF. Therefore, the inhibitory effect of CL-ex on angiogenesis in vitro could be explained by the inhibition of endothelial cell migration. From these results, we suggest that Codonopsis lanceolata is a useful herb for the development of therapeutics or preventive food factors for angiogenesis related diseases, such as tumors.
Dysfunction of endothelial cells is considered a major cause of vascular complications in diabetes. In the present study, we investigated the protective effect of Padina arborescens extract against high glucose-induced oxidative damage in human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). High-concentration of glucose (30 mM) treatment induced cytotoxicity whereas Padina arborescens extract protected the cells from high glucose-induced damage and significantly restored cell viability. In addition, lipid peroxidation, intracellular reactive oxygen species (ROS), and nitric oxide (NO) levels induced by high glucose treatment were effectively inhibited by treatment of Padina arborescens extract in a dose-dependent manner. High glucose treatment also induced the overexpressions of inducible nitric oxide synthase (iNOS), cyclooxygenase- 2 (COX-2) and NF-${\kappa}B$ proteins in HUVECs, but Padina arborescens extract treatment reduced the over-expressions of these proteins. These findings indicate the potential benefits of Padina arborescens extract as a valuable source in reducing the oxidative damage induced by high glucose.
We have reported that hypoxia stimulates EDRF(s) release from endothelial cells and the release may be augmented by previous hypoxia. As a mechanism, it was hypothesized that reoxygenation can stimulate EDRF(s) release from endothelial cells and we tested the hypothesis via bioassay experiment. In the bioassay experiment, rabbit aorta with endothelium was used as EDRF donor vessel and rabbit carotid artery without endothelium as a bioassay test ring. The test ring was contracted by prostaglandin $F_{2a}\;(3{\times}10^{-6}\;M)$ which was added to the solution perfusing through the aorta. Hypoxia was evoked by switching the solution aerated with 95% $O_2/5%\;CO_2$ mixed gas to one aerated with 95% $O_2/5%\;CO_2$ mixed gas. Hypoxia/reoxygenation were interexchanged at intervals of 2 minutes (intermittent hypoxia). In some experiments, endothelial cells were exposed to 10-minute hypoxia (continuous hypoxia) and then exposed to reoxygenation and intermittent hypoxia. In other experiments, the duration of reoxygenation was extended from 2 minutes to 5 minutes. When the donor aorta was exposed to intermittent hypoxia, hypoxia stimulated EDRF(s) release from endothelial cells and the hypoxia-induced EDRF(s) release was augmented by previous hypoxia/reoxygenation. When the donor aorta was exposed to continuous hypoxia, there was no increase of hypoxia-induced EDRF(s) release during hypoxia. But, after the donor aorta was exposed to reoxygenation, hypoxia-induced EDRF(s) release was markedly increased. When the donor aorta was pretreated with nitro-L-arginine $(10^{-5}$ M for 30 minutes), the initial hypoxia-induced EDRF(s) release was almost completely abolished, but the mechanism for EDRF(s) release by the reoxygenation and subsequent hypoxia still remained to be clarified. TEA also blocked incompletely hypoxia-induced and hypoxia/reoxygenation-induced EDRF(s) release. EDRF(s) release by repetitive hypoxia and reoxygenation was completely blocked by the combined treatment with nitro-L-arginine and TEA. Cytochrome P450 blocker, SKF-525A, inhibited the EDRF(s) release reversibly and endothelin antgonists, BQ 123 and BQ 788, had no effect on the release of endothelium-derived vasoactive factors. Superoxide dismutase (SOD) and catalase inhibited the EDRF(s) release from endothelial cells. From these data, it could be concluded that reoxygenation stimulates EDRF(s) release and hypoxia/reoxygenation can release not only NO but also another EDRF from endothelial cells by the production of oxygen free radicals.
Park, C.S.;Han, S.R.;Kim, S.I.;Cho, K.J.;Kim, W.S.
Journal of Animal Science and Technology
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v.47
no.5
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pp.711-720
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2005
In the corpus luteum, TNF$\alpha$ is known to induce functional and structural luteolysis. In addition, it acts as luteotropic agent during the initial and early stage of luteal development. In spite of its importance in corpus luteal development, there is still different opinions for the source cells of TNF$\alpha$ in the corpus luteum. One is the macrophages only, and the other is macrophages are the main source and endothelial cells are the minor source. In this experiment, using the porcine corpora lutea of pregnancy and ovulatory stages, hematoxylin-eosin stain, macrophage and TNF$\alpha$ immunohistochemistry were carried to reveal the sources of TNF$\alpha$. As a result, MAC 387-positive macrophages were present in all the stages of corpora lutea. In the mature corpora lutea of nonpregnant stages, the sites of MAC 387-positive macrophages and those of TNF$\alpha$- positive macrophages were coincided, and the sites of endothelial cells and those of TNF$\alpha$-positive endothelial cells were nearly coincided. But, in the mature CL of pregnant stage, mid- and advanced luteolytic stages of both nonpregnant and pregnant stages, the sites of MAC 387-positive macrophages and those of TNF$\alpha$-positive macrophages were coincided, but not in the endothelial cells. Accordingly, it can be concluded that macrophages are the main source of TNF$\alpha$ in the corpus luteum and endothelial cells are the minor source in the mature and mid-lytic stages, but, in the advanced luteolytic stage, macrophages are the only source of TNF$\alpha$.
Choi, Shinkyu;Na, Hye-Young;Kim, Ji Aee;Cho, Sung-Eun;Suh, Suk Hyo
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.17
no.3
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pp.181-187
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2013
Reactive oxygen species (ROS) are generated in various cells, including vascular smooth muscle and endothelial cells, and regulate ion channel functions. $K_{Ca}3.1$ plays an important role in endothelial functions. However, the effects of superoxide and hydrogen peroxide radicals on the expression of this ion channel in the endothelium remain unclear. In this study, we examined the effects of ROS donors on $K_{Ca}3.1$ expression and the $K^+$ current in primary cultured human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). The hydrogen peroxide donor, tert-butyl hydroperoxide (TBHP), upregulated $K_{Ca}3.1$ expression, while the superoxide donors, xanthine/xanthine oxidase mixture (X/XO) and lysophosphatidylcholine (LPC), downregulated its expression, in a concentration-dependent manner. These ROS donor effects were prevented by antioxidants or superoxide dismustase. Phosphorylated extracellular signal-regulated kinase (pERK) was upregulated by TBHP and downregulated by X/XO. In addition, repressor element-1-silencing transcription factor (REST) was downregulated by TBHP, and upregulated by X/XO. Furthermore, $K_{Ca}3.1$ current, which was activated by clamping cells with 1 ${\mu}M$$Ca^{2+}$ and applying the $K_{Ca}3.1$ activator 1-ethyl-2-benzimidazolinone, was further augmented by TBHP, and inhibited by X/XO. These effects were prevented by antioxidants. The results suggest that hydrogen peroxide increases $K_{Ca}3.1$ expression by upregulating pERK and downregulating REST, and augments the $K^+$ current. On the other hand, superoxide reduces $K_{Ca}3.1$ expression by downregulating pERK and upregulating REST, and inhibits the $K^+$ current. ROS thereby play a key role in both physiological and pathological processes in endothelial cells by regulating $K_{Ca}3.1$ and endothelial function.
Fibroblast growth factor-2 (FGF-2) is known to modulate numerous cellular functions in various cell types, including cell proliferation, differentiation, survival, adhesion, migration, and motility, and also in processes such as wound healing, angiogenesis, and vasculogenesis. FGF-2 regulates the expression of several molecules thought to mediate critical steps during angiogenesis. This study examines the mechanisms underlying FGF-2-induced cell migration, using human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). FGF-2 induced the nondirectional and directional migration of endothelial cells, which are inhibited by MMPs and plasmin inhibitors, and induced the secretion of matrix metalloproteinase-3 (MMP3) and MMP-9, but not MMP-l and MMP-2. FGF-2 also induced the secretion of the tissue inhibitor of metalloproteinase-l (TIMP-I), but not of TIMP- 2. Also, the pan-PKC inhibitor inhibited FGF-2-induced MMP-9 secretion. It is, therefore, suggested that FGF-2 induces the migration of cultured endothelial cells by means of increased MMPs and plasmin secretion. Furthermore, FGF-2 may increase MMP-9 secretion by activating the PKC pathway.
Cigarette smoke is considered a major risk factor for vascular diseases. There are many toxic compounds in cigarette smoke, including acrolein and other ${\alpha},{\beta}$-unsaturated aldehydes, which are regarded as mediators of inflammation and vascular dysfunction. Furthermore, recent studies have revealed that acrolein, an ${\alpha},{\beta}$-unsaturated aldehyde in cigarette smoke, induces inflammatory mediator expression, which is known to be related to vascular diseases. In this study, we investigated whether Korean Red Ginseng (KRG) water extract suppressed acrolein-induced cyclooxygenase (COX)-2 expression in human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). Acrolein-induced COX-2 expression was accompanied by increased levels of phosphorylated p38 in HUVECs and KRG inhibited COX-2 expression in HUVECs. These results suggest that KRG suppresses acrolein-induced COX-2 expression via inhibition of the p38 mitogen-activated protein kinase signaling pathway. In addition, KRG exhibited an inhibitory effect on acrolein-induced apoptosis, as demonstrated by annexin Vepropidium iodide staining and terminal deoxynucleotidyl transferase-mediated dUTP nick end-labeling assay. Consistent with these results, KRG may exert a vasculoprotective effect through inhibition of COX-2 expression in acrolein-stimulated human endothelial cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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