Foot-and-mouth disease virus (FMDV) is a small single-stranded RNA virus which belongs to the family Picornaviridae, genus Apthovirus. It is a principal cause of FMD which is highly contagious in livestock. In a wild type virus infection, infected animals usually elicit antibodies against structural and non-structural protein of FMDV. A structural protein, VP1, is involved in neutralization of virus particle, and has both B and T cell epitopes. A RNA-dependent RNA polymerase, 3D, is highly conserved among other serotypes and strongly immunogenic, therefore, we selected VP1 and 3D as vaccine targets. VP1 and 3D genes were codon-optimized to enhance protein expression level and cloned into mammalian expression vector. To produce recombinant protein, VP1 and 3D genes were also cloned into pET vector. The VP1 and 3D DNA or proteins were co-immunized into 5 weeks old BALB/C mice. Antigen-specific serum antibody (Ab) responses were detected by Ab ELISA. Cellular immune response against VP1 and 3D was confirmed by ELISpot assay. The results showed that all DNA- and protein-immunized groups induced cellular immune responses, suggesting that both DNA and recombinant protein vaccine administration efficiently induced Ag-specific humoral and cellular immune responses.
Kim, Na-Young;Sohn, He-Kwang;Choe, Joon-Ho;Park, Sang-Dai;Seong, Rho-Hyun
Animal cells and systems
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v.3
no.3
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pp.337-341
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1999
Hepatitis C virus (HCV) is a positive strand RNA virus of the Flaviviridae family and the major cause of post-transfusion non-A, non-B hepatitis. Vaccine development for HCV is essential but has been slowed by poor understanding of the type of immunity that naturally terminates HCV infection. The DNA-based immunization technique offers the potential advantage of including cellular immune responses against conserved internal proteins of a virus, as well as the generation of antibodies to viral surface proteins. Here, we demonstrate that cell lines expressing the HCV core and/or NS3 proteins can induce a specific CTL response in mice, and these results suggest a possibility that the HCV core and NS3 DNA can be used to induce CTL activity against the antigen in mice and can be further developed as a therapeutic and preventive DNA vaccine.
The advantages of replicon vectors of RNA viruses include a high ability to stimulate innate immunity and exponential amplification of target mRNA leading to high expression of foreign antigens. The present study aimed to construct a DNA-layered nervous necrosis virus (NNV) replicon vector system in which the capsid protein gene was replaced with a foreign antigen gene and to compare the efficiency of foreign antigen expression between the conventional DNA vaccine vector and the present replicon vector. We presented the first report of a nodavirus DNA replicon-based foreign antigen expression system. Instead of a two-vector system, we devised a one-vector system containing both an NNV RNA-dependent RNA polymerase cassette and a foreign antigen-expressing cassette. This single-vector approach circumvents the issue of low foreign protein expression associated with the low co-transfection efficiency of a two-vector system. Cells transfected with a vector harboring hammerhead ribozyme-fused RNA1 and RNA2 (with the capsid gene ORF replaced with VHSV glycoprotein ORF) exhibited significantly higher transcription of the VHSV glycoprotein gene compared to cells transfected with either a vector without hammerhead ribozyme or a conventional DNA vaccine vector expressing the VHSV glycoprotein. Furthermore, the transcription level of the VHSV glycoprotein in cells transfected with a vector harboring hammerhead ribozyme-fused RNA1 and RNA2 showed a significant increase over time. These results suggest that NNV genome-based DNA replicon vectors have the potential to induce stronger and longer expression of target antigens compared to conventional DNA vaccine vectors.
Foot-and-mouth disease (FMD) is a highly contagious disease of mammals and has a great potential for causing severe economic loss in susceptible cloven-hoofed animals, such as cattle, pigs, sheep, goats and buffalo. FMDV, a member of the Aphthovirus genus in the Picornaviridae family, is a non-enveloped icosahedral virus that contains a positive sense RNA of about 8.2 kb in size. The genome carries one open reading frame consisting of 3 regions: capsid protein coding region P1, replication related protein coding region P2, and RNA-dependent RNA polymerase coding region P3. FMDV infects pharynx epithelial cell in the respiratory tract and viral replication is active in lung epithelial cell. Morbidity is extremely high. A FMD outbreak in Korea in 2002 caused severe economic loss. Although intense research is undergoing to develop appropriate drugs to treat FMDV infection, there is no specific therapeutic for controlling FMDV infection. Moreover, there is an increasing demand for the development of vaccine strategies against FMDV infection in many countries. In this report, more effective prevention strategies against FMDV infection were reviewed.
The development of new strategies for vaccine delivery for generating protective and long-lasting immune responses has become an expanding field of research. In the last years, it has been recognized that bacteriophages have several potential applications in the biotechnology and medical fields because of their intrinsic advantages, such as ease of manipulation and large-scale production. Over the past two decades, bacteriophages have gained special attention as vehicles for protein/peptide or DNA vaccine delivery. In fact, whole phage particles are used as vaccine delivery vehicles to achieve the aim of enhanced immunization. In this strategy, the carried vaccine is protected from environmental damage by phage particles. In this review, phage-based vaccine categories and their development are presented in detail, with discussion of the potential of phage-based vaccines for protection against microbial diseases and cancer treatment. Also reviewed are some recent advances in the field of phagebased vaccines.
This study aimed to evaluate the efficacy of fructose-1,6-bis phosphate aldolase (SMALDO) DNA vaccination against Schistosoma mansoni infection using different routes of injection. The SMALDO has been cloned into the eukaryotic expression vector pcDNA3.1/V5-His TOPO-TA and was used in injecting Swiss albino mice intramuscularly (IM), subcutaneously (SC), or intraperitoneally (IP) ($50{\mu}g/mouse$). Mice vaccinated with non-recombinant pcDNA3.1 served as controls. Each group was immunized 4 times at weeks 0, 2, 4, and 6. Two weeks after the last booster dose, all mice groups were infected with 80 S. mansoni cercariae via tail immersion. At week 8 post-infection, animals were sacrificed for assessment of parasitological and histopathological parameters. High anti-SMALDO IgG antibody titers were detected in sera of all vaccinated groups (P<0.01) compared to the control group. Both the IP and SC vaccination routes resulted in a significant reduction in worm burden (46.2% and 28.9%, respectively, P<0.01). This was accompanied by a significant reduction in hepatic and intestinal egg counts (41.7% and 40.2%, respectively, P<0.01) in the IP group only. The number of dead eggs was significantly increased in both IP and IM groups (P<0.01). IP vaccination recorded the highest significant reduction in granuloma number and diameter (54.7% and 29.2%, respectively, P<0.01) and significant increase in dead miracidia (P<0.01). In conclusion, changing the injection route of SMALDO DNA vaccination significantly influenced the efficacy of vaccination. SMALDO DNA vaccination via IP route could be a promising protective and antipathology vaccine candidate against S. mansoni infection.
Kim, Byong-Moon;Lee, Dong-Sop;Kim, Chae-Young;Son, Mi-Won;Sung, Young-Chul;Kim, Won-Bae
Proceedings of the PSK Conference
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2002.10a
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pp.423.2-424
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2002
The present study evaluates the pharmacokinetics and tissue distribution of GX-12, a multiple plasmid DNA vaccine for the treatment of HIV-1 infection. PCR analysis after i.v. injection in mice showed that plasmid DNA was rapidly degraded in blood with a half-life of 1.34 min and was no longer detectable at 90 min post-injection. Plasmid DNA concentration also rapidly declined at the injection site after i.m. injection. with less than 1 % of the initial concentration remaining at 90 min post-injection. (omitted)
Background: Chronic infection with hepatitis B virus (HBV) affects about 350 million people worldwide, which have a high risk of development of cirrhosis and hepatocellular carcinoma. Treatment of chronic HBV infection relies on IFN-${\alpha}$ or lamivudine. However, interferon-${\alpha}$ is effective in only about 30% of patients. Also, the occurrence of escape mutations limits the usage of lamivudine. Therefore, the development and evaluation of new compounds or approaches are urgent. Methods: We comparatively evaluated DNA and adenoviral vaccines expressing HBV antigens, either alone or in combined regimens, for their ability to elicit Th1-type immune responses in Balb / c mice which are believed to be suited to resolve HBV infection. The vaccines were tested with or without a genetically engineered IL-12 (mIL-12 N220L) which was shown to enhance sustained Th1-type immune responses in HCV E2 DNA vaccine. Results: Considering the Th1-type cytokine secretion and the IgG2a titers, the strongest Th1-type immune response was elicited by the DNA prime-adenovirus boost regimen in the presence of mIL-12 N220L. In addition, the codelivery of mIL-12 N220L modulated differentially the immune responses by different vaccination regimens. Conclusion: Our results suggest that the DNA prime-adenovirus boost regimen in the presence of mIL-12 N220L may be the best candidate for HBV vaccine therapy of the regimens tested in this study and will be worthwhile being evaluated in chronic HBV patients.
Early and accurate detection of pathogens is important to improve clinical outcomes of bloodstream infections (BSI), especially in the case of drug-resistant pathogens. In this study, we aimed to develop a culture-independent digital PCR (dPCR) system for multiplex detection of major sepsis-causing gram-negative pathogens and antimicrobial resistance genes using plasma DNA from BSI patients. Our duplex dPCR system successfully detected nine targets (five bacteria-specific targets and four antimicrobial resistance genes) through five reactions within 3 hours. The minimum detection limit was 50 ag of bacterial DNA, suggesting that 1 CFU/ml of bacteria in the blood can be detected. To validate the clinical applicability, cell-free DNA samples from febrile patients were tested with our system and confirmed high consistency with conventional blood culture. This system can support early identification of some drug-resistant gram-negative pathogens, which can help improving treatment outcomes of BSI.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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