생물학적 난분해성 물질인 폴리비닐 알콜(PVA : Polyvinyl alcohol)을 탄소원 및 에너지원으로 이용하는 Xanthomonas campestris J2Y로부터 PVA oxidase를 생산하여 정제하기 위하여 PVA가 탄소원으로 첨가된 배지에서 진탕배양한 배양액을 원심분리한 후 상등액을 10 mM phosphate buffer(pH 7.5)로 평형시킨 DEAE -cellulose를 통과시켜 얻은 분획을 사용하여 DEAE-cellulose와 Sephadex G-150을 이용한 Gel filtration을 통하여 PVA oxidase를 정제하였다. 정제된 PVA oxidase는 polyacrylamide gel 전기영동으로 단일밴드로 확인되었으며 SDS-polyacrylamide gel 전기영동과 Sephadex G-150 column chromatography를 통해 측정한 결과 55,000 daltons 이었다. PVA oxidase의 최적 pH는 7이고 최적온도는 $37^{\circ}C$였다. 열 안정성은 $50^{\circ}C$까지는 70% 이상의 안정성을 나타내었고, pH에 대한 안정성은 5-11에서 비교적 안정하였다. 금속이온에 대한 영향은 $Ag^{2+},\;Hg^{2+},\;Sn^{2+}$ 등에서는 아주 강한 저해를 받았고, $Co^{2+},\;Fe^{2+},\;Zn^{2+},\;Pb^{2+}$에서는 50% 정도의 저해를 받았다. 반면에 $Mn^{2+},\;Cu^{2+}$는 효소활성을 증가시켰다. PVA에 정제 PVA oxidase의 Km치는 $7.04{\times}10\;^2mmol/{\ell}$이었다.
Nocardioides sp. J-275L이 생산하는 세포의 adenine deaminase를 황산 암모늄 분획 , DEAE- Cellulose column c chromatography, DEAE-Sephadex A-50 column chromatography 및 Sephacryl S-200 superfine gel filtration 등의 파 정에 의해 5.2%의 수율로서 3889.5배로 부분정제하였으며, 본 효소의 분자량은 Sephacry] S-200 superfine gel에 의해 39, O 000 부근으로 측정되었다. 본 효소의 안정 pH와 온도는 pH7.와 $40^{\circ}C$로 나타났으며, 15%의 glycerol이 효소를 안정화시키는데 효과적이었다. 효소의 활성 최적 pH와 온도는 pH 7. 5 $40^{\circ}C$였다. 효소의 ademne에 대한 Km 값은 $7.4\times 10^{-5}$M로 측정되었으며, 검토된 punne a analogue 중에서 6-chloropurine. 2,6-diaminopurine, 6-bromopurine, 4-aminopyrazolo[3,4-dJ pyridine, 8-azaadenine 이 기질로 이용되었다. 본 효소는 0.1mM의 $Cu^{2+}, Fe^{3+}, Pb^{2+}, Hg^{2+}, Ag^{+}$ 등에 의해 활성이 크게 저해되었으며, $Pb^{2+}, Hg^{2+}, Ag^{+}$에 의해 저해된 효소의 활성은 EDTA에 의해 회복되었다. 검토된 일반적인 효소 저해제 중에서 1mM의 $\alpha$,$\alpha$'-dipyridyl, pentachlorophenol, and pCMB 등에 의해 효소의 활성 이 크게 저해되는 것으로 나타났다.
Cloned staphylococcal peptidoglycan hydrolase was used in determining the physiological characteristics of peptidoglycan hydrolase. This enzyme hydrolyzed the bacterial cell walls and released the N-terminal alanine, but not the reducing groups. This cloned gene product was localized in the cytoplasm of transformed Escherichia coli. Activity gels indicated the enzyme had an Mr of about 54,000, which was consistent with the deduced Mr from sequencing of the cloned gene. The activity bound to CM-cellulose but not DEAE-cellulose resin, indicating it as a basic protein. Enhanced enzyme activity in a low concentration of cations, and inhibited enzyme activity in a solution with dissolved phospholipids, suggested that the activity and the availability of this basic protein may be regulated between negatively charged and positively charged cellular molecules. The activity against boiled crude cell wall was much greater than against purifed cell wall, suggesting protein associated with crude cell wall may aid in the binding of the peptidoglycan hydrolase The cloned peptidoglycan hydrolase showed positive activity on whole cells of some lysostaphin-resistant coagulase-negative staphylococci. The cloned enzyme may be an alternative for lysostaphin for lysis of staphylococci.
The polysaccharides were extracted from fruiting body, mycelia, and cell-free broth of Agaricus blazei Murill. The crude polysaccharides were obtained by the ethanol addtion. They were further purified using ion-exchange chromatography and gel chromatography. Ion-exchange chromatography using DEAE-cellulose column separated neutral and acidic polysaccharides. Neutral polysaccharides were then purified with gel filtration chromatography. For single peak obtained from gel filtration chromatography was molecular weight was measured with Sepharose CL-6B. The same procedure with acidic polysaccharides were performed to get the purified polysaccharides.
Glycogen synthetase[EC 2.4.1.21] in E. coli B was isolated and purified by sonication, ultracentri fugation, DEAE cellulose chromatography and gel chromatography. In the case of using glycogen or maltotriose as a primer in the enzyme reaction, 64% and 23.7% of labelled ADP glucose were incorporated into primer, respectively. 8.1% of labelled ADP glucose was polymerized into glycogen in enzymatic reaction without a primer.
The soluble cytochrome c-551 of photosynthetic bacterium, Rhodopseudomonas gelatinosa ATCC 17013 was purified through a sequene of four step chromatography including CM-cellulose ion-exchange chromatography, DEAE-Sephacel chromatography, Sephacryl s-200 gel permeation chromatography, and HPLC (SP-5PW). The molecular weight of the purified cytochrome c-551 was 14, 600 Da, and this protein shows the absorption peak at 551 nm, 522 nm, and 417 nm as the reduced form, and at 412 nm as the oxidized form. The cytochrome c-551 seems to be a substrate for the terminal oxidase in the electron transport chain.
Streptomyces속 균주가 생산하는 Phospholieste-rase를 몇가지 방법에 의하여 정제하여 그 성질을 조사 검토했다. 1) Sephadex G-50 및 DEAE-Cellulose Column Chromatography에 의하여 300배 정제하였으며 그 수율은 3.8%이었다. 2) b-PNPP을 기질로 해서 정제한 본 효소의 성질을 검토한 결과 본효소의 활성발현에 $Ca^{++}$ 이온이 필요했으며 $Ca^{++}$ 이온은 이 효소의 열안정성에도 도움을 주었다. 또 이효소의 최적작용 pH는 8.0부근이었으며 최적작용온도는 $50^{\circ}C$ 부근이었고 b-PNPP 을 기질로 한 Km 치 는 1.11mg/mι 이었다.
To find antitumor components in liquid cultured cell-free broth and the hot water extract from the fruiting body of Hericium erinaceus, polysaccharides were purified and fractionated by DEAE-cellulose ion exchage column chromatography and Sepharose CL-6B gel filtration chromatography. Among various crude polysaccharides and purified polysaccharides the fractions showing immune-activity were determined by NO assay.
Authrobacter sp. L-3이 생성하는 glucose isomerase를 DEAE-cellulose column chromatography법으로 2단계 NaCl농도 구배로 용출함으로서 순수분리하였다. 이것이 SDS-acrylamide gel electrophoresis상에서 단일띠를 보임으로서 매우 잘 분리되었음을 알 수 있었다. Glucose isomerase의 Km값과 Vmax값이 각각 0.175M, 0.29로 얻어졌다. 한편, SDS-acrylamide gel electrophoresis와 Sephadex-G10050에 의한 gel filtration으로부터 분자량이 각각 42,000과 180,000으로 얻어져, 이 효소는 분자량이 42,500인 4개의 subunit로 구성되었음을 알 수 있었다.
Reverse transcriptase가 유도되는 것을 SDS-PAGE 및 효소활성 분석으로 확인할 수 있었으며 효소의 정제를 위한 예비실험으로 ammonium sulfate 및 DEAE cellulose ion exchange chromatorgraphy를 시행하였을 때 specific activity의 증가를 보여주므로서 reverse transcriptase의 분자클로닝 후 발현된 효소가 활성을 갖고 있음을 알 수 있었다. pMAL; cRI 재조합 유전자에 있는 protease의 유전자 발현을 유도했을 때 E. coli세포의 성장에 toxic하게 작용함을 관찰할 수 있었다. 이는 발현된 protease가 E. coil의 번식에 영향을 주는 것으로 믿어지며 Protease의 유전자 발현을 위한 host의 선택, inducer의 첨가시간 등 실험조건의 확립이 필요할 것으로 사료된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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