Yellow tail (Seriola quinqueradiata) infected by Pasteurella piscicida have been occurred to mass mortality without showing apparent surface lesions in cage culture farms. In this case, it is necessary to consider countermeasure by rapid diagnosis of infected fish. The purpose of the present study was to investigate usefulness of the direct fluorescent antibody technique(FAT) for rapid diagnosis of pseudotuberclosis of cultured yellowtail caused by P. piscicida. Antibody produced by inoculating rabbit with formalin killed pseudotuberclosis bacteria antigen(strain KNP-2). Immunoglobulin-G(IgG) was purified from antisera by DEAE-cellulose column chromatography and conjugate with fluorescein isothiocyanate. Fluorescein-labeled antisera was purified by sephadex G-25 gel column chromatography. The fluorescein/protein molar ratio of labeled antisera was determined as 8.8-9.5. Diagnosis of cultured yellowtail was examined in cage culture farms which located in Tongyung, kyungnam from July to October 1990. The causative bacteria of pseudotuberclosis could be detected within two hours after the specimens were transferred to the laboratory for FAT, and it showed that FAT could be adapted as a rapid and accurate diagnostic method of pseudotuberclosis in yellowtail.
Pyrocatechase as a phenolytic dioxygenase was extracted from the benzoate-induced cells of a soil bacterium, a member of Pseudomonadaceae, and purified partially by DEAE-cellulose ion-exchange chromatography and Sephadex G-75 gel filtration. Final preparation of the enzyme yielding 200 fold purification over the crude extracts showed a specific activity of about 40 ${\mu}moles$ per minute per mg protein based on catechol as the substrate. The enzyme showed a very limited substrate specificity towards catechol for its catalytic activity. Based on the inhibition study with the substrate analogues, it was assumed that ortho dihydroxy groups on the aromatic ring may participate in the enzyme-substrate binding. The $K_m$ value for catechol was obtained as $1.9{\times}10^{-6}M$, and the optimum activity of the enzyme was obtained at the pH range of 7∼10 and $35^{\circ}C$. With SH-group blocking agents the enzyme was inhibited seriously. The activity of enzyme was also inhibited by the addition of some heavy metals, $Ag^+$ and $Cu^{2+}$, but was not affected by EDTA. General property of the enzyme was characterized and the possible nature of the enzyme active center was also discussed.
The cell cultures and crude extracts of Bacillus sphaericus 1593 K-5 and its mutant Spo-Dl216 were respectively bioassayed against Culex pipiens var. pollens mosquito larvae. The B. sphaeriucs 1593 K-5 showed toxic activity against the larvae. LC$_{50}$ values (cells/$m\ell$) was 2.6$\times$10$^2$. Also the LC$_{50}$ ($\mu\textrm{g}$ Protein/$m\ell$) of the crude extract was 10.26. However, B. sphaericus Spo-Dl216 didn't show toxic activity against the larvae. The soluble cytoplasmic toxin in broken B. sphaeriucs 1593k-5 cells was partially purified by gel permeation chromatography and ion exchange chromatography. Among the fractions of the gel permeation chromatography only a single fraction was found to be toxic. LC$_{50}$ values ($\mu\textrm{g}$ protein/$m\ell$) of the active fraction was 0.182. The active fraction of the gel permeation was subjected to ion exchange chromatography. Only a single fraction showed toxic activity and its LC$_{50}$ values ($\mu\textrm{g}$ protein/$m\ell$) was 0.02..02.
Kim, Young-Ho;Kim, Youn-Sook;Lee, Jae-Ran;Lee, Eun-Kyung
Journal of Microbiology and Biotechnology
/
v.3
no.1
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pp.31-38
/
1993
A bacterial strain KY-l isolated from sewage was able to produce an extracellular agarase(agarose 4-glycanohydrolase. EC 3.2.1.81). The strain KY-1 was identified as Cytophaga fermentans subsp. agarovorans based on its morphological and physiological characteristics. The agarase was purified by ammonium sulfate precipitation followed by DEAE-Sephadex A-50. Bio-Gel P-100. and CM-Cellulose column chromatography. The molecular weight of the purified enzyme was 24 kDa by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The optimum temperature and pH for the enzyme activity were 30^{circ}C and 7.5, respectively. The enzyme activity was significantly inhibited in the presence of 0.1 mM $HgCl_2$. whereas it was elevated 3 times by $MnSO_4$ at 1 mM concentration. The Km value and Vmax were 16.67 mg/ml and 3.77 unit/ml.min. The agarase gene was cloned into Escherichia coli MC1061 using the plasmid vector pBR322. A 1.4 Kb DNA fragment of PstI-digested chromosomal DNA of C. fermentans KY-l was inserted into the PstI site of pBR322. expressed in the E. coli. and up to 60% of the total enzyme was extracellularly secreted. Enzymatic properties of the extracellular agarases produced by both the transformant and the donor were very similar in terms of optimal pH and temperature.
A 50 KD metalloprotease of Serratia marcesrens ATCC 21074 was purified by ammoniumsulfate precipitation. DEAE-cellulose ion exchange chromatography, and sephadex ti-100gel filtration. Optimal pH and temperature of enzyme were pH 8.0 and 37"C, respectively.This enzyme was stable in the ranges of 10-37$^{\circ}$C and pH 5.0--11.0. Thermal denaturationwas investigated by differential scanning calorimetry. Onset temperature of denaturationand endothermic peak temperature were 376$^{\circ}$C and 43.2"C. re:,pectively. The denaturationenthalpy was -8.4mJimg. The purified metalloprotease was ri.sistant to autodigestion for24 hr at 30$^{\circ}$C. Metalloprotease in culture supernatant was also resistant to autodigestionin this conditions. Heat-denatured enzyme. however. was rapidly digested by the nativeenzyme. The metalloprotease was stable to proteolytic digestion by mammalian proteasessuch as trypsin. a-chymotrypsin, and elastase. But the enzyme was easily digested bybacterial protease. thermolysin.bacterial protease. thermolysin.
For the production and purification of a single chain human insulin precursor, four types of fusion peptides $\beta$-galactosidase (LacZ), maltose binding protein (MBP), glutathione-S-transferase (GST), and (His)(sub)6-tagged sequence (HTS) were investigated. Recombinant E. coli harboring hybrid genes was cultivated at 37$\^{C}$ for 1h, and gene induction occurred when 0.2mM of isopropyl-D-thiogalactoside (IPTG) was added to the culture broth, except for E. coli BL21 (DE3) pLysS harboring a pET-BA cultivation with 1.0mM IPTG, followed by a longer than 4h batch fermentation respectively. DEAE-Sphacel and Sephadex G-200 gel filtration chromatography, amylose affinity chromatography, glutathione-sepharose 4B affinity chromatography, and a nickel chelating affinity chromatography system as a kind of immobilized metal ion affinity chromatography (IMAC) were all employed for the purification of a single chain human insulin precursor. The recovery yields of the HTS-fused, GST-fused, MBP-fused, and LacZ-fused single chain human insulin precursors resulted in 47%, 20%, 20%, and 18% as the total protein amounts respectively. These results show that a higher recovery yield of the finally purified recombinant peptides was achieved when affinity column chromatography was employed and when the fused peptide had a smaller molecular weight. In addition the pET expression system gave the highest productivity of a fused insulin precursor due to a two-step regulation of the gene expression, and the HTS-fused system provided the highest recovery of a fused insulin precursor based on a simple and specific separation using the IMAC technique.
A thiol-specific antioxidant protein (TSA or TPx) was purified from Halophilic archeabacteria Halococcus agglomeratus, by DEAE-Cellulose, Phnyl, sepharose, Sephadex G-75, Sephacryl S-100, Sephacryl S-200, and Q-Wepharose FF. This protein exhibited the preventeive effect against the inactivation of glutamine synthehase (GS) activity was support by a thiol-reducing equicalent such as dithiothreitol. TPx activity was maximal at NaCl concentration above 500mM. The molecular mass of the protein was determinated to be 22-kDa by SDS-PAGE. The TPx purified from Halococcus agglomeratus seems to be similar to other TPx family, except for the salt requirement for the maximal antioxidant activity.
A thiol protease has been isolated and partially purified from encysted brine shrimp Artemia franciscana using a four-step procedure(filtration, salting out, gel filtration and ion exchange chromatography). The optimum pH of the enzyme for caseinolytic activity was appeared to be 3.0, and the enzymematic activity was stable up to pH 6.0 but lost completely at the pH higher than 8.0. The optimal temperature of the enzyme was appeared to be 35$^{\circ}$C, and ninety percent of the enzyme activity was lost at 45$^{\circ}$C. Various metal ions, e.g., zinc, copper, iron, inhibited the enzyme activity; however, heavy metal chelator, e.g., EDTA, stimulated the enzyme activity. The protease was concluded to be a member of the thiol group protease, since it was inhibited by thiol protease inhibitors and iodoacetate. The protease was also concluded to be a acid protease based on optimum pH.
Park, Sung-Won;Her, Nam-Yun;Kim, Dong-Seob;Park, Sun-Jin;Lee, Han-Seung;Park, Hak-Jong;Yu, Ju-Hyun
Preventive Nutrition and Food Science
/
v.2
no.2
/
pp.174-179
/
1997
CMCase produced by recombinant E. coli JM109 (pCEH#4) containing CMCase gene from Cellulomonas sp. YE-5 was purified to 24.3 fold and 2.6% yield by ammoniumsulfate precipitation, DEAE-cellulose column chromatography and gel filtration on Sephadex G-100. The optimum pH and temperature for CMCase activity were pH 7.0 and 5$0^{\circ}C$. The enzyme was stable between pH 5.0 and 10.0, and up to 6$0^{\circ}C$. The molecular weight of he enzyme was estimated to be approximately 40,000 daltons by SDS-PAGE. Analysis of the amino acid composition showed that the enzyme contained many glycines and acidic amino acids. The enzyme was an endo-type CMCase and the final enzyme reaction product from hydrolysis of Cm-cellulose by the enzyme was cellobiose. {TEX}$K_{M}${/TEX} value determined with CM-cellulose was 1.28mM.
Superoxide dismutase (SOD) from tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) fruit was purified by ammonium sulphate precipitation, Sephadex G-100 and DEAE-cellulose column chromatographies. A 22 fold purification and an overall yield of 44% were achieved. The purified enzyme was a homodimer with Mr 37.1 kDa and subunit Mr 18.2 kDa as judged by SDS-PAGE. SOD showed $K_{m}$ values of 25 ${\times}$ 10$^{-6}$ M and 1.7 ${\times}$ 10$^{-6}$ M for nitroblue tetrazolium (NBT) and riboflavin as substrates, respectively. The enzyme was thermostable upto 5$0^{\circ}C$ and exhibited pH optima of 7.8. The effect of metal ions and some other compounds on enzyme activity was studied. $Co^{2+}$ and $Mg^{2+}$ were found to enhance relative enzyme activities by 27 % and 73 %, respectively, while M $n^{2+}$ inhibited the SOD activity by 64%. However, $Ca^{2+}$ and C $u^{2+}$ had no effect on enzyme activity. Other compounds like $H_2O$$_2$ and Na $N_3$ inhibited enzymatic activities by 60% and 32%, respectively, while sodium dodecyl sulphate (SDS), chloroform plus ethanol and $\beta$-mercaptoethanol had no effect on the activity of SOD. of SOD.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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