The effects of dark-control (D) and continuous green light (GL) exposure of incubated meat-type breeder eggs (Hybro) on embryonic growth from 5 to 15 days of age, hatching time, hatchability per cent and chick hatching weight were investigated in three consecutive experiments at 33, 38, and 41 weeks of age. A total of 798 eggs were used in this study. Eggs were set in an incubator on trays either in the D or under two tubes of 20-watt green fluorescent light during the first 18 days of incubation. Eggs from both treatments were transferred to the dark hatching compartment at 19 days of incubation. The light intensity was in the range of 1,340 to 1,730 lux at the surface of the eggs. GL incubation of eggs significantly (p<0.01) increased weight (expressed as an absolute value) and daily weight gain of embryos at 11 and continued to 15 days of age, hatchability per cent by 4.8%, reduced dead embryos per cent and chick weight at hatch by 37 and 2%, respectively and accelerated hatching time by about 24 h when compared with the D-control incubation. Chicks hatched at 504 h of incubation had significantly (p<0.01) higher body weight, expressed as an absolute value or as a percentage of egg weight, than those hatched earlier at 456 h of incubation. It was concluded that the GL incubation of meat breeder eggs reduced incubation period and chick weight at hatch and increased embryonic growth and hatchability per cent.
Holstein cow ovaries obtained at a slaughterhouse were used to study the influence of the oocyte collection methods (slicing, puncture, aspiration I and II) on recovery efficiency and subsequent in vitro maturation and embryonic development competence of immature oocytes recovered. In the slicing method, the whole ovarian was chopped into small pieces with a surgical blade. In the puncture method, the whole ovarian surface was punctured by 18-g needle. In other 2 aspiration methods, collected oocytes by aspirating from the visible follicles using an 18-g needle attached to a 5 ml syringe (aspiration I) or using a constant negetive pressure (-80 mmHg) with a vacuum pump (aspiration II). The oocytes were classified into 4 classes on the basis of the morphology of cumulus cells and cytoplasmic appearance of oocyte. Slicing ($9.6{\pm}0.4$) and puncture ($9.7{\pm}0.4$)yielded a larger number of oocytes per ovary than other two aspiration methods (aspiration I and II were $5.8{\pm}0.3$and $5.6{\pm}0.4$, respectively) (p<0.05). The number of the highest quality oocytes (grade A) per ovary was significantly higher in slicing ($4.2{\pm}0.2$) and puncture ($4.6{\pm}0.1$) methods than in other methods (aspiration I and II were $1.2{\pm}0.2$ and $1.4{\pm}0.2$, respectively) (p<0.05). The rate of nuclear maturation of the highest and higher quality oocytes (grade A and grade B, respectively) was not affected by the oocytes collection methods. The oocytes collection methods also did not influence subsequent embryonic developmental competence after in vitro fertilization with M II stage oocytes. It is concluded that slicing and puncture methods of the ovaries can be used as an alternative techniques to aspiration by the syringe or vacuum pump.
Oqani, Reza K.;Zhang, Jin Yu;Lee, Min-Gu;Diao, Yun Fei;Jin, Dong-Il
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.25
no.6
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pp.789-793
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2012
Fertilization of the oocyte commences embryogenesis during which maternally inherited mRNAs are degraded and the embryonic genome is activated. Transcription of embryonic mRNA is initiated by embryonic genome activation (EGA). RNA polymerase II (RNA Pol II) is responsible for the synthesis of mRNAs and most small nuclear RNAs, and consists of 12 subunits, the largest of which characteristically harbors a unique C-terminal domain (CTD). Transcriptional activity of RNA Pol II is highly regulated, in particular, by phosphorylation of serine residues in the CTD. Here, we have shown the presence of RNA Pol II CTD phosphoisoforms in porcine oocytes and preimplantation embryos. The distribution pattern as well as phosphorylation dynamics in germinal vesicles and during embryogenesis differed in developmental stages with these isoforms, indicating a role of RNA Pol II CTD phosphorylation at the serine residue in transcriptional activation during both oocyte growth and embryonic genome activation. We additionally examined the effects of the RNA Pol II inhibitor, ${\alpha}$-amanitin, on embryo development. Our results show that inhibition of polymerase, even at very early stages and for a short period of time, dramatically impaired blastocyst formation. These findings collectively suggest that the functionality of maternal RNA Pol II, and consequently, expression of early genes regulated by this enzyme are essential for proper embryo development.
Matrix metalloproteinases (MMPs) have been known to affect to cell migration, proliferation, morphogenesis and apoptosis by degrading the extracellular matrix. In the previous studies, undifferentiated mouse embryonic stem cells (ESCs) were successfully proliferated inside the extracellular matrix (ECM) analog-conjugated three-dimensional (3D) poly ethylene glycol (PEG)-based hydrogel. However, there is no report about MMP secretion in ESCs, which makes it difficult to understand and explain how ESCs enlarge space and proliferate inside 3D PEG-based hydrogel constructed by crosslinkers containing MMP-specific cleavage peptide sequence. Therefore, we investigated what types of MMPs are released from undifferentiated ESCs and how extracellular signals derived from various niche conditions affect MMP expression of ESCs at the transcriptional level. Results showed that undifferentiated ESCs expressed specifically MMP2 and MMP3 mRNAs. Transcriptional up-regulation of MMP2 was caused by the 3D scaffold, and activation of integrin inside the 3D scaffold upregulated MMP2 mRNAs synergistically. Moreover, mouse embryonic fibroblasts (MEFs) on 2D matrix and 3D scaffold induced upregulation of MMP3 mRNAs, and activation of integrins through conjugation of extracellular matrix (ECM) analogs with 3D scaffold upregulated MMP3 mRNAs synergistically. These results suggest that successful proliferation of ESCs inside the 3D PEG-based hydrogel may be caused by increase of MMP2 and MMP3 expression resulting from 3D scaffold itself as well as activation of integrins inside the 3D PEG-based scaffold.
Metabolic changes of early mouse embryos treated with progesterone were investigated in order to elucidate the mode of action of progesterone on embryogenesis in vitro. The embryos were cultured, and labelled with radioactive precursors of macromolecules for certain periods in the absence or presence of various concentrations of progesterone by employing the microtube culture technique. The changes of transport and macromolecular synthesis systems of the embryos were examined by measuring the amounts of uptake and incorporation of the precursors. The results obtained were as follows: 1. Progesterone stimulated markedly the uptake of amino acids, but rather suppressed their incorporation by embryonic cells. 2. Progesterone suppressed both the uptake and incorporation of nucleotide precursors (uridine and thymidine) by embryonic cells. 3. Progesterone penetrated into the embryonic cell membranes and was taken up by them. The present results seem to indicate that the inhibition of the progesterone on the mammalian embryogenesis in vitro may not be directly related to the membrane transport system. They seem to imply that progesterone would penetrate into the embryonic cells and may directly block the biosynethetic pathways of macromolecules, and so lead to the inhibition of the embryogenesis in vitro.
Hassan, Bahia M.S.;Fang, Xun;Roy, Pantu Kumar;Shin, Sang Tae;Cho, Jong Ki
Journal of Embryo Transfer
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v.32
no.3
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pp.123-130
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2017
This study was conducted to investigate the effects of alpha-lipoic acid (aLA) as an antioxidant that decrease the reactive oxygen species (ROS) in bovine embryonic development. Slaughterhouse derived bovine immature oocytes were collected and 4 different concentrations (0, 5, 10 and 20 mM) of aLA was supplemented in bovine in vitro maturation (IVM) medium. After 20 hrs of IVM, maturation rates, levels of ROS and glutathione (GSH), and further embryonic development after parthenogenetic activation (PA) and in vitro fertilization (IVF) was investigated according to aLA concentrations. Maturation rate was significantly higher in 10 mM group than other groups (80.5% vs. 62.9, 73.9, 64.2%; P<0.05). In the levels of ROS and GSH in matured oocytes as an indicator of oocyte quality, significantly better results were shown in 5 and 10 mM groups compared with other 2 groups. After IVM, significantly higher rates of blastocyst formation were shown in 10 mM groups in both of PA (27.9% vs. 18.8, 22.3, 14.2%; P<0.05) and IVF (32.6% vs. 23.9, 27.3, 16.2%; P<0.05) embryos. In addition, significantly more cell total cell number and higher inner cell mass ratio in 10 mM PA and IVP blastocysts showed developmental competence in 10 uM groups. Therefore, based on the entire data from this study, using $10{\mu}M$ of aLA confirmed to be the optimal concentration for bovine oocyte maturation and embryonic development.
Shin, Dong-Hyuk;Lee, Jeoung-Eun;Eum, Jin Hee;Chung, Young Gie;Lee, Hoon Taek;Lee, Dong Ryul
Development and Reproduction
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v.21
no.4
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pp.425-434
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2017
Polyploidy is occurred by the process of endomitosis or cell fusion and usually represent terminally differentiated stage. Their effects on the developmental process were mainly investigated in the amphibian and fishes, and only observed in some rodents as mammalian model. Recently, we have established tetraploidy somatic cell nuclear transfer-derived human embryonic stem cells (SCNT-hESCs) and examined whether it could be available as a research model for the polyploidy cells existed in the human tissues. Two tetraploid hESC lines were artificially acquired by reintroduction of remained 1st polar body during the establishment of SCNT-hESC using MII oocytes obtained from female donors and dermal fibroblasts (DFB) from a 35-year-old adult male. These tetraploid SCNT-hESC lines (CHA-NT1 and CHA-NT3) were identified by the cytogenetic genotyping (91, XXXY,-6, t[2:6] / 92,XXXY,-12,+20) and have shown of indefinite proliferation, but slow speed when compared to euploid SCNT-hESCs. Using the eight Short Tendem Repeat (STR) markers, it was confirmed that both CHA-NT1 and CHA-NT3 lines contain both nuclear and oocyte donor genotypes. These hESCs expressed pluripotency markers and their embryoid bodies (EB) also expressed markers of the three embryonic germ layers and formed teratoma after transplantation into immune deficient mice. This study showed that tetraploidy does not affect the activities of proliferation and differentiation in SCNT-hESC. Therefore, tetraploid hESC lines established after SCNT procedure could be differentiated into various types of cells and could be an useful model for the study of the polyploidy cells in the tissues.
The establishment of porcine embryonic stem cells (ESCs) from porcine somatic cell nuclear transfer (SCNT) blastocysts is influenced by in vitro culture day of porcine reconstructed embryo and feeder cell type. Therefore, the objective of the present study was to determine the optimal in vitro culture period for reconstructed porcine SCNT embryos and mouse embryonic fibroblast (MEF) feeder cell type for enhancing colony formation efficiency from the inner cell mass (ICM) of porcine SCNT blastocysts and their outgrowth. As the results, porcine SCNT blastocysts produced through in vitro culture of the reconstructed embryos for 8 days showed significantly increased efficiency in the formation of colonies, compared to those for 7 days. Moreover, MEF feeder cells derived from outbred ICR mice showed numerically the highest efficiency of colony formation in blastocysts produced through in vitro culture of porcine SCNT embryos for 8 days and porcine ESCs with typical ESC morphology were maintained more successfully over Passage 2 on outbred ICR mice-derived MEF feeder cells than on MEF feeder cells derived from inbred C57BL/6 and hybrid B6CBAF1 mice. Overall, the harmonization of porcine SCNT blastocysts produced through in vitro culture of the reconstructed embryos for 8 days and MEF feeder cells derived from outbred ICR mice will greatly contribute to the successful establishment of ESCs derived from porcine SCNT blastocysts.
Fish ovarian germline stem cells (OGSCs) that have the abilities to self-renew and differentiate into functional gametes can be used in various researches and applications. A main issue to be solved for effective utilization of fish OGSCs is the development of their stable in vitro culture condition, but only few researches about fish OGSC culture have been reported so far. In this study, in order to find the clues to develop the culture condition for OGSCs from Japanese medaka (Oryzias latipes), we tried to establish somatic cell lines as a candidate for the feeder cells and evaluated its supporting effects on the culture of ovarian cell populations from O. latipes. As the results, the somatic cell lines could be established only from the embryonic tissues among three tissues derived from embryos, fins and ovaries. Three embryonic cell lines were tested as a feeder cell for the culture of ovarian cell population and all three cell lines induced cell aggregation formation of the cultured ovarian cells whereas the feeder-free condition did not. Furthermore, a significant cellular proliferation was observed in the ovarian cells cultured on two of three cell lines. As a trial to increase the capacity of the cell lines as a feeder cell that supports the proliferation of the cultured ovarian cells, we subsequently established a stable line that expresses the foreign O. latipes fibroblast growth factor 2 (FGF2) from an embryonic cell line and evaluated its effectiveness as a feeder cell. The ovarian cells cultured on FGF2 expressing feeder cells still formed cell aggregates but did not show a significant increase in cellular proliferation compared to those cultured on non-transformed feeder cells. The results from this study will provide the fundamental information for in vitro culture of medaka OGSCs.
Lipopolysaccharide (LPS) is an endotoxin factor present in the cell wall of Gram-negative bacteria and induces various immune responses to infection. Recent studies have reported that LPS induces cellular stress in various cells including oocytes and embryos. Melatonin (N-acetyl-5-methoxytryptamine) is a regulatory hormone of circadian rhythm and a powerful antioxidant. It has been known that melatonin has an effective function in scavenging oxygen free radicals and has been used as an antioxidant to reduce the cytotoxic effects induced by LPS. However, the effect of melatonin on LPS treated early embryonic development has not yet been confirmed. In this study, we cultured mouse embryos in medium supplemented with LPS or/and melatonin up to the blastocyst stage in vitro and then evaluated the developmental rate. As a result of the LPS-treatment, the rate of blastocyst development was significantly reduced compared to the control group in all the LPS groups. Next, in the melatonin only treated group, there was no statistical difference in embryonic development and no toxic effects were observed. And then we found that the treatment of melatonin improved the rates of compaction and blastocyst development of LPS-treated embryos. In addition, we showed that melatonin treatment decreased ROS levels compared to the LPS only treated group. In conclusion, we demonstrated the protective effect of melatonin on the embryonic developmental rate reduced by LPS. These results suggest a direction to improve reproduction loss that may occur due to LPS exposure and bacterial infection through the using of melatonin during in vitro culture.
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