Synthetic oscillators are gene circuits in which the protein expression will change over time. The delay of transcription, translation, and protein folding is used to form this kind of behavior. Here, we tried to design a synthetic oscillator by a negative feedback combined with a positive feedback. With the mutant promoter PLacC repressed by LacIq and PLux activated by AHL-bound LuxR, two gene circuits, Os-LAA and Os-ASV, were constructed and introduced into LacI-deleted E. coli DH5α cells. When glucose was used as the carbon source, a low level of fluorescence was detected in the culture, and the bacteria with Os-ASV showed no oscillation, whereas a small portion of those carrying Os-LAA demonstrated oscillation behavior with a period of about 68.3 ± 20 min. When glycerol was used as the carbon source, bacteria with Os-ASV demonstrated high fluorescence value and oscillation behavior with the period of about 121 ± 21 min.
In this study, the cDNA library of Chang-liver cells was immunoscreened using common ADAMs antibody to obtain ADAM related genes. We found one positive clone that was confirmed as a new gene by Blast, which is an uncharacterized helical and coil protein and processes protease activity, and named protease-related protein 1 (ARP1). The submitted GenBank accession number is AY078070. Molecular characterizations of ARP1 were analyzed with appropriate bioinformatics software. To analyse its expression and function, ARP1 was subcloned into glutathione S-transferase fusion plasmid pGEX-2T and expressed by E. coli system. The in vitro expression product of ARP1 was recognized by common ADAMs antibody with western blot. Interestingly, ARP1 cleaves gelatine at pH9.5, which suggests it is an alkaline protease. Semi-quantitative RT-PCR result indicates that ARP1 mRNA is strongly transcribed in the liver and the treated Chang-liver cells.
Streptomyces setonii (ATCC 39116) is a Gram-positive thermophilic soil actinomycetes capable of degrading single aromatic compounds including phenol and benzoate via ortho-cleavage pathway. we isolated approximately 6.3-kb S. setonii DNA fragment containing a thermophilic catechol 1,2-dioxygenase(C12O) gene. Here we further revealed that the 6.3-kb S. setonii DNA fragment was organized into two putative divergently-transcribed clusters with 6 complete and one incomplete open reading frames (ORFs). The first cluster with 3 ORFs showed significant homologies to previously known benA, benB, and benC, implying a part of benzoate catabolic operon. The second cluster revealed an ortho-cleavage catechol catabolic operon with three translationally-coupled ORFs (catR, catB, catA). Each of these individually-cloned ORFs was expressed in E. coli and identified as a distinct protein band with a theoretical molecular weight in SDS-PAGE. The expression of the cloned S. setonii catechol operon was induced in a heterologous S. lividans by specific single aromatic compounds including catechol, phenol, and 4-chlorophenol. The simitar induction pattern was also observed using a luciferase gene-fused reporter system, implying that S. setonii employs an inducer-specific regulatory mechanism for aromatic compound metabolism.
Making use of chitosan (CS) and ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) as a reaction system, CS-EDTA nanoparticles were synthesized through a facile counterion complex coacervation method. $Ag^+$ could enter porous CS nanoparticles synthesized with this method, allowing Ag nanoparticles within chitosan nanoparticles were synthesized by reducing silver nitrate with chitosan. Because of the noncovalent interaction between CS and EDTA, the EDTA could be easily removed via dialysis against water, and pure core/shell-type Ag/CS nanoparticles could be obtained. The nanoparticles showed higher antibacterial activity toward E. coli than the active precursor Ag nanoparticles and CS.
dTDP-rhamnose is synthesized from dTTP and glucose-1-phosphate by four enzymatic steps in the gram-negative bacteria. By using a homologous PCR product, a gene cluster encoding four genes (rfbA, rfbB, rfbC, rfbD) involved in L-rhamnose biosynthesis by Acinetobacter calcoaceticus was isolated and sequenced. The four genes were clustered on the biosynthetic operon in the order of rfbB, D, A, C. A gene, rfbA, encoding glucose-l-phosphate thymidylyltransferase (RfbA), was cloned from A. calcoaceticus pathogenic and encapsulated in the gram-negative bacterium. This enzyme catalyzes the formation of dTDP-D-glucose From $\alpha$-D-glucose-1-phosphate and dTTP.RfbA was amplified by PCR and inserted into the $T_7$ expression system. The activity of RfbA was determined by the capillary electrophoresis. The $K_m$ values for dTTP and $\alpha$-D-glucose-1-phosphate were calculated to be 1.27 mM and 0.80 mM, respectively by using the Line-Weaver Burk plot. RfbA is inactivated by diethylpyrocarbonate.
In order to express the FLP recombinase in B. mori cultured cell line, BmN-4, transient expression system using a heat shock protein gene (hsp70) promoter of Dorosophilla melnogaster was constructed. This vector was designated as pHsSV. Activity strength of the hsp70 promoter was compared with that of immediate early gene (IE-1) and polyhedrin gene of BmNPV employing the E. coli $\beta$-galactosidase gene as a reporter gene. The result showed that the pHs $\beta$-gal plasmid vector expressed the $\beta$-galactosidase at 2nd and 3rd day after the transfer of plasmid DNA into BmN-4 cells, which was similar to that of pIE1 $\beta$-gal vector, but different from that of a recombinant virus, vBm $\beta$-gal. For the construction of FLP recombinase transient expression vector, the FLP recombinase gene was cloned by polymerase chain reaction technique. To express the FLP recombinase, this gene was inserted into pHsSV plasmid vector, under the control of the hsp70 promotor, and tranfected in BmN-4 cells. The expressed FLP recombinase was estimated at 44kDa on a 12.5% SDS-PAGE.
JI SANG CHUN;KIM DOCKYU;YOON JUNG-HOON;OH TAE-KWANG;LEE CHOONG-HWAN
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제16권1호
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pp.153-157
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2006
A soil metagenomic library was constructed using an E. coli-fosmid cloning system with environmental DNAs extracted from Kwangreung forest topsoil. We targeted the genes involved in the biosynthesis of bacterial polyketides. Initially, a total of 36 clone pools (10,800 clones) were explored by the PCR-based method using the metagenomic DNAs from each pool and a degenerate primer set, which has been designed based on the highly conserved regions among ketoacyl synthase (KS) domains in actinomycete type I polyketide synthases (PKS Is). Six clone pools were tentatively selected as positive and further examined through a hybridization-based method for selecting a fosmid clone containing PKS I genes. Colony hybridization was performed against fosmid clones from the 6 positive pools, and finally 4 clones were picked out and confirmed to contain the conserved DNA fragment of KS domains. In this study, we present a simple and feasible sorting method for a desired clone from metagenomic libraries.
Bacteria from the genus Lactobacillus are important for the production of fermented food and dairy products, and as symbionts in human and animals. Lactobacillus acidophilus has widely been used in the production of yogurt, health foods, and even medicines. The efficacy of L. acidophilus has been proven with regards to the reduction of cholesterol, prevention and treatment of diarrhea, modulation of the immune system, suppression of cancer, etc. Using molecular biology tools, Lactobacillus acidophilus has now been reclassified into six species: L. acidophilus, L. amylovorus, L. crispatus, L gallinarium, L. gasseri, and L. johnsonii. Thus, since L. acidophilus has now been marked as a newly defined species, caution is advised when reading future publications regarding this bacterium. In this article, the results of the reclassification of L. acidophilus are mentioned after an analysis of its field inheritance was performed by my research team. Especially, L. amylovorus KU4 (formerly named as L. acidophilus KU4; KCCM 10975P) is a novel probiotic strain that is isolated from humans; it has the ability to reduce cholesterol. It has also been reported as a microorganism that effectively inhibits the growth of pathogenic E. coli. However, this Korean patent (No 10-1541280) refers to a strain obtained from calves; the origin of this strain was incorrectly labeled. Furthermore, after the discovery of L. acidophilus in 1900, its role in intestinal microbiological research was described and its utilization as a probiotic was presented.
A strain antagonistic to Fusarium solani, CHO104, was selected from approximately 100 microorganisms isolated from soil. Strain CHO104 was identified as Bacillus amyloliquefaciens and found to be Gram-positive based on the Biolog system and 16S rRNA methods. A culture broth of B. amyloliquefaciens CHO104 also exhibited antimicrobial activity against various microorganisms. As such, the EtOAc extract of the culture broth was isolated by various column chromatographic procedures and HPLC. The antimicrobial and antifungal substance was then characterized as macrolactin A $(C_{24}H_{34}O_5)$ using high-resolution EI-MS and NMR analyses, and found to be very effective in inhibiting the growth of Staphylococcus aureus, E. coli, and Botrytis cinerea, even when using a concentration of one-twentieth of the benzoic acid as the control compound.
Bacteria have evolved various types of resistance mechanism to toxic heavy metals, such as arsenic and antimony. An arsenical and antimonial resistant bacterium was isolated from a shallow creek draining a coal-mining area near Taebaek City, in Kangwon-Do, Korea. The isolated bacterium was identified and named as Pseudomonas sp. KM20 after biochemical and physiological studies were conducted. A plasmid was identified and its function was studied. Original cells harboring the plasmid were able to grow in the presence of 15 mM sodium arsenite, while the plasmid-cured (plasmidless) strain was sensitive to as little as 0.5 mM sodium arsenate. These results indicated that the plasmid of Pseudomonas sp. KM20 does indeed encode the arsenic resistance determinant. In growth experiments, prior exposure to 0.1 mM arsenate allowed immediate growth when they were challenged with 5 mM arsenate, 5 mM arsenite, or 0.1 mM antimonite. These results suggested that the arsenate, arsenite, and antimonite resistance determinants of Pseudomonas sp. KM20 plasmid were indeed inducible. When induced, plasmid-bearing resistance cells showed a decreased accumulation $of\;73^As$ and showed an enhanced efflux $of\;^73As$. These results suggested that plasmid encoded a transport system that extruded the toxic metalloids, resulting in the lowering of the intracellular concentration of toxic oxyanion. In a Southern blot study, hybridization with an E. coli R773 arsA-specific probe strongly suggested the absence of an arsA cistron in the plasmid-associated arsenical and antimonial resistance determinant of Pseudomonas sp. KM20.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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