Dentin surface of non-carious lesion is usually attached with oral biofilm. The biofilm should be removed before application of restorative material, because it may reduce the bond strength of adhesive system. The aim of this study was to evaluate the microtensile bond strength, when the biofilm was removed with brush or bur. Twenty extracted human third molars were sectioned horizontally to obtain dentin surface. Specimen were divided randomly into four group. Biofilm formation was performed in three group, except for Group 1 (negative control). Biofilm was removed as follows: Group 3, using ICB brush; Group 4, using lowspeed round bur #2. Group 2 (positive control) was not removed Biofilm. And in all four groups, the adhesive system (Optibond FL, Kerr) was applied to etched dentin surface, and resin composite was built up in three 1mm increments. After 24 hour storage in distilled water, the teeth were perpendicularly sectioned to obtain beams (1 × 1 mm2). Microtensile bond strength was measured and the data were statistically analyzed using one-way ANOVA and Tukey's post hoc test (p<0.05). Group 4 showed the highest microtensile bond strength (p<0.05), Group 3 showed no significant improvements when compared to Group 1. Group 2 showed lowest microtensile bond strength (p<0.05). When restoring a non-carious cervical lesion, it is essential to remove the biofilm present on the dentin surface. In addition, in the method of removing the biofilm, both the brush removal method and the bur removal method were effective.
Balhaddad, Abdulrahman A.;Melo, Mary Anne S.;Gregory, Richard L.
Restorative Dentistry and Endodontics
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제44권1호
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pp.4.1-4.10
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2019
Objectives: Biofilm formation is critical to dental caries initiation and development. The aim of this study was to investigate the effects of nicotine exposure on Streptococcus mutans (S. mutans) biofilm formation concomitantly with the inhibitory effects of sodium chloride (NaCl), potassium chloride (KCl) and potassium iodide (KI) salts. This study examined bacterial growth with varying concentrations of NaCl, KCl, and KI salts and nicotine levels consistent with primary levels of nicotine exposure. Materials and Methods: A preliminary screening experiment was performed to investigate the appropriate concentrations of NaCl, KCl, and KI to use with nicotine. With the data, a S. mutans biofilm growth assay was conducted using nicotine (0-32 mg/mL) in Tryptic Soy broth supplemented with 1% sucrose with and without 0.45 M of NaCl, 0.23 M of KCl, and 0.113 M of KI. The biofilm was stained with crystal violet dye and the absorbance measured to determine biofilm formation. Results: The presence of 0.45 M of NaCl, 0.23 M of KCl, and 0.113 M of KI significantly inhibited (p < 0.05) nicotine-induced S. mutans biofilm formation by 52%, 79.7%, and 64.1%, respectively. Conclusions: The results provide additional evidence regarding the biofilm-enhancing effects of nicotine and demonstrate the inhibitory influence of these salts in reducing the nicotine-induced biofilm formation. A short-term exposure to these salts may inhibit S. mutans biofilm formation.
Chlorhexidine has long been used in mouth washes for the control of dental caries, gingivitis and dental plaque. Minimal inhibitory concentration (MIC) is the lowest concentration of an antimicrobial substance to inhibit the growth of bacteria. Concentrations lower than the MIC are called sub minimal inhibitory concentrations (sub-MICs). Many studies have reported that sub-MICs of antimicrobial substances can affect the virulence of bacteria. The aim of this study was to investigate the effect of sub-MIC chlorhexidine on biofilm formation and coaggregation of oral early colonizers, such as Streptococcus gordonii, Actinomyces naeslundii and Actinomyces odontolyticus. The biofilm formation of S. gordonii, A. naeslundii and A. odontolyticus was not affected by sub-MIC chlorhexidine. However, the biofilm formation of S. mutans increased after incubation with sub-MIC chlorhexidine. In addition, cell surface hydrophobicity of S. mutans treated with sub-MIC of chlorhexidine, decreased when compared with the group not treated with chlorhexidine. However, significant differences were seen with other bacteria. Coaggregation of A. naeslundii with A. odontolyticus reduced by sub-MIC chlorhexidine, whereas the coaggreagation of A. naeslundii with S. gordonii remained unaffected. These results indicate that sub-MIC chlorhexidine could influence the binding properties, such as biofilm formation, hydrophobicity and coaggregation, in early colonizing streptococci and actinomycetes.
Park, Jong Hwa;Lee, Jae-Kwan;Um, Heung-Sik;Chang, Beom-Seok;Lee, Si-Young
Journal of Periodontal and Implant Science
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제44권2호
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pp.79-84
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2014
Purpose: While single-species biofilms have been studied extensively, we know notably little regarding multispecies biofilms and their interactions. The purpose of this study was to develop and evaluate an in vitro multispecies dental biofilm model that aimed to mimic the environment of chronic periodontitis. Methods: Streptococcus gordonii KN1, Fusobacterium nucleatum ATCC23726, Aggregatibacter actinomycetemcomitans ATCC33384, and Porphyromonas gingivalis ATCC33277 were used for this experiment. The biofilms were grown on 12-well plates with a round glass slip (12 mm in diameter) with a supply of fresh medium. Four different single-species biofilms and multispecies biofilms with the four bacterial strains listed above were prepared. The biofilms were examined with a confocal laser scanning microscope (CLSM) and scanning electron microscopy (SEM). The minimum inhibitory concentrations (MIC) for four different planktonic single-species and multispecies bacteria were determined. The MICs of doxycycline and chlorhexidine for four different single-species biofilms and a multispecies biofilm were also determined. Results: The CLSM and SEM examination revealed that the growth pattern of the multispecies biofilm was similar to those of single-species biofilms. However, the multispecies biofilm became thicker than the single-species biofilms, and networks between bacteria were formed. The MICs of doxycycline and chlorhexidine were higher in the biofilm state than in the planktonic bacteria. The MIC of doxycycline for the multispecies biofilm was higher than were those for the single-species biofilms of P. gingivalis, F. nucleatum, or A. actinomycetemcomitans. The MIC of chlorhexidine for the multispecies biofilm was higher than were those for the single-species biofilms of P. gingivalis or F. nucleatum. Conclusions: To mimic the natural dental biofilm, a multispecies biofilm composed of four bacterial species was grown. The 24-hour multispecies biofilm may be useful as a laboratory dental biofilm model system.
Bacteria play a major role in the etiology of apical periodontitis. Traditionally it has been held the microorganisms are present in necrotic tissue in the root canal system and in tubules of the root dentin whereas the periapical tissues are free of bacteria. However, it is reported the presence of bacterial in the periapical lesions. They may form the biofilm and survive in the periapical tissues. Especially high incidence of biofilm is reported in the refractory periapical lesions. treatment was presented in the left maxillary first premolar with a long-standing fistula and apical calculus. Also. the role of biofilm and its treatment were discussed.
In our present study, we investigated the effects of continentalic acid on Streptococcus mutans (S. mutans) biofilm. Methanol extract of Aralia continentalis (A. continentalis) was suspended in water and sequentially partitioned with CHCl3, ethyl acetate (EtOAc), and n-butanol (n-BuOH). The CHCl3 fraction showed the highest activity and an antibacterial compound against S. mutans was isolated from this preparation through various chromatography methods by bioassay guided fractionation. MS, $^1H-NMR$ and $^{13}C-NMR$ analysis showed that the active principle was continentalic acid which was confirmed to show significant inhibitory effects against S. mutans biofilm. These results may provide some scientific rationale for the traditional use these extracts for the treatment of dental diseases.
In oriental medicine, the fruit of Actinidia polygama has long been used to alleviate the symptoms of gout, arthritis, and inflammation. In this study, it was to designed to analyze the antibacterial activity of A. polygama ethanol extract (APEE) against Streptococcus mutans, one of the major strains for dental caries, and Porphyromonas gingivalis, one of the critical strains for periodontal disease. The antibacterial activity of APEE was analyzed by disk diffusion, minimum inhibitory concentration (MIC), and minimum bactericidal concentration (MBC) assays. In addition, it was also analyzed the inhibitory effect of APEE on bacterial growth and biofilm formation against both oral pathogens. APEE exhibited its antibacterial effect through the inhibited bacterial diffusion as well as low concentration of MIC and MBC. In addition, APEE significantly inhibited not only bacterial growth but also biofilm formation in a dose-dependent manner. Consequently, APEE showed potent antibacterial activity against both S. mutans and P. gingivalis, which indicates that APEE might be used as a potential antibacterial material for the improvement of oral healthcare.
Bacterial infection after implant installation or bone graft is a serious complication. Bone grafts represent a temporary foreign body lacking vascularisation and are therefore of increased susceptibility to infection, which may be introduced either intraoperatively or postoperatively. Bone graft-associated infections are due to biofilm formation on the surface of the bone graft and often require removal of the infected bone graft with substantial graft failure. In this review, the implant and graft related infection, the role of biofilm and the management will be discussed.
Kim, Hyeon Joong;Lee, Jae Hoon;Ahn, Dong Uk;Paik, Hyun-Dong
한국축산식품학회지
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제40권6호
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pp.1001-1013
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2020
The formation of biofilms on the enamel surface of teeth by Streptococcus mutans is an important step in dental plaque formation, demineralization, and early caries because the biofilm is where other bacteria involved in dental caries attach, grow, and proliferate. The objectives of this study were to determine the effect of phosvitin (PSV) on the biofilm formation, exopolysaccharides (EPS) production, adherence activity of S. mutans, and the expression of genes related to the compounds essential for biofilm formation (quorum-sensing inducers and components of biofilm matrix) by S. mutans. PSV significantly reduced the biofilm-forming activity of S. mutans and increased the degradation of preformed biofilms by S. mutans. PSV inhibited the adherence activity of S. mutans by 31.9%-33.6%, and the production of EPS by 62%-65% depending upon the strains and the amount of PSV added. The expressions of genes regulating the production of EPS and the quorum-sensing-inducers (gtfA, gtfD, ftf, relA, vicR, brpA, and comDE) in all S. mutans strains were down-regulated by PSV, but gtfB was down-regulated only in S. mutans KCTC 5316. Therefore, the anti-biofilm-forming activity of PSV was accomplished through the inhibition of biofilm formation, adherence activity, and the production of quorum-sensing inducers and EPS by S. mutans.
Background: Some studies confirm the reduction of the number of Streptococcus mutans in saliva and dental plaque by Lactobacillus, however, these effects are not always confirmed in in vitro and clinical studies, and only the risk of dental caries has been reported. Our in vitro study aimed to reveal microbial and biochemical changes in the single cultures of S. mutans, Lactobacillus casei and Aggregatibactor actinomycetemcomitans and co-cultures of S. mutans and L. casei or A. actinomycetemcomitans according to sucrose concentration. We also aimed to confirm the anti-oral bacterial and anti-biofilm activities of L. casei and A. actinomycetemcomitans against S. mutans according to sucrose concentration. Methods: S. mutans (KCCM 40105), L. casei (KCCM 12452), and A. actinomycetemcomitans (KCTC 2581) diluted to 5×106 CFU/ml were single cultured, and L. casei or A. actinomycetemcomitans applied at concentrations of 10%, 20%, 30% and 40% to S. mutans were co-cultured with selective medium containing 0%, 1% and 5% sucrose at 36.5℃ for 24 hours. Measurements of bacterial growth value and acid production, disk diffusion and biofilm formation assays were performed. Results: In the medium containing sucrose, the bacterial growth and biofilm formation by S. mutans, L. casei, and A. actinomycetemcomitans were increased. In contrast, 30% and 40% of L. casei in the medium containing 0% sucrose showed both anti-oral bacterial and anti-biofilm activities. This implies that L. casei can be used as probiotic therapy to reduce S. mutans in a 0% sucrose environment. Conclusion: The concentration of sucrose in the oral environment is important for the control of pathogenic bacteria that cause dental caries and periodontitis. To apply probiotic therapy using L. casei for S. mutans reduction, the concentration of sucrose must be considered.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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