Animal models are essential in medical research for testing drugs and vaccines. These models differ from humans in various respects, so their results are not directly translatable in humans. To address this issue, humanized mice engrafted with functional human cells or tissue can be helpful. We propose using humanized mice that support the engraftment of human hematopoietic stem cells (HSCs) without irradiation to evaluate vaccines that influence patient immunity. For infectious diseases, several types of antigens and adjuvants have been developed and evaluated for vaccination. Peptide vaccines are generally used for their capability to fight cancer and infectious diseases. Evaluation of adjuvants is necessary as they induce inflammation, which is effective for an enhanced immune response but causes adverse effects in some individuals. A trial can be done on humanized mice to check the immunogenicity of a particular adjuvant and peptide combination. Messenger RNA has also emerged as a potential vaccine against viruses. These vaccines need to be tested with human immune cells because they work by producing a particular peptide of the pathogen. Humanized mice with human HSCs that can produce both myeloid and lymphoid cells show a similar immune response that these vaccines will produce in a patient.
The purpose of this study was to establish early diagnostic methods for the detection of Aujeszky's disease viral antigens and nucleic acid in nasal cells, and buffy coats from experimentally infected living pigs by a combination of immunocytochemistry, in situ hybridization with digoxigenin(DIG)-labled probe and electron microscopy. Forty days old piglets were inoculated intranasally with $10^{7.0}TCID_{50}$ of Aujeszky's disease virus (ADV, NYJ-1-87 strain). The viral antigens and nucleic acid of ADV were detected in nasal cells, and buffy coat for 20 days after inoculation by immunocytochemistry, in situ hybridization with DIG-labeled probe and electron microscopical method. The results were compared with conventional methods such as a porcine Aujeszky's disease serodiagnostic(PAD) kit, neutralization test(NT) and virus isolation. 1. The viral antigens, nucleic acids and capsids of ADV were detected in nasal cells, buffy coats from 3 days to 20 days after inoculation by immunocytochemistry, in situ hybridization with DIG-labeled probe and electron microscopy, respectively. 2. When viral antigens were detected by the immunocytochemical technique, a diffuse brown deposit was observed in the nucleus and cytoplasm of nasal cells, buffy coats and PK-15 cells under a microscope. 3. DIG-labeled DNA probe was prepared by amplification of conserved sequence of recombinant ADV-gp50 clone with polymerase chain reacction. When ADV-DNA was detected by ISH with DIG-labeled probe, purplish blue pigmentation were observed in the nuclei and cytoplasms of ADV-infected cells under a microscope. Positive signals were observed in nasal cells and in the buffy coat and PK-15 cells at the first day after inoculation. 4. Where ADV-capsids were detected by transmission electron microscopical method, aggregation of capsids was observed in the nuclei and cytoplasms of nasal cells, buffy coats and PK-15 cells. The results suggested that these methods were considered as the highly sensitive and reliable tools for rapid and confirmative diagnosis of Aujeszky's disease in living pigs.
Nagwa S. M. Aly;Hye-Sook Kim;Maysa A. Eraky;Asmaa A. El Kholy;Basma T. Ali;Shin-ichi Miyoshi;Rabab E. Omar
Parasites, Hosts and Diseases
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v.61
no.3
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pp.251-262
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2023
Schistosomiasis causes significant morbidity and mortality worldwide. This study aimed to assess the effect of schistosomula lung antigen preparation (SLAP) and soluble egg antigen (SEA) on a murine schistosomiasis mansoni model. Ninety laboratory-bred male Swiss albino mice were divided into 6 groups. Two doses of the vaccine were given at 2-week intervals. All mice were subcutaneously infected with 80±10 Schistosoma mansoni cercariae 2 weeks after the last vaccination dose. They were sacrificed 7 weeks post-infection. Parasitological and histopathological studies were conducted to assess the effect of inoculated antigens (single or combined). The results showed that the combination of SLAP and SEA (combination group) led to a significant reduction in worm burden (65.56%), and liver and intestine egg count (59% and 60.59%, respectively). The oogram pattern revealed a reduction in immature and mature eggs (15±0.4 and 10±0.8, respectively) and an increased number of dead eggs in the combination group (P<0.001). In terms of histopathological changes, the combination group showed notably small compact fibrocellular egg granuloma and moderate fibrosis in the liver. A high percentage of destroyed ova was observed in the intestine of the combination group. This study demonstrates for the first time the prophylactic effect of combined SLAP and SEA vaccine. The vaccine induced a significant reduction in the parasitological and pathological impacts of schistosomiasis mansoni in hepatic and intestinal tissues, making it a promising vaccine candidate for controlling schistosomiasis.
The oncolytic viruses selectively infect and destroy cancer cells, not harming normal cells. The cancer cell materials released by oncolysis, like tumor antigens, stimulate host antitumor immune responses, which is a long-lasting antitumor immunity removing cancer cells in remote parts of the body by a systemic response. Oncolytic viruses armed with transgenes such as cytokines or other immune stimulating factors enhance the immune responses. The first oncolytic virus approved by US-FDA is $Imlygic^{(R)}$ targeting for melanoma. The oncolytic virus is considered as a revolutionary immunotherapy for tumors together with immune checkpoint inhibitors. A variety of oncolytic viruses are under research in the treatment of kidney cancer, liver cancer, breast cancer, and many others solid tumors. Clinical trials have shown promising results in different types of cancers. Here, we present a brief introduction of various aspects of oncolytic virus, and a review of the current status of oncolytic virus therapy development.
Tegumental and excretory-secretory proteins are reported as diagnostic antigens for human opisthorchiasis. Rhophilin associated tail protein1-like (OvROPN1L) protein of Opisthorchis viverrini sperm tail showed potential as a diagnostic antigen. The OvROPN1L recombinant fragments were assayed for diagnostic antigenicity for human opisthorchiasis using indirect ELISA. The strongest antigenic region was a N-terminus peptide of M1 - P56. One synthetic peptide (P1, L3-Q13) of this region showed the highest antigenicity to opisthorchiasis. Sera from other parasitic infections including Strongyloides stercoralis, hookworm, Taenia spp, minute intestinal flukes, Paragonimus spp showed lower reactivity to P1. Peptide P1 is located in the disordered N-terminus of ROPN1L supporting its suitability as linear epitope. In the Platyhelminthes the N-terminal sequence of ROPN1L is diverging with taxonomic distance further suggesting that peptide P1 has potential as diagnostic tool in the genus Opisthorchis/Clonorchis. It should be further evaluated in combination with peptides derived from other O. viverrini antigens to increase its diagnostic power.
Background: Enterotoxigenic Escherichia coli (ETEC) infection is a primary cause of livestock diarrhea. Therefore, effective vaccines are needed to reduce the incidence of ETEC infection. Objectives: Our study aimed to develop a multivalent ETEC vaccine targeting major virulence factors of ETEC, including enterotoxins and fimbriae. Methods: SLS (STa-LTB-STb) recombinant enterotoxin and fimbriae proteins (F4, F5, F6, F18, and F41) were prepared to develop a multivalent vaccine. A total of 65 mice were immunized subcutaneously by vaccines and phosphate-buffered saline (PBS). The levels of specific immunoglobulin G (IgG) and pro-inflammatory cytokines were determined at 0, 7, 14 and 21 days post-vaccination (dpv). A challenge test with a lethal dose of ETEC was performed, and the survival rate of the mice in each group was recorded. Feces and intestine washes were collected to measure the concentrations of secretory immunoglobulin A (sIgA). Results: Anti-SLS and anti-fimbriae-specific IgG in serums of antigen-vaccinated mice were significantly higher than those of the control group. Immunization with the SLS enterotoxin and multivalent vaccine increased interleukin-1β (IL-1β) and tumor necrosis factor-α (TNF-α) concentrations. Compared to diarrheal symptoms and 100% death of mice in the control group, mice inoculated with the multivalent vaccine showed an 80% survival rate without any symptom of diarrhea, while SLS and fimbriae vaccinated groups showed 60 and 70% survival rates, respectively. Conclusions: Both SLS and fimbriae proteins can serve as vaccine antigens, and the combination of these two antigens can elicit stronger immune responses. The results suggest that the multivalent vaccine can be successfully used for preventing ETEC in important livestock.
Hepatitis B virus (HBV) is a major cause of liver cirrhosis and hepatocellular carcinoma. With recent identification of HBV receptor, inhibition of virus entry has become a promising concept in the development of new antiviral drugs. To date, 10 HBV genotypes (A-J) have been defined. We previously generated two murine anti-preS1 monoclonal antibodies (mAbs), KR359 and KR127, that recognize amino acids (aa) 19-26 and 37-45, respectively, in the receptor binding site (aa 13-58, genotype C). Each mAb exhibited virus neutralizing activity in vitro, and a humanized version of KR127 effectively neutralized HBV infection in chimpanzees. In the present study, we constructed a humanized version (HzKR359-1) of KR359 whose antigen binding activity is 4.4-fold higher than that of KR359, as assessed by competitive ELISA, and produced recombinant preS1 antigens (aa 1-60) of different genotypes to investigate the binding capacities of HzKR359-1 and a humanized version (HzKR127-3.2) of KR127 to the 10 HBV genotypes. The results indicate that HzKR359-1 can bind to five genotypes (A, B, C, H, and J), and HzKR127-3.2 can also bind to five genotypes (A, C, D, G, and I). The combination of these two antibodies can bind to eight genotypes (A-D, G-J), and to genotype C additively. Considering that genotypes A-D are common, whereas genotypes E and F are occasionally represented in small patient population, the combination of these two antibodies might block the entry of most virus genotypes and thus broadly neutralize HBV infection.
Control of coccidiosis depends on medication, management, immunity, or some combination of these methods. Prophylactic medication with anticoccidials remains the primary method of control, although the development of drug resistance is a major problem. Shuttle and rotation programs are increasingly used to delay the onset of drug resistance. Sensitivity testing has become an important tool in the identification of what specific medications will be effective in specific poultry operations. Management techniques for the control of coccidiosis have not been totally effective because most disinfectants do not kill the coccidial oocysts. Present methods for vaccination are currently limited to the use of controlled doses of live coccidia. New vaccination methods under investigation include vaccination with attenuated strains or parasite antigens produced either by fractionating the parasites or genetically engineered sub unit vaccines.
A promising approach to the development of a new single-step vaccine, which would eliminate the requirement for multiple injections, involves the encapsulation of antigens into microspheres. Biodegradable poly(lactide-co-glycolide) (PLGA) microspheres gave us a bright insight for controling antigen release in a pulsatile fashion, thereby mimicking two or tree boosting injections. However, in spite of the above merits, the level of immunization induced by a single-shot vaccination is often lower tan two doses of alum-adsorbed antigen. Therefore, optima modification of the microsphere is essential for the development of single-step vaccines. In the review, we discuss the stability of antigen in microsphere, safety and non-toxic in human and encapsulation technology. Also, we attempted to outline relevant physicochemical properties on the immunogenicity of microsphere vaccine and attainment of pulsatile release pater by combination of different microsphere, as well as to analyze immunological data associated with antigen delivery by microsphere. Although a lot of variables are related to the optimized microsphere formulation, we could conclude that judicious choice of proper polymer type, adjustment of particles size, and appropriate immunization protocol along with a suitable adjuvant might be a crucial factor for the generation of long-lasting immune response from a single-step vaccine formulation employing PLGA microsphere.
Cho, Miju;Lee, Hyeri;Hwang, Min Hee;Cheong, Young-Keun;Kang, Chon-Sik;Lee, Nam Taek;Chung, Namhyun
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.60
no.1
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pp.55-59
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2017
Although wheat is a common staple food in the world, some people suffer from a variety of wheat allergies. For example, wheat-dependent exercise-induced anaphylaxis is induced in the gastrointestinal tract by wheat proteins. Relatively high molecular weight proteins that are salt-insoluble induce many wheat allergies. In the present study, we investigated the induction of an allergy response using crude wheat proteins, which are relatively low molecular weight, salt-soluble proteins. The crude antigen used in this study was extracted using phosphate buffered saline. When the antigen extracts from various wheat cultivars were orally administered, differentiable degrees of allergy responses were observed as measured by serum IgE and histamine secretion compared to the control. Serum IgE levels increased following administration of three of the wheat extracts. This evidence suggests that a combination of salt-soluble wheat proteins could be antigens for the induction of various allergy responses.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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