The purpose of this study was to suggest the guideline for scientific and quantitative skill acquisition methods of badminton smashing so that the novice could learn the motions of badminton smashing efficiently. The subject participated consisted of total 6 middle school students of the stilled(3) and the unskilled(3). The cinematographical experimental & Analysis equipments used in the study were composed of two Model D-5100 Video Cameras, a control point, a synchronization timer and Kwon3d motion analysis system. The conclusions obtained were as follows, 1. It was necessary for the unskilled to learn the smashing impact phase in situation of max. velocity of COG in order to minimize the timing loss phase. 2. Particularly. The power from segments of Power Zone must participate in utilization in sequence of order of trunk-upper arm- forearm-hand-racket segment in both the skilled and the unskilled.. 3. Therefore it was necessary for the unskilled to do smashing practice for cumulated sum of absolute & relative velocity transfer into shuttle cock after adjusting anterior-posterior tilting angle and max timing, in sequence of segment recruited.
Chae, Jong Pyo;Pajarillo, Edward Alain;Hwang, In-Chan;Kang, Dae-Kyung
Food Science of Animal Resources
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v.39
no.1
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pp.13-22
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2019
This study aimed to develop a bile-responsive expression system for lactobacilli. The promoters of four genes, encoding phosphoenolpyruvate-dependent sugar phosphotransferase (mannose-specific), L-lactate dehydrogenase (LDH), HPr kinase, and D-alanine-D-alanine ligase, respectively, which were highly expressed by bile addition in Lactobacillus johnsonii PF01, were chosen. Each promoter was amplified by polymerase chain reaction and fused upstream of the ${\beta}$-glucuronidase gene as a reporter, respectively. Then, these constructs were cloned into E. coli-Lactobacillus shuttle vector pULP2, which was generated by the fusion of pUC19 with the L. plantarum plasmid pLP27. Finally, the constructed vectors were introduced into L. plantarum for a promoter activity assay. The LDH promoter showed the highest activity and its activity increased 1.8-fold by bile addition. The constructed vector maintained in L. plantarum until 80 generations without selection pressure. A bile-responsive expression vector, $pULP3-P_{LDH}$, for Lactobacillus spp. can be an effective tool for the bile-inducible expression of bioactive proteins in intestine after intake in the form of fermented dairy foods.
The thr operon of Escherichia coli TF427, an $\alpha$-amino-$\beta$-hydroxyvaleric acid (AHV)-resistant threonine overproducer, was cloned in a pBluescriptII $KS^+$ plasmid by complementation of E. coli mutants. All clones contained a common 8.8 kb HindIII-generated DNA fragment and complemented the thrA, thrB, and thrC mutants by showing that these clones contained the whole thr operon. This thr operon was subcloned in the plasmid vectors pBR322, pUC18, and pECCG117, an E. coli/Corynebacterium glutamicum shuttle vector, to form recombinant plasmids pBTF11, pUTF25 and pGTF18, respectively. The subcloned thr operon was shown to be present in a 6.0 kb insert. A transformant of E. coli TF125 with pBTF11 showed an 8~11 fold higher aspartokinase I activity, and 15~20 fold higher L-threonine production than TF125, an AHV-sensitive methionine auxotroph. Also, it was found that the aspartokinase I activity of E. coli TF125 harboring pBTF11 was not inhibited by threonine and its synthesis was not repressed by threonine plus isoleucine.
The xylnX gene encoding a xylanase from Clostridium thermocellum ATCC27405 was cloned in the plasmid pJH27, an E. coli-Bacillus shuttle vector and the resultant recombinant plasmid, pJX18 was transformed into E. coli HB101. The overexpressed xylanase was found to be secreted into the periplasmic space of the recombinant E. coli cells. The crude enzyme was obtained by treating the E. coli cells with lysozyme, and purified by DEAE-Sepharose column chromatography. Molecular wieght of the xylanase was estimated to be 53 kDa by gel filtration. The pI value was determined to be pH 8.8. The N-terminal sequence of the enzyme protein was Asp-Asp-Asn-Asn-Ala-Asn-Leu-Val-Ser-Asn which was considered to be the sequence of that of the mature form protein. The Km value of the enzyme for oat spelt xylan was calculated to be 2.63 mg/ml and the Vmax value was $0.47 {\mu}mole/min$. The xylanase had a pH optimum for its activity at pH 5.4 and a temperature optimum at $60^{\circ}C$. The enzyme hydrolyzed xylan into xylooligosaccharides which were composed mainly of xylobiose (40%) and xyloltriose (12%) after 5 hour reaction. This result indicates that the xylanase from C. thermocellum ATCC27405 is an endo-acting enzyme.
For the development of a glucanolytic yeast strain. the seceretion of endo-1.4-$\beta$-D-glucanase (CMCase) of Bacillus subtilis was performed in yeast using glucoamylase gene (STA1) of Saccharomyces diastaticus. A 1.7 kb-DNA fragment of STA1 gene containing authentic promoter, signal sequence, threonine serine-rich (TS) region and N-terminal region (98 amino acids) of mature glucoamylase was ligated to YEp 24. E. coli-yeast shuttle vector. And then. CMCase structural gene of B. subtilis was fused in frame with the 1.7 kb-DNA fragment of STA1 gene, resulting in recombinant plasmid pYES('24. Yeast transformant harboring pYESC24 had no CMCase activity. So. we deleted TS region and N-terminal region of mature glucoamylase existing between signal sequence and CMCase structural gene in pYESC24. consequently constructed recombinant plasmid pYESC11. The yeast transformed with the newly constructed recombinant plasmid pYESC11 efficiently secreted CMCase to extracellular medium. After 4 days culture. total CMCase activity of this transformant was 44.7 units/ml and over 93% of total CMCase activity was detected in culture supernatant.
Human ferritin H- and L-chain genes (hfH and hfL) were cloned into the yeast shuttle vector YEp352 containing the GAL1 (galactokinase) and GAL10 (epimerase) divergent promoters and the vectors constructed were used to transform Saccharomyces cerevisiae 2805. SDS-PAGE displayed expression of the introduced hfH and hfL in both recombinant strains of Y1H10L and Y1L10H. The ferritin subunits, that represented ca. $22\%$ and $15\%$ of the soluble proteins in Y1H10L and Y1L10H, were spontaneously assembled into active ferritin heteropolymers. The H subunit content of the purified recombinant human ferritin heteropolymers was proven to reflect the relative expression yield of the subunits. When the cells of 2d culture were incubated with 14.3 mM Fe(2), the cellular iron concentration of Y1H10L and Y1L10H was 1.7 and 2.0 times, respectively, that of the control strain. It is assumed that increase in the iron uptake of the recombinant yeasts is closely related to ferritin expression and H subunit content.
KOO, BON-JOON;KWANG HEE BAE;SI-MYONG BYUN;SOON-KWANG HONG
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.8
no.4
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pp.333-340
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1998
Streptomyces griseus trypsin (SGT) is an extracellular proteinase produced by S. griseus. The sprT gene, which encodes premature SGT protein, was cloned into the plasmid pWHM3, a Streptomyces-E. coli shuttle vector. When the recombinant plasmid was introduced into Streptomyces lividans TK24, two proteins with molecular weights of 28 kDa and 42 kDa were detected. The 28-kDa protein was a SGT protein while the larger 42-kDa protein is thought to have been a premature form of the SGT protein. The SGT protein was purified to homogeneity via ammonium sulfate fractionation and many column chromatographies, including CM -sepharose chromatography, Mono-S chromatography, and Superose-12 chromatography, from the culture broth of S. lividans TK24 harboring the sprT gene. The N-terminal amino acid sequence, isoelectric points, and stabilities at various conditions of the SGT proteins purified from the Pronase and transformant were almost identical. The amount of the expressed SGT in S. lividans TK 24 was determined to be 5 times more than that of S. griseus based on the enzymatic activity against artificial substrate.
The Baekdu volcano (2,750 m a.s.l.) is located on the border between Yanggando Province in North Korea and Jilin Province in China. Its eruption in 946 A.D. was among the largest and most violent eruptions in the past 5,000 years, with a volcanic explosivity index (VEI) of 7. In this study, we processed and analyzed lahar-inundation hazard zone data, applying a geographic information system program with menu-driven software (LAHARZ)to a shuttle radar topography mission 30 m digital elevation model. LAHARZ can simulate inundation hazard zones created by large lahar flows that originate on volcano flanks using simple input parameters. The LAHARZ is useful both for mapping hazard zones and estimating the extent of damage due to active volcanic eruption. These results can be used to establish evacuation plans for nearby residents without field survey data. We applied two different simulation methods in LAHARZ to examine six water systems near Baekdu volcano, selecting weighting factors by varying the ratio of height and distance. There was a slight difference between uniform and non-uniform ratio changes in the lahar-inundation hazard zone maps, particularly as slopes changed on the east and west sides of the Baekdu volcano. This result can be used to improve monitoring of volcanic eruption hazard zones and prevent disasters due to large lahar flows.
The goal of this study drifter is to understand the operating mechanism of a drifter and to suggest a reliable analysis model which can be used for evaluating the drifter's performance from the viewpoint of impact frequency and energy. For this, the working principle of drifter and functions of its main components were analyzed, and a simulation model was developed based on the analysis. The model was validated using experimental tests on a test-bench. A comparative study of simulation and experimental results indicated that the suggested model accurately represents the real drifter system in terms of impact frequency and impact energy per blow.
The cloned B. subtilis cdd gene encoding cytidine/2'deoxycytidine deaminase (EC 3.5.4.5) was expressed in the cdd deficient B. subtilis mutant ED40. The gene was isolted from the cdd complementing plasmid pSO21, and inserted into the EcoR1/Pvu1 sites of pGB215-110 ΔB, which is a temperature sensitivie E. coli-B. subtilis shuttle vector. In the transformed B. subtilis ED4O harboring the resulting plasmid pSO100, cdd was expressed at several hundred fold elevated levels, and the cytidine deaminase activity in E. coli containing pSO100 was twice the level in B. subtilis/pSO0100. The Km value for cytidine of the partially purified enzyme is 1.88$\times$10$^{-4}$M at pH 7.0 and the V$_{max}$ = 11.1 $\mu$mol/min/mg of protein. The enzyme was completely inhibited by 0.1M mercaptoethanol and HgCl$_2$. The inhibition by p-chrolomercurybenzoic acid showed a Ki = 5 uM. These results suggest that sulfhydryl reagents block an active site thiol group, and/or disturb the formation of the tetrameic holoenzyme.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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