Sung, Young Hoon;Baek, In-Jeoung;Seong, Je Kyung;Kim, Jin-Soo;Lee, Han-Woong
BMB Reports
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v.45
no.12
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pp.686-692
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2012
Phenotypic analysis of gene-specific knockout (KO) mice has revolutionized our understanding of in vivo gene functions. As the use of mouse embryonic stem (ES) cells is inevitable for conventional gene targeting, the generation of knockout mice remains a very time-consuming and expensive process. To accelerate the large-scale production and phenotype analyses of KO mice, international efforts have organized global consortia such as the International Knockout Mouse Consortium (IKMC) and International Mouse Phenotype Consortium (IMPC), and they are persistently expanding the KO mouse catalogue that is publicly available for the researches studying specific genes of interests in vivo. However, new technologies, adopting zinc-finger nucleases (ZFNs) or Transcription Activator-Like Effector (TALE) Nucleases (TALENs) to edit the mouse genome, are now emerging as valuable and effective shortcuts alternative for the conventional gene targeting using ES cells. Here, we introduce the recent achievement of IKMC, and evaluate the significance of ZFN/TALEN technology in mouse genetics.
Of the various types of mice used for genome editing, conditional knock-out (cKO) mice serve as an important model for studying the function of genes. cKO mice can be produced using loxP knock-in (KI) mice in which loxP sequences (34 bp) are inserted on both sides of a specific region in the target gene. These mice can be used as KO mice that do not express a gene at a desired time or under a desired condition by cross-breeding with various Cre Tg mice. Genome editing has been recently made easy by the use of third-generation gene scissors, the CRISPR-Cas9 system. However, very few laboratories can produce mice for genome editing. Here we present a more efficient method for producing loxP KI mice. This method involves the use of an HDR vector as the target vector and ssODN as the donor DNA in order to induce homologous recombination for producing loxP KI mice. On injecting 20 ng/µL of ssODN, it was observed that the target exon was deleted or loxP was inserted on only one side. However, on injecting 10 ng/µL of the target HDR vector, the insertion of loxP was observed on both sides of the target region. In the first PCR, seven mice were identified to be loxP KI mice. The accuracy of their gene sequences was confirmed through Sanger sequencing. It is expected that the loxP KI mice produced in this study will serve as an important tool for identifying the function of the target gene.
Kim, Dong-Hoon;Kim, Myo-Kynng;Lee, Hoi-Chang;Ko, Duck-Sung;Park, Won-Il;Kwon, Hynck-Chan;Lee, Ho-Joon
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.28
no.2
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pp.147-153
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2001
Objective: The present study was performed to investigate the efficiency of partial laser assisted hatching (p-LAH; lased 1/2 ZP width from ZP edge) on hatching of mouse blastocysts. Methods: We used non-contact $1.48{\mu}m$ diode laser (MTM, Switzland) to create a precise hole on zona pellucida. 2-cell embryos were collected from the mouse (ICR) oviduct at 48 hours after hCG administration. Collected 2-cell embryos were cultured in the P-1 medium supplemented with 0.4% BSA. For experiments, embryos at 8-cell stage were used after $20{\sim}22$ hours in culture. After conventional (c-LAH) or partial laser assisted hatching, the embryos were further cultured in P-1 medium supplemented with 0.4% BSA for 3 days. To compare efficiency of complete and partial laser assisted hatching, hatching rate, hatching time and blastocyst diameter and zona pellucida thickness at hatching time were investigated. Embryos were examined every 12 hours. Blastocyst diameter and zona pellucida thickness at hatching time were measured with an ocular micrometer. Results: Hatching rates of p-LAH group (84.2%) was significantly higher than that of control group (39.3%), but there was no difference between the p-LAH (84.2%) and c-LAH (91.2%). p-LAH group was hatched 12 hours earlier than control group, but hatched 12 hours later than c-LAH group. The diameter of blastocyst at hatching time of p-LAH group ($113.1{\pm}6.4{\mu}m$) was smaller than that of control group ($122.2{\pm}5.0{\mu}m$), but larger than that of c-LAH group ($102.2{\pm}2.7{\mu}m$). Zona pellucida thickness at hatching time of p-LAH group ($6.4{\pm}0.9{\mu}m$) was thicker than that of control group ($4.5{\pm}1.5{\mu}m$), but thinner than that of c-LAH group ($10.0{\pm}0.8{\mu}m$). Conclusion: These results suggest that p-LAH may maintains the cell arrangement of early embryos to ensure successful development and prevent precocious hatching of blastocyst when compare to c-LAH and conventional (acidic tyrode) AH. Thus, p-LAH may provide a valuable and effective AH technique for human ART program.
Ko, Eun Young;Jung, Samooel;Jeong, Hyun Kyu;Han, Jeong Hee;Son, Jung Ho
Food Science of Animal Resources
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v.38
no.3
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pp.498-505
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2018
This study was aimed to investigate the effects of the type O foot-and-mouse disease vaccine (FMDV) on the incidence of abnormal meat such as granuloma or abscess formation at the injection site in pork and its associated economic losses. At 56 d of age, piglets were inoculated with FMDV by one of three administration routes: N-Neck (a conventional needle-syringe injection into the neck), N-Ham (a conventional needle-syringe injection into the ham), and Non-Neck (injection with a needle-free device into the neck). The injection sites were visually examined for the presence of a granuloma or abscess, and the incidence rate of abnormal meat was calculated. The gross weight of the portion of the pork carcasses condemned because of granuloma or abscess formation was measured and multiplied by the weekly sales price to calculate the total economic losses. After implementation of FMDV, the economic losses were approximately six times higher than before implementation. Granuloma or abscess formation was significantly higher in the N-Neck and Non-Neck groups, in which the vaccine was inoculated into the neck area, than in the N-Ham group (N-Neck and N-Ham vs Non-Neck, p<0.05). These results suggest that the incidence of lesions could be reduced if the ham route was used for vaccination.
Background: Hepatitis B virus (HBV) infection is one of the worldwide public health problem affecting about 300 million people. The envelope protein of HBV consists of three components known as preS1, preS2, and S antigen. According to the recent study, anti-HBs Ab showed effective neutralization ability against HBV from chronic hepatitis B and liver transplant patients, suggesting the possible development of therapeutic antibody. Methods: Spleen cells immunized with S antigen of HBV were fused with myeloma cell line to obtain HBsAg specific monoclonal antibodies. High affinity antibodies against HBsAg (adr, ad and ay type) were selected by competitive ELISA method. Nucleotide sequence of the variable regions of monoclonal antibodies was analyzed by RT-PCR followed by conventional sequencing method. Results: We produced 14 murine monoclonal antibodies which recognize S antigen of HBV. Two of them, A9-11 and C6-9 showed the highest affinity. The sequence analysis of A9-11 revealed that variable regions of the heavy chain and light chains are members of mouse heavy chain I (B) and light chain lambda 1, respectively. Likewise, the sequence analysis of C6-9 revealed that variable regions of the heavy chain and light chains are members of mouse heavy chain II (B) and light chain kappa 1, respectively. Neutralization assay showed that A9-11 and C6-9 effectively neutralize the HBV infection. Conclusion: These results suggest that A9-11 and C6-9 mouse monoclonal antibodies can be used for the development of therapeutic antibody for HBV infection.
We examined effects of co-culture with human oviduct epithelial cells (HOEC) on the development of mouse and human embryos from early embryonic· stage to late morula or blastocyst stage (LM or B). In human, embryos were transferred and pregnancy rate was investigated. The HOEC, collected from surgically removed fallopian tube, were cultured in medium-199 supplemented with 20 % fetal cord serum (FCS). The HOEC were characterized by using immunocytochemical staining with anticytokeratin antibody and then used for cultures of mouse and human embryos. Results obtained from co-culture system were as follows. Development rate of mouse embryos was improved by co-culture system at late developmental stage (p<0.025). Human supernumerary embryos remained after transfer, unsuitable for freezing because of their poor quality, were co-cultured for 72hrs. Co-culture (78.79%) or conditioned medium (78.26%) system improved the developmemt rate, significantly, in comparision with control (11.11%)(p<0.00l). Co-cultured (85.71%) human zygotes for 24hrs showed the better development rate in comparision with control (50.00%) (p<0.01). When we transferred embryos cultured with the HOEC to patients, we obtained one pregnancy. Co-cultured human zygotes for 24hrs showed the better quality and viability for the replacement in comparision with control (p<0.01). In addition, improved pregnancy rate was obtained. Our results suggest that the co-culture system can rescue early degenerating embryos by improving early development and yield a resonable number of blastocyst for the appropriate replacement. The effect provided by cultured HOEC is not species specific for the development of embryos and it can be used to overcome in vitro blocks for the development. And also the co-culture system offers the possibility to freeze embryos at blastocyst stage which is more sucessful stage for the freezing. The HOEC monolayer may provide some stimulus via specific factor, which is unknown, to the development of embryos. Our results showed that the co-culture system with HOEC can be an alternative to conventional culture system.
Objective: This study was carried out to evaluate the effect of the isolation methods of inner cell mass from mouse blastocyst, types of feeder cells and treatment time of mitomycin C on the formation rate of ICM colony. Methods: The inner cells were isolated by conventional immunosurgery, partial trophoblast dissection with syringe needles and whole blastocyst co-culture method. Commercially available STO and primary cultured mouse embryonic fibroblast (pMEF) feeder cells were used, and mitomycin C was treated for 1, 2 or 3 hours, respectively. The formation rate of ICM colony was observed after isolation of ICM and culture of ICM on the feeder cells for 7 days. Result: The ICM colony formation rate on STO were significantly higher in partial trophoblast dissection group (58%) than that in immunosurgery (12%) or whole blastocyst culture (16%) group (p<0.05). The formation rate on pMEF feeder layer was higher in partial trophoblast dissection (88%) and whole blastocyst culture (82%) group than that in immunosurgery (16%) group (p<0.05). When mitomycin C treated to pMEF for 2 hours, the formation rate of 88% was significantly higher than those of other conditions. Conclusion: Above results showed that the efficient isolation method of ICM from blastocyst was the partial trophoblast dissection and the appropriate treatment time of mitomycin C was 2 hours. However, the subculture of ICM colony and characterization of stem cells should be carried out to confirm the efficacy of the partial trophoblast dissection method.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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