The baculovirus expression system is a powerful method for producing large amounts of the human erythrocyte-type glucose transport protein, heterologously. Characterization of the expressed protein is expected to show its ability to transport sugars directly. To achieve this, it is a prerequisite to know the properties of the endogenous sugar transport system in Spodoptera frugiperda Clone 21 (Sf21) cells, which are commonly employed as a host permissive cell line to support the baculovirus replication. The Sf21 cells can grow well on TC-100 medium that contains 0.1% D-glucose as the major carbon source, strongly suggesting the presence of endogenous glucose transport system. However, unlike the human glucose transport protein that has a broad substrate and inhibitor specificity, very little is known about the nature of the endogenous sugar transport system in Sf21 cells. In order to characterize further the inhibitor recognition properties of the Sf21 cell transporter, the ability of phloretin, cytochalasin B and D-fructose to inhibit 2-deoxy-D-glucose (2dGlc) transport was examined by measuring inhibition constants $(K_i)$. The $K_i's$ for reversible inhibitors were determined from plots of uptake versus inhibitor concentration. The 2dGlc transport in the Sf21 cells was very potently inhibited by phloretin, the aglucone of phlorizin with a $K_i$ similar to the value of about $2{\mu}M$ reported for inhibition of glucose transport in human erythrocytes. However, the Sf21 cell transport system was found to differ from the human transport protein in being much less sensitive to inhibition by cytochalasin B (apparent $K_i$ approximately $10\;{\mu}M$). In contrast, It is reported that the inhibitor binds the human erythrocyte counterpart with a $K_d$ of approximately $0.12\;{\mu}M$. Interestingly, the Sf21 glucose transport system also appeared to have high affinity for D-fructose with a $K_i$ of approximately 5mM, contrasting the reported $K_m$ of the human erythrocyte transport protein for the ketose of 1.5M.
To improve survival rates of vitrified pig oocytes, the treatment of cytoskeletal stabilizer on an appropriate time is one of the possible approaches. However, the exact treatment timing and effect of cytoskeletal stabilizer such as cytochalasin B (CB) is not well known during oocyte vitrification procedures. Thus, the present study was conducted to determine optimal treatment timing of CB during vitrification and warming procedures. In experiment 1, the survival rates of the postwarming pig oocytes were analyzed by fluorescein diacetate (FDA) assays with 4 classifications. In results, post-warming oocytes showed significantly (p<0.05) decreased number of alive oocytes (31.8% vs. 86.4%) compared to fresh control. In detail, the significant difference (p<0.05) was found only in strong fluorescence (18.2% vs. 70.5%) not in intermediate fluorescence groups (13.6% vs. 15.9%). In experiment 2, CB was treated before (CB-Vitri) and after (Vitri-CB) vitrification. In results, group of Vitri-CB showed significantly (p<0.05) higher (91.6%) survival rates compared to group of CB-Vitri (83.7%), significantly (p<0.05) and comparable with group of Vitri Control (88.7%) by morphological inspection. In FDA assay results, group of Vitri-CB showed significantly (p<0.05) higher (44.2%) survival rates compared to groups of CB-Vitri (36.7%) and Vitri Control (35.1%). In conclusion, the increased survival rates of post-warming pig oocyte treated with Vitri-CB method are firstly described here. The main finding of present study is that the CB treatment during recovery could be helpful to refresh the post-warming pig oocyte resulting its improved survival rates.
This study was conducted to optimize the efficiency of cloning and to produce cloned mice. The majority of cloned mammals derived by nuclear transfer (NT) die during gestation and have enlarged and dysfunctional placentas. In this study, the optimized conditions were established to produce clone mice. The parthenogenetic oocytes were activated after 6 h regardless of cytochalasin B (CB) concentration. CB treatment ($2{\mu}g/ml$) was found second polar body. Lower concentration of CB was decreased the activation rate, but the second polar body was the best highly increased during 6 h incubation. The small fragments were exhibited in the $5{\mu}g/ml$ treatment of CB, but it was not found in lower concentration groups (> $2.5{\mu}g/ml$). To examine effects of $SrCl_2$ on the adult cumulus cells, somatic cell NT oocytes were exposed during 0.5, 1 and 6 hrs. The second polar body was significantly greater in 0.5 h exposure group (6.6%) than 1, 6 hrs. Developmental rate from 2-cell to 4-cell was the lowest in 7.5 mM Strontium chloride ($SrCl_2$) groups (84.1% and 64.3%) than 5, 10 m $MSrCl_2$. The implantation rate was not significantly difference among 5, 7.5 and 10 m $MSrCl_2$ group. Three live fetuses were produced by SCNT. SCNT placentas were remarkably heavier than IVF group (8 fetuses) (0.34, 0.34, 0.33 vs 0.14 g) compared with the placenta weight of IVF and SCNT clones.
The objectives of this study are to determine cortical granule distribution during in vitro maturation, parthenogenetic activation and in vitro fertilization of oocytes, and to investigate effects of microfilament inhibitor on the cortical granule distribution during in vitro maturation and fertilization of oocytes in the pig, The corti-cal granule distribution were imaged with fluor-escent labeled lectin under laser scanning confocal microscope or detected by transmission electron microscope. At germinal vesicle stage, cortical granule organelles were located around the cell cortex and were present as a relatively thick area on the oolema. Microfilaments were also observed in a thick uniform area around the cell cortex. Following germinal vesicle break down,microfilaments concentrated to the condensed chromatin and cortical granules were observed in the cortex. Treatment with cytochalasin B inhibited microfilament polymerization and prevented movement of cortical granules to the cortex. Cortical granule exudate following sperm penetration was evenly distributed in the entire perivitelline space. Therefore, these results suggested that the microfilament assembly is involved in the distribution, movement and exocytosis of cortical granules during maturation and fertilization of porcine oocytes. (Key words cortical granule, porcine, maturation, fertilization).
The purpose of this study is to examined the electrofusion and activation conditions for the production of porcine somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos. In this study, immature oocytes were cultured in TCM-199 with and without hormones for 22 hours. Skin fibroblasts cells of porcine were transferred into the perivitelline space of enucleated in vitro matured oocytes. Cell fusion was performed with two different pulses that each one pulse (DC) of 1.1 kV/cm or 1.5 kV/cm for $30{\mu}sec$. After fusion subsequent activation were divided into three groups; non-treatment (control) and treatment with 2 mM 6-DMAP or $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B for 4 hours. Transferred embryos were cultured in PZM-3 (Porcine Zygote Medium-3) in $5%\;CO_2$ and 95% air at $39^{\circ}C$ for 7 day. Apoptosis-related genes (Caspase-3, BCL-2, mTOR, and MMP-2) were analyzed by immunofluorescence staining. There was no significant difference between two different electrofusion stimuli in the cleavage rate; $64.9{\pm}4.8%$ in 1.1 kV/cm and $62.7{\pm}4.0%$ in 1.5 kV/cm. However, blastocyst formation rate (%) was significantly different among three different activation groups (no treatment, 2 mM 6-DMAP or $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B) combined with electrofusion of 1.1 kV/cm. The blastocyst formation rate was $12.6{\pm}2.5$, $20.0{\pm}5.0$, and $34.9{\pm}4.3%$ in control, 2 mM 6-DMAP, and $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B, respectively. Immunofluorescence data showed that expression levels of caspase-3 in SCNT embryos undeveloped to blastocyst stage were higher than those in the blastocyst stage embryos. Expression levels of Bcl-2 in blastocyst stage embryos were higher than those in the arrested SCNT embryos. These results showed that the combination of an electric pulse (1.1 kV/cm for $30{\mu}sec$) and $7.5{\mu}g/ml$ cytochalasin B treatment was effective for production of the porcine SCNT embryos.
The purpose of this study was to evaluate the effects of Cytochalasin B treatment on the survivability The different concentration and exposed times of CB of porcine embryos frozen by vitrification were observed. The results were summarized as follows ; 1. The survivability rates of the porcine embryos treated CB(60.5%) were significantly higher than non-treated(32.8%)(p<0.1). However the recovered with normal morphology rates(84.2%) were no significantly different than non-treated(81.9%). 2. We observed by different concentration of CB treatment, the group of CB treated with 7.5 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ were significantly showed a higher of normal morphology(44/45; 98%) and viability rate(33/45;73%) than other groups(morphology: 65∼70%, viability: 15∼74%)(p<0.05). While the control was lower as 70% of morphology and 38% of viability. 3. We examined exposed time of in-vitro CB treated embryos, the group of more than 20 minutes exposed were significantly were observed a higher rates of normal morphology and viability(p<0.05). And the group of 13 minutes, 14,000 rpm centrifuged(64%) were significantly higher than non-centrifuged(36%). Survivability of porcine embryos were improved in CB treated group. It suggested that 7.5 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$ concentration of CB treatment, 20 minutes exposed times and 13 minutes, 14000 rpm centrifuged prior to vitrification improve normal morphology and survivability rates.
What makes glucose transport function sensitive to insulin in one cell type such as adipocyte, and insensitive in another such as liver cells is unresolved question at this time. Recently it is known that insulin stimulates glucose transport in adipocytes largely by redistributing transporter from the storage pool that is included in a low density microsomal fraction to plasma membrane. Therefore, insulin sensitivity may depend upon the relative distribution of gluscose transporters between the plasma membrane and in an intracellular storage compartment. In hepatocytes, the subcellular distribution of glucose transporter is less well documented. It is thus possible that the apparent insensitivity of the hepatocyte system could be either due to lack of the constitutively maintained, intracellular storage pool of glucose transporter or lack of insulin-mediated transporter translocation mechanism in this cell. In this study, I examined if any intracellular glucose transporter pool exists in hepatocytes and this pool is affected by insulin. The results obtained summarized as followings: 1) Distribution of subcellular fractions of hepatocyte showed that there are $24.9{\pm}1.3%$ of plasma membrane, $36.9{\pm}1.7%$ of nucleus-mitochondria enriched fraction, $23.5{\pm}1.2%$ of lysosomal fraction, $9.6{\pm}1.0%$ of high density microsomal fraction and $4.9{\pm}0.5%$ of low density microsomal fraction. 2) In adipocyte, there were $29.9{\pm}2.6%$ of plasma membrane, $19.4{\pm}1.9%$ of nucleus-mitochondria enriched fraction, $26.7{\pm}1.8%$ of high density microsomal fraction and $23.9{\pm}2.1%$ of low density microsomal fraction. 3) Surface labelling of sodium borohydride revealed that plasma membrane contaminated to lysosomal fraction by $26.8{\pm}2.8%$, high density microsomal fraction by $8.3{\pm}1.3%$ and low density microsomal fraction by $1.7{\pm}0.4%$ respectively. 4) Cytochalasin B bound to all of subcellular fractions with a Kd of $1.0{\times}10^{-6}M$. 5) Photolabelling of cytochalasin B to subcellular fractions occurred on 45 K dalton protein band, a putative glucose transporter and D-glucose inhibited the photolabelling. 6) Insulin didn't affect on the distribution of subcellular fractions and translocation of intracellular glucose transporters of hepatocytes. 7) HEGT reconstituted into hepatocytes was largely associated with plasma membrane and very little was found in low density microsomal fraction which equals to the native glucose transporter distribution. Insulin didn't affect on the distribution of exogeneous glucose transporter in hepatocytes. From the above results it is concluded that insulin insensitivity of hepatocyte may due to lack of intracellular storage pool of glucose transporter and thus intracellular storage pool of glucose transporter is an essential feature of the insulin action.
The objective of this study was to examine the effect of in vitro maturation (IVM) medium, cytochalasin B (CB) treatment during intracytoplasmic sperm injection (ICSI), and electric activation on in vitro development ICSI-derived embryos in pigs. Immature pig oocytes were matured in vitro in medium 199 (M199) or porcine zygote medium (PZM)-3 that were supplemented with porcine follicular fluid, cysteine, pyruvate, EGF, insulin, and hormones for the first 22 h and then further cultured in hormone-free medium for an additional 21~22 h. ICSI embryos were produced by injecting single sperm directly into the cytoplasm of IVM oocytes. The oocytes matured in PZM-3 with 61.6 mM NaCl (low-NaCl PZM-3) tended to decrease (0.05
Kim, Sung-Woo;Park, Jin-Ki;Park, Chun-Gyu;Lee, Ju-Young;Han, Joo-hee;Lee, Seung-Eun;Baek, Kyung-Nye;Chang, Won-Kyung
Proceedings of the KSAR Conference
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2004.06a
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pp.260-260
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2004
The calcium ionophore (A23187) has been used for activation of porcine oocytes from in vitro maturation by many researches. The signaling of calcium was known to be a primary factor of activation of MII oocyte by calcium ionophore. The calcium level was measured by an intensity of fluo 4 fluorescence and confocal microscope. The level was increased by 7% ethanol or 70 μM calcium ionophore but oscillation was not found. (omitted)
"Spontaneous" hardening of the zona pellucida of mouse oocytes during in vitro culture is most likely due to cortical granules exocytosis. Thus the purpose of the present study was to determine whether the exocytosis factor is involved in spontaneous zona pellucida hardening during in vitro culture of the mouse. The results obtained form these experiments were summarized as follows; 1. When a protein synthesis inhibitor(100${\mu}g$/ml puromycin) was added to the culture medium, it did not prevent spontaneous ZPH of mouse oocyte during in vitro culture. 2. Calmodulin antagonists (trifluoperazine and chlorpromazine) and calcium channel blocker (verapamil) had no inhibitory effect in spontaneous ZPH. 3. A microtubule assembly inhibitor, colcemid had some inhibitory effect on spontaneous ZPH. 4. Treatment with a microfillament formation blocker(cytochalasin-B) at 1${\mu}g$/ml concentration, resulted in the excellent inhibitory effect on spontaneous ZPH. However cytochalasin-B did not inhibit ethanol-induced ZPH.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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