Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제34권5호
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pp.509-517
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2008
DNA 손상 치유 유전자 연구를 기초로 한 임상적 접근이 새로운 치료방법으로 떠오르고 있다. 많은 연구들이 중요한 DNA 수복유전자의 다형성을 찾아내어 각각의 단백질의 활동성에 대한 영향을 알아내고 특정한 치료법을 찾아내고 임상적 적용을 시도하고 결과를 평가하였다. 그 결과 암 치료에서 정상 세포와 암세포에서 DNA 수복 유전자의 발현 분석은 화학요법이나 방사선 치료에서 개인맞춤형 치료법을 가능하게 하고 있다. 예를 들어, NER이 결핍된 종양은 cisplatin 치료에 민감성을 나타내고, MMR 결핍세포는 알킬화 화학요법 약제에 높은 내성을 나타낸다. 선천성 비폴립성 결장암과 같은 MMR 결손종양 또한 알킬화 화학요법 약제에 의한 치료에 내성을 가진다. 신경교종(glioma)에서 MGMT 유전자 프로모터가 흔히 메틸화되는데 이것은 유전자 발현이 억제되고 알킬화 화학요법제에 대한 반응성을 증가시킨다. 향후 구강악안면외과 영역에서도 구강암의 발생의 위험성을 증가시킬 수 있는 더 많은 DNA 수복 유전자의 다형성을 발굴하고 임상적으로 개인맞춤형 치료법을 개발하고 적용할 수 있는 많은 연구가 필요할 것으로 사료된다.
2-Deoxyribonolactone (dL) arises as a major DNA damage induced by a variety of agents, involving free radical attack and oxidation of C1'-deoxyribose in DNA. We investigated whether dL lesions can be repaired in mammalian cells and the mechanisms underlying the role of DNA polymerase $\beta$ in processing of dL lesions. Pol $\beta$ appeared to be trapped by dL residues, resulting in stable DNA-protein cross-links. However, repair DNA synthesis at site-specific dL sites occurred effectively in cell-free extracts, but predominantly accompanied by long-patch base excision repair (BER) pathway. Reconstitution of long-patch BER demonstrated that FEN1 was capable of removing the displaced flap DNA containing a 5'-dL residue. Cellular repair of dL lesions was largely dependent on the DNA polymerase activity of Pol $\beta$. Our observations reveal repair mechanisms of dL and define how mammalian cells prevent cytotoxic effects of oxidative DNA lesions that may threaten the genetic integrity of DNA.
Lin, Tao;Sun, Ling;Lee, Jae Eun;Kim, So Yeon;Jin, Dong Il
Journal of Animal Science and Technology
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제63권5호
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pp.984-997
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2021
This study sought to evaluate DNA damage and repair in porcine postovulatory aged oocytes. The DNA damage response, which was assessed by H2A.X expression, increased in porcine aged oocytes over time. However, the aged oocytes exhibited a significant decrease in the expression of RAD51, which reflects the DNA damage repair capacity. Further experiments suggested that the DNA repair ability was suppressed by the downregulation of genes involved in the homologous recombination (HR) and nonhomologous end-joining (NHEJ) pathways. The expression levels of the cell cycle checkpoint genes, CHEK1 and CHEK2, were upregulated in porcine aged oocytes in response to induced DNA damage. Immunofluorescence results revealed that the expression level of H3K79me2 was significantly lower in porcine aged oocytes than in control oocytes. In addition, embryo quality was significantly reduced in aged oocytes, as assessed by measuring the cell proliferation capacity. Our results provide evidence that DNA damage is increased and the DNA repair ability is suppressed in porcine aged oocytes. These findings increase our understanding of the events that occur during postovulatory oocyte aging.
53BP1 is an important genome stability regulator, which protects cells against double-strand breaks. Following DNA damage, 53BP1 is rapidly recruited to sites of DNA breakage, along with other DNA damage response proteins, including ${\gamma}$-H2AX, MDC1, and BRCA1. The recruitment of 53BP1 requires a tandem Tudor fold which associates with methylated histones H3 and H4. It has already been determined that the majority of DNA damage response proteins are phosphorylated by ATM and/or ATR after DNA damage, and then recruited to the break sites. 53BP1 is also phosphorylated at several sites, like other proteins after DNA damage, but this phosphorylation is not critically relevant to recruitment or repair processes. In this study, we evaluated the functions of phosphor-53BP1 and the role of the BRCT domain of 53BP1 in DNA repair. From our data, we were able to detect differences in the phosphorylation patterns in Ser25 and Ser1778 of 53BP1 after neocarzinostatin-induced DNA damage. Furthermore, the foci formation patterns in both phosphorylation sites of 53BP1 also evidenced sizeable differences following DNA damage. From our results, we concluded that each phosphoryaltion site of 53BP1 performs different roles, and Ser1778 is more important than Ser25 in the process of DNA repair.
Inhibition of heat shock protein 90 (Hsp90) leads to inappropriate processing of proteins involved in DNA damage repair pathways after DNA damage and may enhance tumor cell radio- and chemotherapy sensitivity. To investigate the potentiation of antitumor efficacy of lidamycin (LDM), an enediyne agent by the Hsp90 inhibitorgeldanamycin (GDM), and possible mechanisms, we have determined effects on ovarian cancer SKOV-3, hepatoma Bel-7402 and HepG2 cells by MTT assay, apoptosis assay, and cell cycle analysis. DNA damage was investigated with H2AX C-terminal phosphorylation (${\gamma}H2AX$) assays. We found that GDM synergistically sensitized SKOV-3 and Bel-7402 cells to the enediyne LDM, and this was accompanied by increased apoptosis. GDM pretreatment resulted in a greater LDM-induced DNA damage and reduced DNA repair as compared with LDM alone. However, in HepG2 cells GDM did not show significant sensitizing effects both in MTT assay and in DNA damage repair. Abrogation of LDM-induced $G_2/M$ arrest by GDM was found in SKOV-3 but not in HepG2 cells. Furthermore, the expression of ATM, related to DNA damage repair responses, was also decreased by GDM in SKOV-3 and Bel-7402 cells but not in HepG2 cells. These results demonstrate that Hsp90 inhibitors may potentiate the antitumor efficacy of LDM, possibly by reducing the repair of LDM-induced DNA damage.
DNA damage by UV and environmental agents are the major cause of genomic instability that needs to be repaired, otherwise it give rise to cancer. Accordingly, mammalian cells operate several DNA repair pathways that are not only responsible for identifying various types of DNA damage but also involved in removing DNA damage. In mammals, nucleotide excision repair (NER) machinery is responsible for most, if not all, of the bulky adducts caused by UV and chemical agents. Although most of the proteins involved in NER pathway have been identified, only recently have we begun to gain some insight into the mechanism by which proteins recognize damaged DNA. Binding of Xeroderma pigmentosum group C protein (XPC)-hHR23B complex to damaged DNA is the initial damage recognition step in NER, which leads to the recruitment of XPA and RPA to form a damage recognition complex. Formation of damage recognition complex not only stabilizes low affinity binding of XPA to the damaged DNA, but also induces structural distortion, both of which are likely necessary for the recruitment of TFIIH and two structure-specific endonucleases for dual incision.
Cells are constantly exposed to endogenous and exogenous chemical and physical agents that damage their genome by forming DNA lesions. These lesions interfere with the normal functions of DNA such as transcription and replication, and need to be either repaired or tolerated. DNA lesions are accurately removed via various repair pathways. In contrast, tolerance mechanisms do not remove lesions but only allow replication to proceed despite the presence of unrepaired lesions. Cells possess two major tolerance strategies, namely translesion synthesis (TLS), which is an error-prone strategy and an accurate strategy based on homologous recombination (homology-dependent gap repair [HDGR]). Thus, the mutation frequency reflects the relative extent to which the two tolerance pathways operate in vivo. In the present paper, we review the present understanding of the mechanisms of TLS and HDGR and propose a novel and comprehensive view of the way both strategies interact and are regulated in vivo.
The fetal central nervous system (CNS) is sensitive to diverse environmental factors, such as alcohol, heavy metals, irradiation, mycotoxins, neurotransmitters, and DNA damage, because a large number of processes occur during an extended period of development. Fetal neural damage is an important issue affecting the completion of normal CNS development. As many concepts about the brain development have been recently revealed, it is necessary to compare the mechanism of developmental abnormalities induced by extrinsic factors with the normal brain development. To clarify the mechanism of fetal CNS damage, we used one experimental model in which 5-azacytidine (5AZC), a DNA damaging and demethylating agent, was injected to the dams of rodents to damage the fetal brain. 5AzC induced cell death (apoptosis)and cell cycle arrest in the fetal brain, and it lead to microencephaly in the neonatal brain. We investigated the mechanism of apoptosis and cell cycle arrest in the neural progenitor cells in detail, and demonstrated that various cell cycle regulators were changed in response to DNA damage. p53, the guardian of genome, played a main role in these processes. Further, using DNA microarray analysis, tile signal cascades of cell cycle regulation were clearly shown. Our results indicate that neural progenitor cells have the potential to repair the DNA damages via cell cyclearrest and to exclude highly affected cells through the apoptotic process. If the stimulus and subsequent DNA damage are high, brain development proceeds abnormally and results in malformation in the neonatal brain. Although the mechanisms of fetal brain injury and features of brain malformation afterbirth have been well studied, the process between those stages is largely unknown. We hypothesized that the fetal CNS has the ability to repair itself post-injuring, and investigated the repair process after 5AZC-induced damage. Wefound that the damages were repaired by 60 h after the treatment and developmental processes continued. During the repair process, amoeboid microglial cells infiltrated in the brain tissue, some of which ingested apoptotic cells. The expressions of genes categorized to glial cells, inflammation, extracellular matrix, glycolysis, and neurogenesis were upregulated in the DNA microarray analysis. We show here that the developing brain has a capacity to repair the damage induced by the extrinsic stresses, including changing the expression of numerous genes and the induction of microglia to aid the repair process.
Ozone, an atmospheric pollutant, can damage similar UV and X-rays DNA and its components. It is possible then that the KNA damage produced by this gas are similar, to some extent, to those of radiations and that they could be repaired by the same DNA repair mechanisms. It has been observed in Escherichia coli that radiosensitive strains such as lex A, rec A and pol A, all deficient to some extent for DNA repair, are more sensitive to ozone than a wild type strain. We have thendetermined the ozone resistance and host-cell reactivation of ozone-damaged T3 phages for the E. coli double mutants pol A, lex A, uvr B, lex A, uvr A, rec A and rec A lox A. According to the results, the DNA polymerase 1 plays a key role in ozone resistance and Type 11 mechanism and/or shory patch excision repair are the most important for it. The interactions between the different DNA repair mechanisms are secondary. There is a strong correlation between ozone resistance and the capacity to reactivate T3 phages damaged by ozone.
Sirt1, a nicotinamide adenine dinucleotide ($NAD^+$)-dependent histone deacetylase, is known to deacetylate a number of proteins that are involved in various cellular pathways such as the stress response, apoptosis and cell growth. Modulation of the stress response by Sirtuin 1 (Sirt1) is achieved by the deacetylation of key proteins in a cellular pathway, and leads to a delay in the onset of cancer or aging. In particular, Sirt1 is known to play an important role in maintaining genomic stability, which may be strongly associated with a protective effect during tumorigenesis and during the onset of aging. In these studies, Sirt1 was generated in stably expressing cells and during the stimulation of DNA damage to examine whether it promotes survival. Sirt1 expressing cells facilitated the repair of DNA damage induced by either ionizing radiation (IR) or bleomycin (BLM) treatment. Fastened damaged DNA repair in Sirt1 expressing cells corresponded to prompt activation of Chk2 and ${\gamma}$-H2AX foci formation and promoted survival. Inhibition of Sirt1 enzymatic activity by a chemical inhibitor, nicotinamide (NIC), delayed DNA damage repair, indicating that promoted DNA damage repair by Sirt1 functions to induce survival when DNA damage occurs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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