Kim, Hak Jun;Shim, Hye Eun;Lee, Jun Hyuck;Kang, Yong-Cheol;Hur, Young Baek
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제25권12호
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pp.1989-1996
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2015
Ice-binding proteins (IBPs) can inhibit ice recrystallization (IR), a major cause of cell death during cryopreservation. IBPs are hypothesized to improve cell viability after cryopreservation by alleviating the cryoinjury caused by IR. In our previous studies, we showed that supplementation of the freezing medium with the recombinant IBP of the Arctic yeast Glaciozyma sp. (designated as LeIBP) could reduce post-thaw hemolysis of human red blood cells and increase the survival of cryopreserved diatoms. Here, we showed that LeIBP could improve the viability of cryopreserved mammalian cells. Human cervical cancer cells (HeLa), mouse fibroblasts (NIH/3T3), human preosteoblasts (MC3T3-E1), Chinese hamster ovary cells (CHO-K1), and human keratinocytes (HaCaT) were evaluated. These mammalian cells were frozen in dimethyl sulfoxide (DMSO)/fetal bovine serum (FBS) solution with or without 0.1 mg/ml LeIBP at a cooling rate of -1℃/min in a -80℃ freezer overnight. The minimum effective concentration (0.1 mg/ml) of LeIBP was determined, based on the viability of HeLa cells after treatment with LeIBP during cryopreservation and the IR inhibition assay results. The post-thaw viability of mammalian cells was examined. In all cases, cell viability was significantly enhanced by more than 10% by LeIBP supplementation in 5% DMSO/5% FBS: viability increased by 20% for HeLa cells, 28% for NIH/3T3 cells, 21% for MC3T3-E1, 10% for CHO-K1, and 20% for HaCaT. Furthermore, addition of LeIBP reduced the concentrations of toxic DMSO and FBS down to 5%. Therefore, we demonstrated that LeIBP can increase the viability of cryopreserved mammalian cells by inhibiting IR.
In the present study, attempts were made to cryopreserve sea urchin, Anthocidaris crassispina sperm in liquid nitrogen, to evaluate the effects of various cryoprotectants and freezing rates on motility, survival rate and fertilization rate of the post-thawing sperm, and the ultrastructural changes of sperm after cryopreservation were observed. The highest values of sperm motility (motility index: 3.3$\pm$0.37) and survival rate (72$\pm$3.5%) were obtained with 15% dimethyl sulfoxide (DMSO), and these values were significantly higher than those of sperm preserved with glycerol. Comparisons of motilities and survival rates between treatments of difference freezing rates showed that there was no difference between procedures (a) 5$0^{\circ}C$/min to -8$0^{\circ}C$ (motility index: 3.3$\pm$0.31 ; survival late 70$\pm$2.7%) and (b) 3$0^{\circ}C$/min to -8$0^{\circ}C$ (motility index: 3.1$\pm$0.29; survival rate 69$\pm$3.7%), while the results of (c) 1$0^{\circ}C$/min to -8$0^{\circ}C$ were significantly lower than the others (motility index: 2.2$\pm$0.33 ; survival rate 42$\pm$4.6%). There was no significant difference in fertilization rate between fresh sperm and sperm preserved with 15% DMSO as cryoprotectant and freezing rate (3$0^{\circ}C$/min to -8$0^{\circ}C$). Some ultrastructural changes of sperm, such as the detachment of plasma membrane, the destruction of mitochondria, and the flagellum rolling up head, were observed after cryopreservation. Morphological normality of the sperm in 15% DMSO frozen at the ratio of 5$0^{\circ}C$/min to -8$0^{\circ}C$ was better than the others.
희석액과 동해방지제로 각각 ASP와 DMSO를 사용하여 1년 동안 냉동보존한 후 해동한 강도다리(Platichthys stellatus) 정자의 운동속도는 10% 농도에서 가장 빨랐다. Methanol의 경우 $10{\sim}20%$ 범위에서 유의한 차이를 보이지 않았지만 15%에서 가장 높은 값을 보였다. Glycerol을 동해방지제로 사용하였을 때는 첨가농도가 높아질수록 정자의 운동성과 운동속도가 낮아졌다. 희석액으로 SS를 사용한 경우도 ASP와 비슷한 결과를 보였다. 투과형전자현미경으로 관찰한 냉동하지 않은 신선한 강도다리 정자는 머리, 중편부 및 꼬리로 구성되어 있으며, 치밀한 핵질로 충만한 구형의 머리에는 첨체구조가 관찰되지 않았다. 동해방지제 없이 냉동보존한 경우, 대부분의 정자들이 머리가 찌그러지거나 부분적으로 수축되는 경우가 많았으며 머리의 원형질막이 이탈되고 염색질이 과립상으로 변하거나 균질화되지 않았다. 반면에 냉동보존을 위해 동해방지제를 사용한 경우 부분적으로 정자의 구조적 손상이 관찰되었으나 대부분의 정자는 냉동과 해동과정에서 손상을 입지 않았다.
Objectives: To assess the scavenging effect of carnitine derivatives on oxidative damage to sperm during sperm processing, cryopreservation and thawing. Materials and Methods: Fresh semen samples from 20 normal healthy volunteers were collected by masturbation after at least 48 hours abstinence. After liquefaction of semen samples at room temperature, the specimens were diluted with sperm wash media (Ham's F-10, Life technologics) to a uniform density of $20{\times}10^6/ml$. L-carnitine or acetylcarnitine were added with various concentration of $0{\mu}M$, $10{\mu}M$, $30{\mu}M$ in semen sample or cryoprotectant. All specimens were cryopreservated at $-196^{circ}C$$LN_2$ for 3 days. Sperm motility, vitality, fertilizing capacity, reactive oxygen species formation and the level of lipid peroxidation were analyzed by computer assisted semen analyzer, eosin-nigrosin stain, hypoosmotic swelling test, chemiluminescence and thiobarbituric acid method, respectively, during sperm processing, cryopreservation and thawing. Results: The sperm motility was only increased in proportion to the concentration of acetylcarnitine with no statistical significance (p>0.05). The sperm vitality was also significantly improved in proportion to the concentration of acetylcarnitine with statistical significance (p<0.05). The sperm fertilizing capacity was significantly increased in proportion to the concentration of L-carnitine and acetylcarnitine and reactive oxygen species generation and lipid peroxidation were significantly decreased with same fashion (p<0.05). On comparison of effects between L-carnitine and acetylcarnitine, acetylcarnitine was superior to L-carnitine on the improvement of sperm motility and vitality as well as the suppression of reactive oxygen species generation and lipid peroxidation. Conclusions: These results suggest that carnitine derivatives have a scavenging effect against oxidative damages during sperm processing, cryopreservation and thawing. Therefore, carnitine derivatives may be useful as an oral antioxidant in patients with male infertility due to increased ROS generation.
Objective : Heat shock protein family is related to protective mechanism of cells by environmental changes. This study was performed to evaluate the effect of cryopreservation on the heat shock protein 90 (Hsp90) expression in mouse ovarian tissue. Methods : Cryopreservation of mouse ovarian tissue was carried out by slow freezing method. The mRNA level of Hsp90 expression in both fresh and cryopreserved mouse ovarian tissue was analyzed by RT-PCR. The protein expression of Hsp90 was evaluated by Western blot analysis and immunohistochemistry. Results: The mRNA and protein of Hsp90 were expressed in both fresh and cryopreserved mouse ovarian tissue. The amount of Hsp90 mRNA was increased in cryopreserved ovarian tissue after 60 and 90 minutes after thawing and incubation. The amount of Hsp90 protein was increased in the cryopreserved ovarian tissue after 6 hours of the incubation in Western blot analysis. In immunohistochemical study, Hsp90 protein was localized in cytoplasm of oocytes and granulosa cells. Significant level of immunoreactive Hsp90 protein was detected in theca cells contrast to the weak expression in ovarian epithelial cells. Conclusion: This results showed the increase of Hsp90 expression in both mRNA and protein level in the cryopreserved mouse ovarian tissue. It can be suggested that Hsp90 may play a role in the protective or recovery mechanism against the cell damage during cryopreservaion.
Vitrification has been suggested to be an effective method for the cryopreservation of human ES cells. However, the efficiency of vitrification with different vehicles remains a matter of ongoing controversy. The objective of this study was to assess the efficiency of cryopreservation in human ES cells by vitrification using different vehicles. A human ES cell line and a variety of vehicles, including micro-droplet (MD), open-pulled straw (OPS) and electron microscopic grid (EM-grid), were employed in an attempt to assess vitrification efficiency. In order to evaluate the survivability and the undifferentiated state of the post-vitrified human ES cells, we conducted alkaline phosphatase staining and characterization via both RT-PCR and immunofluorescence assays. The survival rates of the post-vitrified human ES cells using MD, OPS and EM-grid were determined to be 61.5%, 66.6% and 53.8%, respectively. There also exist significant differences between slow-freezing and vitrification (p<0.01). However, no significant differences were detected between the vehicle types. Finally, the pluripotency of human ES cells after thawing was verified by teratoma formation. Cryopreservation using vitrification is more effective than slow-freezing, and the efficiency of vehicles proved effective with regard to the preservation of human ES cells.
곤충변원성충(Steinernema carpocapsae Weiser)의 감염태 유충에 대한 액체질소( $-190^{\circ}C$)냉동 저장하는 방법을 개발하기 위하여, 냉동보관 전처리 과정 및 저장기간에 따른 선충생존율과 감염력 변이를 조사하였다. 냉동저장 전에 22% 글리세롤로 선충은 6, 12, 24시간 동안 배양한 후 70% methanol($0^{\circ}C$)안에 10분간 유지하였다. 글리세롤과 methanol에 넣어 둔 샘플을 0,85% 식염수에 넣어 24시간 유지한 후 생존능력을 측정하였다. 글리세롤 배양시간에 따른 선충 생존율의 차이는 없었으나, methanol처리에서는 글리세롤 처리 시간이 길수록 선충 생존율이 높게 나타났다. 냉동저장에 따른 선충의 생존율은 글리세롤 배양시간이 짧았던 처리(6시간)를 제외하고는 5개월 동안 평균 70% 이상으로 높게 나타났다. 냉동저장 되었던 선충의 곤충감염율은 저장기간에 관계없이 90% 이상을 나타내었다. 이상의 결과는 곤충병원선충이 냉동저장에 의해 장기간보존이 가능하다는 것을 제시한다.
최근 동결기술이 발달하면서 다양한 목적에 따라 초기 발생단계, 특히 수정 전후의 난자나 수정란의 생명을 연장하는 것이 가능해졌다. 이러한 난자나 수정란의 보존기술은 인간의 수정능력을 배가시키거나 임신조절에서 응용되고 있으며, 동물에서는 우수한 유전자원의 보존과 운영, 저렴한 국제간 운송수단, 그리고 생식보조기술과 유전공학 등의 연구에 필요한 생식세포의 공급하는 데서도 중요하게 활용되고 있다. 최근 개발된 완만동결과 유리화 동결방법은 난자와 수정란을 장기간 동결하여 보존하는데 활용하는 주요 기술이다. 이러한 방법들은 각각 장점과 단점을 가지고 있지만, 상당한 수준의 효율성이 입증되어 실용화되어 있는 실정이다. 무엇보다도 유리화 방법은 완만동결 방법보다 13년이나 늦게 개발되었으나 보다 우수한 기술로 인정을 받고 있다. 비록 유리화 동결은 아직 대한 상반된 의견과 오염문제가 있지만 인간과 동물의 생식보조기술로 활용되는 빈도가 점차 많아지고 있는 실정이다. 따라서 본 원고에서는 먼저 난자와 수정란의 동결보존에 대한 기초적인 기술에 대해서 고찰한 다음, 유리화 동결에 관 한 최근의 연구동향에 대해서 종합적으로 검토하고자 한다.
In present study, attempts were made to preserve abalone (Haliotis discus hannai) sperm in liquid form at low temperature, to evaluate the effect of various diluents in short-term storage on sperm, and cryopreservation procedures were optimized for the cryoprotectants and freezing rates, as well as the motility, survival rate, and the ultrastructural changes of sperm after short-term storage and cryopreservation were observed. The abalone sperm reached maximum motility until about 4 min after activation. The motility was constant for about 16 min, after which it dropped gradually, and about 50 min later all motility ceased. In Hanks' balanced salt solution (HBSS, 300 and 400 mOsmol/kg) and 150, 250 and 350 mOsmol/k artificial seawater (ASW), the sperm was immotile. After 100% ASW was added, motility of those sperm, which are in 300, 400 mOsmol/kg HBSS, 250, 350 mOsmol/kg ASW, could be again restored incompletely. Sperm motility can be maintained for 20 days of cold storage only in ASW of 850 and 1200 mOsmol/kg. A high motility index of 3.5-4.5 was observed for the first 8 days in 850 and 950 mOsmol/kg ASW. In other diluents sperm motility was constant less than 10 days, and the motility index was obviously lower than that of sperm in 850 and 1200 mOsmol/kg ASW. After 20 days of cold storage, survival rates of 10.2%-20.7% were obtained in ASW and 300 mOsmol/kg HBSS, and that in 400 HBSS (65.3%) was significantly higher than others. The constant period of sperm motility stored in 850 mOsmol/kg ASW was obviously longer than that in 1200 mOsmol/kg ASW after 6 days of storage. The sperm plunged into liquid nitrogen all died except that sperm using 15% glycerol as cryoprotectant restored 10.4% of motility. The highest motility index (3.4) was obtained with 5% glycerol and freezing procedure: $-50^{\circ}C$/min from $20^{\circ}C$ to $-80^{\circ}C$.
본 연구는 대구(Gadus macrocephalus) 정자의 동결보존 기술을 개발하기 위해 적정 동해방지제 및 동결보존 방법을 탐색하고, 동결보존된 정자를 해동하여 효과를 조사하고자 한다. 동결보존에 사용된 동해방지제는 demethyl sulfoxide (DMSO), ethylene glycol (EG), glycerol, methanol 및 propylene glycol (PG)였으며, marine fish ringer's solution (MFRS)를 희석액으로 사용하였다. 적정 동결보존 방법을 탐색하기 위하여 동해방지제 농도별(10%, 20%), 평형시간(3분, 5분, 10분), 1차 동결(액체 질소 표면 위 3, 8, 12 cm)별로 총 90개 실험구를 설정하였다. 해동 후 가장 높은 정자 생존율을 보인 실험구는 PG 10%, 평형시간 3분, 1차동결 8 cm 방법으로 21.3±1.8%의 생존율을 보였다. 신선한 정자와 해동한 정자를 사용하여 인공수정시킨 수정란의 부화율에서 유의한 차이는 없었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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