Kim, Seung-Il;Kweon, Soo-Mi;Kim, Soo-Hyun;Ha, Kwon-Soo
BMB Reports
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v.30
no.5
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pp.342-345
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1997
Catechol 1,2-dioxygenase $I_1$ (CD $I_1$) gene of Acinetobacter Iwoffii K24, $catA_1$ was expressed in Escherichia coli and was partially purified by using a MonoQ column. Expressed CD $I_1$ had the same molecular weight as purified CD $I_1$ from A. Iwoffii K24 on SDS-PAGE. Expressed CD $I_1$ was also identified by Western blotting and peptide sequencing of N-terminal and internal regions. When compared with purified CD $I_1$ of A. Iwoffii K24, expressed CD $I_1$ had similar substrate specificities and the effects of compounds on enzyme activity. N-terminal amino acid sequence of CD I expressed in E. coli was the same as that of purified CD $I_1$, suggesting that CD $I_1$ may be under the same posttranslational processing in E. coli and A. Iwoffii K24.
A strain degrading phthalate ester was isolated from a sludge of Taegu area and identified as a strain of Klebsiella. The optimum culture conditions for the protocatechuate dioxygenase production were also investigated. This strain produced the enzyme in question under the shaking cultivation at $30^{\circ}C$for the 48 hrs in the medium containing 0.1% protocatechuate as the sole carbon source, 0.1% ammonium sulfate and 0.1% yeast extract as the nitrogen source and mineral salt mixture of magnesium sulfate, sodium chloride, calcium chloride, ferric chloride, manganese sulfate, zinc sulfate and cupric sulfate. This enzyme was intracellularl j localized and probably linked to cell membrane, and induced by protocatechuate.
2,3-Dihydroxybiphenyl 1,2-dioxygenase (23DBDO), an enzyme of the biphenyl biodegradation pathway encoded by the bphC gene of Comnmonas sp. SMN4, was expressed and purified using column chromatographies. SDS-PAGE of purified 23DBDO showed a single band with a molecular mass of 32 kDa, which was consistent with the data from the gel filtration chromatography (GFC). The purified enzyme exhibited a maximum 23DBDO activity at pH 9.0 and was stable at pH 8.0. The enzyme showed maximum activity at $40^{\circ}C$ and maintained activity at $30^{\circ}C$ for 24 h. Kinetic parameters represented by Michaelis-Menten constants such as $K_m\;and\;V_{max}$ values for various substrates were determined by Lineweaver-Burk plots: The purified enzyme 23DBDO from Comamonas sp. SMN4 had the highest catalytic activity for 2,3-dihydroxybiphenyl and 3-methylcatechol, and had very poor activity with catechol and 4-methylcatechol.
Alcaligenes xylosoxydans strain SMN3 capable of utilizing biphenyl grew not only on phenol, and benzoate, but also on salicylate. Catabolisms of biphenyl and salicylate appear to be interrelated since benzoate is a common metabolic intermediate of these compounds. Enzyme levels in the excatechol 2. 3-dioxygenas which is meta-cleavage enzyme of catechol, but did not induce catechol 1, 2-dioxygenase. All the oxidative enzymes of biphenyl and 2, 3,-dihydroxybiphenyl (23DHBP) were induced when the cells were grown on biphenyl and salicylate, respectively. Biphenyl and salicylate could be a good inducer in the oxidation of biphenyl and 2, 3-dihydroxybiphenyl. The two enzymes for the degradation of biphenyl and salicylate were induced after growth on either biphenyl or salicylate, suggesting the presence of a common regulatory element. However, benzoate could not induce the enzymes responsible for the oxidation of these compounds. Biphenyl and salicylate were good inducers for indigo formation due to the activity of biphenyl dioxygenase. These results suggested that indole oxidation is a property of bacterial dioxygenase that form cis-dihydrodiols from aromatic hydrocarbon including biphenyl.
Cholera toxin (CT) is an ADP-ribosylating bacterial exotoxin that has been used as an adjuvant in animal studies of oral immunization. The mechanisms of mucosal immunogenicity and adjuvanticity of CT remain to be established. In this study, we investigated the role of indoleamine 2,3-dioxygenase (IDO), which participates in the induction of immune tolerance, in CT-mediated breakdown of oral tolerance. When IDO-deficient ($IDO^{-/-}$) mice and their littermates were given oral ovalbumin, significant changes in antibody responses, footpad swelling and $CD4^+$ T cell proliferation were not observed in $IDO^{-/-}$ mice. Feeding of CT decreased IDO expression in mesenteric lymph nodes (MLN) and Peyer's patch (PP). CT-induced downregulation of IDO expression was reversed by inhibitors of nuclear factor-kappa B (NF-${\kappa}B$), pyrrolidine dithiocarbamate and p50 small interfering RNA. IDO expression was downregulated by the NF-${\kappa}B$ inducers lipopolysaccharide and tumor necrosis factor-${\alpha}$. CT dampened IDO activity and mRNA expression in dendritic cells from MLN and PP. These data indicate that CT disrupts oral tolerance by activating NF-${\kappa}B$, which in turn downregulates IDO expression. This study betters the understanding of the molecular mechanism underlying CT-mediated abrogation of oral tolerance.
Catechol 2, 3-dioxygenase (C230) catalyses the oxidative ring cleavage of catechol to 2-hydroxymuconic semialdehyde. This is one of the key reactions in the metabolism of the widespresd pollutant aniline. We have cloned a gene encoding C230 from cells of the aniline degrading bacteria, Pseudomonas acidovorance KCTC2494 strain and expressed in E. coli, A 11.3-kilobase Sau3A partial digested DNA fragment from KCTC2494 was cloned into phagemid vector pBluescript and designated as pLP201. The C230 gene was mapped to a 2.8-kb region, and the derection of transcription was determined. The cloned C230 gene contains its own promoter which can be recognized and employed by E. coli transcriptional apparatus. C230 activities of subclones were identified by enzyme assay and activity staining. The T7 RNA promoter/polymerase system and maxicell analysis showed that a polypeptide with Mw of 35 kDa is the C230 gene product.
Ha, You-Mee;Jung, Young-Hee;Kwon, Dae-Young;Kim, Young-Chang;Kim, Young-Soo;Kim, Chy-Kyung;Min, Kyung-Hee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.9
no.3
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pp.249-254
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1999
A catechol 2,3-dioxygenase (C23O) was purified to apparent homogeneity from Pseudomonas putida SU10 through several purification steps consisting of ammonium sulfate precipitation and chromatographies on DEAE 5PW, Superdex S-200, and Resource-Q. Gel filtration indicated a molecular mass under nondenaturing conditions of about 130 kDa. The enzyme has a subunit of 34 kDa as was determined by SDS-PAGE. These results suggest that the native enzyme is composed of four identical subunits. The N-terminal amino acid sequence (30 residues) of the enzyme has been determined and exhibits high identity with other extradiol dioxygenases. The reactivity of this enzyme towards catechol and methyl-substituted catechols is somewhat different from that seen for other catechol 2,3-dioxygenases, with 4-methylcatechol cleaved at a higher rate than catechol or 3-methylcatechol. $K_m$ values of the enzyme for these substrates are between 3.5 and 5.7 M.
Generation of tryptophan-derived metabolites by indoleamine 2,3-dioxygenase (IDO) is a potent immunoregulatory mechanism in T cell responses. However, the mechanism remains unclear. We showed that 3-hydroxyanthranilic acid (3-HAA), the most potent metabolite, selectively induced apoptosis in activated T cells, but not in resting T cells. This was not associated with cell cycle arrest. We found that TRAIL expression was selectively induced in activated T cells by treatment of 3-HAA. Blockade of the TRAIL: DR4/DR5 pathway significantly inhibited 3-HAA-mediated T cell death. Our data suggest that TRAIL-induced apoptosis is involved in the mechanism of 3-HAA-mediated T cell death.
To obtain higher yield of 2,3-dihydroxybiphenyl(2,3-DHBP) dioxygenase by recombinant E. coli CK1092 carrying pcbC gene of Pseudomonas sp. P20, the environmental and physiological factors were investigated and the cultural conditions using jar fermentor were studied. E. coli CKl092 was grown in LB medium supplemented with 2% sucrose, as a basal medium. The effect of various metal ions on the enzyme production was investigated. In particular, the enzyme production increased in the presence of $Fe^{3+}$ and $Fe^{2+}$, and showed the maxium at the concentration of $10^{-5}M$. The enzyme production was increased by 55% in the medium containing $Fe^{3+}$ ($10^{-5}M$) ion. The optimal temperature and initial pH for cell growth were $37^{\circ}C$ and 7.0, respectively. In the culture using a fermentor at $37^{\circ}C$, the optimal conditions for the enzyme production were obtained at the initial pH 7.0, 1 v/v/m of aeration rate, 200 rpm of agitation speed. It was found that enzyme activity was higher when cultivated without pH control than with pH control.
The aim of this work was to investigate the characterization and sequence of catechol 2,3-dioxygenase isolated from Delfia sp. JK-2, which could utilize aniline as sole carbon, nitrogen and energy source. In initial experiments, several characteristics of C2,3O separated with ammonium sulfate precipitation, DEAE-sepharose were investigated. Specific activity of C2,3O was approximately 4.72 unit/mg. C2,3O demonstrated its enzyme activity to other substrates, catechol and 4-methylcatechol. The optimum temperature of C2,3O was $$Cu^{2+}$^{\circ}C$, and the optimal pH was approximately 8. Metal ions such as $Ag^{+}$, $Hg^{+}$, and $Cu^{2+}$ showed inhibitory effect on the activity of C2,3O. Molecular weight of the enzyme was determined to approximately 35 kDa by SDS-PAGE. N-terminal amino acid sequence of C2,3O was analyzed as $^{1}MGVMRIG-HASLKVMDMDA- AVRHYENV^{26}$, and exhibited high sequence homology with that of C2,30 from Pseudomonas sp. AW-2, Comamonas sp. JS765, Comamonas testosteroni and Burkholderia sp. RPO07. PCR product was amplified with the primers derived from N-terminal amino acid sequence. In this work, we found that the amino acid sequence of Delftia sp. JK-2 showed high sequence homology of C2,3O from Pseudomonas sp. AW-2 (100%) and Comamonas sp. JS765 (97%).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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