The lectin was purified through 0.15 M NaCl extraction, ammonium sulfate precipitation, sepharose 4B affinity chromatography and gel filtration using sephadex G-150 from the leaves of Visum album collected in Mt. Duk Yu. The final gel filtration step resulted in 11.64 folds purification with 0.14% of recovery yield. We also performed biochemical characterization of the purified Visum album lectin. HPLC analysis of lectin purified by gel filtration revealed a singel peak. The analysis of the purified lectin by SDS-PAGE showed a tetramer composed of two identical subunits with molecular weights of 32 and 30 kDa. The lectin was a glycoprotein containing 14.4% carbohydrate, which consist of glucose, fructose, arabinose and xylose, and the amino acids such as phenylalanine, lysine and tyrosine. The purified lectin agglutinated human red blood cell types with similar potency, but when tested against red blood cells from mouse, bovine, rabbit, chicken and porcine, significant difference in potency were observed. Hemaggluting activity was inhibited by D-galactose, D-mannose, D-lactose and D-raffinose, but not by D-glucose, D-glucosamine, D-mannosamine, L-fructose, D-xylose, D-arabinose, D-galacturonic acid, D-fructose, L-rhamnose and N-acetyl-D-galactosamine. The optimal pH and thermal stability of the purified lectin were pH 4.0-7.0 and 20-5$0^{\circ}C$, respectively.
The baculovirus expression system is a powerful method for producing large amounts of the human erythrocyte-type glucose transport protein, heterologously. Characterization of the expressed protein is expected to show its ability to transport sugars directly. To achieve this, it is a prerequisite to know the properties of the endogenous sugar transport system in Spodoptera frugiperda Clone 21 (Sf21) cells, which are commonly employed as a host permissive cell line to support the baculovirus replication. The Sf21 cells can grow well on TC-100 medium that contains 0.1% D-glucose as the major carbon source, strongly suggesting the presence of endogenous glucose transport system. However, unlike the human glucose transport protein that has a broad substrate and inhibitor specificity, very little is known about the nature of the endogenous sugar transport system in Sf21 cells. In order to characterize further the inhibitor recognition properties of the Sf21 cell transporter, the ability of phloretin, cytochalasin B and D-fructose to inhibit 2-deoxy-D-glucose (2dGlc) transport was examined by measuring inhibition constants $(K_i)$. The $K_i's$ for reversible inhibitors were determined from plots of uptake versus inhibitor concentration. The 2dGlc transport in the Sf21 cells was very potently inhibited by phloretin, the aglucone of phlorizin with a $K_i$ similar to the value of about $2{\mu}M$ reported for inhibition of glucose transport in human erythrocytes. However, the Sf21 cell transport system was found to differ from the human transport protein in being much less sensitive to inhibition by cytochalasin B (apparent $K_i$ approximately $10\;{\mu}M$). In contrast, It is reported that the inhibitor binds the human erythrocyte counterpart with a $K_d$ of approximately $0.12\;{\mu}M$. Interestingly, the Sf21 glucose transport system also appeared to have high affinity for D-fructose with a $K_i$ of approximately 5mM, contrasting the reported $K_m$ of the human erythrocyte transport protein for the ketose of 1.5M.
An extracellular exoinulinase($2,1-\beta-D$ fructan fructanohydrolase, EC 3.2.1.7), which catalyzes the hydrolysis of inulin into fructose and glucose, was purified 23.5-fold by ethanol precipitation, followed by Sephadex G-100 gel permeation from a cell-free extract of Kluyveromyces marxianus YS-1. The partially purified enzyme exhibited considerable activity between pH 5 to 6, with an optimum pH of 5.5, while it remained stable(100%) for 3 h at the optimum temperature of $50^{\circ}C$. $Mn^{2+}\;and\;Ca^{2+}$ produced a 2A-fold and 1.2-fold enhancement in enzyme activity, whereas $Hg^{2+}\;and\;Ag^{2+}$ completely inhibited the inulinase. A preparation of the partially purified enzyme effectively hydrolyzed inulin, sucrose, and raffinose, yet no activity was found with starch, lactose, and maltose. The enzyme preparation was then successfully used to hydrolyze pure inulin and raw inulin from Asparagus racemosus for the preparation of a high-fructose syrup. In a batch system, the exoinulinase hydrolyzed 84.8% of the pure inulin and 86.7% of the raw Asparagus racemosus inulin, where fructose represented 43.6mg/ml and 41.3mg/ml, respectively.
This study examined the effects of temperature, D-psicose concentration, pH, and various amino acids on the Maillard browning reaction of D-psicose and glycine mixture and compared browning color intensity with those of other sugars, such as sucrose, D-glucose, D-fructose, and D-tagatose. When D-psicose (0.1 M) and glycine (0.1 M) mixture was heated at $70-100^{\circ}C$ for 5 hr, the absorbance at 420 nm increased with increasing reaction temperature and time. The Hunter a, b values, and color difference (${\Delta}E$) increased with increasing D-psicose concentration and pH within the range of pH 3-7 except at pH 6, while the L value decreased. The rate of Maillard browning reaction was in order of D-tagatose>D-psicose $\fallingdotseq$ D-fructose>D-glucose>sucrose. The browning color intensity of the D-psicose-basic and non-polar amino acids mixtures was higher than that of the D-psicose-acidic amino acids.
A steady-state kinetic study on a dye-coupled cytoplasmic polyol dehydrogenase from G. melanogenus was carried by the initial velocity measurements in the direction of the polyol oxidation and the product inhibition by D-fructose. For the initial rate experiments, D-mannitol and D-sorbitol were employed as the specific polyol substrates and 2,6-dichlorophenolin-dophenol (DPIP) as the specific cofactor substrate for the enzyme. When the polyol and DPIP were examined by varying one of substrates and by fixing the second, the corresponding reciprocal plots showed the typical parallel pattern. This suggests that the enzyme from G. melanogenus proceeds by a Ping Pong Bi-Bi mechanism in which the polyol may account as the first reactant-in, and the ketose formed as the first product-out, respectively. The product inhibition patterns obtained by D-fructose (one no-inhibition, one non-competitive, and two competitive) may also provide an additional conformatory evidence for the above mechanism. Based on the kinetic parameters obtained, it was also suggested that the rate-limiting step in the direction of polyol oxidation is associated with the release of the ketose from the Enzyme${\cdot}$Polyol complex.
For the structure determination of D-(+)-sucrose, which consists of ${\alpha}$-D-(+)-glucose and ${\beta}$-D-(+)-fructose, it was acetylated with acetic anhydride and triethyl amine, pyridine, zinc chloride, and sodium acetate as catalysts. The acetylated D-(+)-sucrose was acid-hydrolyzed using sulfuric acid and sodium chloride in methanolic solution. The structures of the reaction products were determined by $^1H$-NMR and $^{13}C$-NMR spectra. The yield of the acetylation indicated the high value in zinc chloride as 70% in zinc chloride catalyst. The acid-hydrolyzed product of the acetylated D-(+)-sucrose, 2,3,4,6,1',3',4',6'-octa-O-acetyl-D-(+)-sucrose, gave 2,3,4,6-tetra-O-acetyl-${\beta}$-D-(+)-glucose and it suggests that the acetylated D-(+)-sucrose was rearranged through the formation of oxonium ion by mutarotation in the 2,3,4,6-tetra-O-acetyl-${\alpha}$-D-(+)-glucose moiety and through the ring opening in the 1',3',4',6'-tetra-O-acetyl-${\beta}$-D-(+)-fructose moiety.
The baculovirus/Spodoptera frugiperda (Sf) cell system has become popular for the production of large amounts of the human erythrocyte glucose transporter, GLUT1, heterologously. However, it was not possible to show that the expressed transporter in insect cells could actually transport glucose. The possible reason for this was that the activity of the endogenous insect glucose transporter was extremely high and so rendered transport activity resulting from the expression of exogenous transporter very difficult to detect. Sf21-AE cells are commonly employed as the host permissive cell line to support the baculovirus AcNPV replication and protein synthesis. The cells grow well on TC-100 medium that contains 0.1 % D-glucose as the major carbon source, strongly suggesting the presence of endogenous glucose transporters. However, unlike the human glucose transporter, very little is known about properties of the endogenous sugar transporter(s) in insect cells. Thus, the uptake of 2-deoxy-D-glucose (2dGlc) by Sf21-AE cells and the inhibition of 2dGlc transport in the insect cells by fructose and cytochalasin B were investigated in the present work. The binding assay of cytochalasin B was also performed, which could be used as a functional assay for the endogenous glucose transporter(s) in the insect cells. Sf21-AE cells were infected with the recombinant virus AcNPV-GT or no virus, at a multiplicity of infection (MOI) of 5. Infected cells were resuspended in PBS plus and minus 300 mM fructose, and plus and minus 20 $\mu$M cytochalasin B for use in transport assays. Uptake was measured at 28$^{\circ}C$ for 1 min, with final concentration of 1 mM deoxy-D-glucose, 2-[1,2-$^3$H]- or glucose, L-[l,$^3$H]-, used at a specific radioactivity of 4 Ci/mol. The results obtained demonstrated that the sugar uptake in uninfected cells was stereospecific, and was strongly inhibited by fructose but only poorly inhibitable by cytochalasin B. It is therefore suggested that the Sf21-AE glucose transporter has very low affinity for cytochalasin B, a potent inhibitor of human erythrocyte glucose transporter.
The use of Jerusalem artichoke containing $\beta$-1, 2-fructose oligomer for the production of D-sorbitol and L-sorbose has been studied. The employment of inulinase(0.398%, v/v) for the hydrolysis of 40% (v/w) Jerusalem artichoke juice resulted in 36.7g/1 of glucose and 85.3g/1 of fructose at $50^{\circ}C$. These sugars were utilized as substrates for D-sorbitol and L-sorbose production. Coimmobilization of inulinase and permeabilized cells of Zymomonas mobilis in the mixture of chitin (5%, w/e) and x-carrageenan(4%, w/v) resulted in the production of 30.2g/1 of D-sorbitol by using inulin as a substrate. The process of L-sorbose production from D-sorbitol by Gluconobacter suboxydans was optimized with respect to the substrate concentration, level of dissolved oxygen and glucosic and concentration. Gluconlc acid produced by Zymomonas mobilis from glucose was found to inhibit Gluconobacter suboxtans in conversion of D-sorbitol to L-sorbose. In view of removing such inhibitory effect by gluconic acid, mutants were selected by the NTG (N-methyl-N'-N'-nitro-N-nitrosoguanidlne) treated method. Mutants selected by NTG mutagenesis showed no inhibitory effects of gluconic acrid against L-sorbone production when its concentration increased up to 100g/1. A mutant produced 40.1g/l of L-sorbose in the medium containing 100g/l D-sorbitol and 100g/l-gluconic acid. This result is consider able when compared with L-sorbose concentration (21.7g/1) obtained from the fermentation with wild type strain of Gluconobacter suboxnians.
Unlike the mammalian glucose transporter GLUT1, little is known about the nature of the endogenous sugar transporter(s) in insect cells. In order to establish the transport characteristics and other properties of the sugar transport proteins of Sf9 cells, a series of kinetic analyses was performed. A saturable transport system for hexose uptake has been revealed in the insect cells. The apparent affinity of this transport system(s) for 2-deoxy-D-glucose was relatively high, the $K_m$ for uptake being <0.5 mM. To further investigate the substrate and inhibitor recognition properties of the insect cell transporter, the ability of other sugars or drugs to inhibit 2-deoxy-D-glucose transport was examined by measuring inhibition constants ($K_j$). Transport was inhibited by D-mannose, D-glucose, and D-fructose. However, the apparent affinity of the C-4 epimer, D-galactose, for the Spodoptera transporter was relatively low, implying that the hydroxyl group at the C-4 position may play a role in the strong binding of glucose and mannose to the transporter. The results also showed that transport was stereoselective, being inhibited by D-glucose but not by L-glucose. It is therefore concluded that insect cells contain an endogenous glucose transport activity that in several aspects resembles the human erythrocyte glucose transporter. However, the mammalian and insect transporters were different in some of their kinetic properties, namely, their affinities for fructose and for cytochalasin B.
The present researches were carried out to examine the favorable nutritional conditions for mycelial growth of Cercospora kikuchii, and inhibition of bacterial growth by the fungus at various cultural conditions. As the nitrogen source, the fungus grew better on yeast-extract than the other sources of nitrogen tested. Sucrose, glucose, maltose and fructose were good sources of carbon for mycelial growth of the fungus. Two isolates of C. kikuchii, wild types A and D, inhibited the growth of bacteria on the medium containing yeast-extract or peptone as the nitrogen source, and sucrose, glucose, maltose or fructose as the carbon source, at pH 5.0. However, the albino mutant showed very little inhibitory effect under the same conditions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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