Studies on the interactions of amyloidogenic proteins with trace metals, such as copper, have indicated that the metal ions perform a critical function in the early oligomerization process. Herein, we investigate the effects of Cu(II) ions on the active sequence regions of amyloidogenic proteins using electrospray ionization mass spectrometry (ESI-MS) and collision induced dissociation tandem MS (CID-MS/MS). We chose three amyloidogenic peptides NNQQNY, LYQLEN, and VQIVYK from yeast prion like protein Sup35, insulin chain A, and tau protein, respectively. [Cu-peptide] complexes for all three peptides were observed in the mass spectra. The mass spectra also show that increasing Cu(II) concentrations decrease the population of existing peptide oligomers. The tandem mass spectrum of NNQQNY shows preferential binding for the N-terminal region. All three peptides are likely to appear to be in a Cu-monomer-monomer (Cu-M-M) structure instead of a monomer-Cu-monomer (M-Cu-M) structure.
The ${\pi}-{\pi}$ interactions of the peptide-dimer and peptide-trimer complexes were investigated in the (VQIVYK + LYQLEN) and (VQIVYK + NNQQNY) mixing solutions. The results showed that tyrosine (Y) residues were critical in the formation of hetero peptide-dimers and -trimers during the early oligomerization process. We used collision-induced dissociation (CID) along with electrospray ionization mass spectroscopy (ESI-MS) to obtain the structural information of the hetero-dimers and -trimers. We chose three amyloidogenic peptides-VQIVYK, NNQQNY, and LYQLEN-from tau protein, yeast prion-like protein Sup35, and insulin chain A, respectively. Hetero-dimer, -trimer, -tetramer, and -pentamer complexes were observed in the mass spectra. The tandem mass spectrum of the hetero-dimer and hetero-trimer showed two different fragmentation patterns (covalent and non-covalent bond dissociation). Y-Y interaction structures were also proposed for the hetero-dimer and -trimer complexes.
The fragmentation statistics of ion trap CID (Collision-Induced Dissociation) spectra using 87,661 tandem mass spectra of doubly charged tryptic peptides are analyzed here. In contrast to the usual method of using intensity information, the frequency of occurrence of fragment ions, with respect to the position of the cleavage site and the residues at these sites is studied in this paper. The analysis shows that the frequency of occurrence of fragment ion peaks is more towards the middle of the peptide than its ends. It was noted that amino acid with an aromatic and basic side chain at N- & C- terminal end of the peptide stimulates more peaks at the lower end of the spectrum. The residue pair effect was shown when the amide bond occurs between acidic and basic residues. The fragmentation at these sites (D/E-H/R/K) stimulates the generation of the y-ion peak. Also, the cleavage site H-H/R/K stimulates the generation of b-ions. K-P environment in the peptide sequence has more tendency to generate y-ions than b-ions. Statistical analysis helps in the visualization of the CID fragmentation pattern. Cleavage pattern along the length of the peptide and the residue pair effects, enhance the knowledge of fragmentation behavior, which is useful for the better interpretation of tandem mass spectra.
Ji Won Jang;Jin Yeong Lim;Seo Yeon Kim;Jin Se Kim;Ho-Tae Kim
Mass Spectrometry Letters
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v.14
no.4
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pp.153-159
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2023
The copper ion, Cu(II), binding sites for amyloid fragment Aβ1-16 (=Aβ16 ) were investigated to explain the biological activity difference in the Aβ16 aggregation process. The [M+Cu+(z-2)H]z+ (z = 2, 3 and 4, M = Aβ16 monomer) and [D+Cu+(z-2)H]z+ (z = 3 and 5, D = Aβ16 dimer) structures were investigated using electrospray ionization (ESI) mass spectrometry (MS) and tandem mass spectrometry (MS/MS). Fragment ions of the [M+Cu+(z-2)H]z+ and [D+Cu+(z-2)H]z+ complexes were observed using collision-induced dissociation MS/MS. Three different fragmentation patterns (fragment "a", "b", and "y" ion series) were observed in the MS/MS spectrum of the (Aβ16 monomer or dimer-Cu) complex, with the "b" and "y" ion series regularly observed. The "a" ion series was not observed in the MS/MS spectrum of the [M+Cu+2H]4+ complex. In the non-covalent bond dissociation process, the [D+Cu+3H]5+ complex separated into three components ([M+Cu+H]3+, M3+, and M2+), and the [M+Cu]2+ subunit was not observed. The {M + fragment ion of [M+Cu+H]3+} fragmentation pattern was observed during the covalent bond dissociation of the [D+Cu +3H]5+ complex. The {M + [M+Cu+H]3+} complex geometry was assumed to be stable in the [D+Cu+3H]5+ complex. The {M + fragment ion of [M+Cu]2+} fragmentation pattern was also observed in the MS/MS spectrum of the [D+Cu+H]3+ complex. The {M + [y9+Cu]1+} fragment ion was the characteristic fragment ion. The [D+Cu+H]3+ and [D+Cu+3H]5+ complexes were likely to form a monomer-monomer-Cu (M-M-Cu) structure instead of a monomer-Cu-monomer (M-Cu-M) structure.
A combination of electrospray ionization and tandem mass spectrometry was used to characterize the scavenging reactions of acrylamide (AA) in the presence of glutathione (GSH) in vitro. In the presence of GSH, AA was deactivated effectively and scavenged by reactions consuming small amount of GSH. Reaction products and structural information were identified using collision-induced dissociation (CID) in an ion trap mass spectrometer. In the mixture of GSH and AA, significant increase in abundance of fragment ion peak was observed at m/z 233, which was identified as $[Cys-Glu]^+$, formed by the elimination of glycine moiety of GSH. GSH also contributes to the AA scavenging reaction by conjugating with AA through the sulfhydryl group in cysteine moiety. The probable scavenging reaction pathway of AA in the presence of GSH has been proposed based on the CID experimental data.
Various classes of phospholipids were investigated for the structural determination of fatty acyl groups by fast atom bombardment tandem mass spectrometry (FAB-MS/MS). Phospholipids were desorbed by FAB as molecules chelated with sodium ion (or ions). Collision-induced dissociation (CID) of intact sodium adduct molecular ions ([M+Na]+, [M-H+2Na]+ or [M+Na-2H]-) produced a series of homologous fragment ions via the charge-remote fragmentation along the fatty acid chains. These ions were found useful to locate the double bond positions even for the polyunsaturated fatty acid chains. The regiospecificity of the acyl chain linkages in phosphatidylcholine (PC) could also be determined based on the ratio of relative abundance of the product ions (i.e., [M+Na-85-R2COOH]+ vs [M+Na-85-R1COOH]+) in CID-MS/MS of [M+Na]+. These are generated by the loss of fatty acyl groups at sn-1 and sn-2, respectively, together with the choline group. In all the phospholipid compounds investigated, loss of the fatty acid at the sn-2 position was dominant. The present method was applied to the structural determination of molecular species of phosphatidylglycerols (PG) isolated from cyanobacterium Synechocystis sp. PCC 6803.
Sets of sialic acid-containing trisaccharides having different internal and terminal linkages have been synthesized to develop a sensitive method for analysis of the reducing terminal linkage positions. The trisaccharides, sialyl($\alpha$ 2-3)Gal($\beta$ 1-3)GalNAc and sialyl($\alpha$ 2-3)Gal($\beta$ 1-X)GlcNAc where X=3, 4 and 6, were synthesized and examined using electrospray ionization (ESI)-collision induced dissociation (CID) tandem mass spectrometry (MS/MS). The compounds chosen for this study are related to terminal groups likely to be found on polylactosamine-like glycoproteins and glycolipids which occur on the surface of mammalian cells. The purpose of this study is to develop tandem mass spectrometral methods to determine detailed carbohydrate structures on permethylated or partially methylated oligosaccharides for future applications on biologically active glycoconjugates and to exploit a faster method of synthesizing a series of structural isomeric oligosaccharides to be used for further mass spectrometry and instrumental analysis.
Lee, Hyun Hee L.;Chae, Soo Yeon;Son, Myung Kook;Kim, Hugh I.
Mass Spectrometry Letters
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v.12
no.4
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pp.137-145
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2021
Herein we report multiple ion mobility (IM) peaks in electrospray ionization IM mass spectrometry (ESI-IM-MS) produced by glutamine residue in peptide. The mobility features of 147 peptides were investigated using ESI-IM-MS combined with liquid chromatography. Of these peptides, 66 presented multiple IM peaks, and analysis of their sequence using collision induced dissociation (CID) revealed that glutamine (Gln), as well as proline (Pro), plays a critical role in generating multiple IM peaks. Mutant-based investigations using Gln-containing peptides indicate that the side chain of Gln promotes intermolecular interactions, inducing multiple structures of the peptide ions in the gas phase. Consequently, the present study demonstrates that the distinct ion mobility signatures identified herein can potentially be used to characterize glutamine-containing peptide ions.
The fragmentation patterns of a serine protease inhibitor, camostat, and its degradation product, 4-(4-guanidinobenzoyloxy)phenylacetic acid (GBPA), were for the first time investigated by a triple quadrupole tandem mass spectrometry equipped with an electrospray source (ESI-MS/MS) in positive and/or negative ion mode under collision-induced dissociation (CID). The positive CID spectrum of camostat showed distinctly that the single bond (C-O) cleavage between carbonyl group and oxygen atom of the ester bonds of the compound favorably occurred and then the loss of N,N-dimethylcarbamoylmethyl group was more susceptible than that of guanidine moiety. In the positive ion CID spectrum of GBPA, the initial cleavage between the carbonyl group and oxygen atom of 4-guanidinobenzoyloxy group also occurred, yielding the most abundant fragment ion at m/z 145. On the other hand, the negative CID spectrum of GBPA characteristically showed the occurrence of the most abundant peak at m/z 226 resulting from the sequential neutral losses of $CO_2$ and HN=C=NH from the parent ion at m/z 312.
We have developed a targeted lipidomics approach that makes it possible to directly analyze chiral eicosanoid lipids generated in cellular systems. The eicosanoids, including prostaglandins (PGs), thromboxanes (TXs), leukotrienes (LTs) and alcohols (HETEs), have been implicated as potent lipid mediators of various biological processes. Enzymatic formations of eicosanoids are regioselective and enantioselective, whereas reactive oxygen species (ROS)-mediated formation proceeds with no stereo-selectivity. To distinguish between enzymatic and non-enzymatic pathways of eicosanoid formation, it is necessary to resolve enantiomeric forms as well as regioisomers. High sensitivity is also required to analyze the eicosanoid lipids that are usually present as trace amounts (pM level) in biological fluids. A discovery of liquid chromatography-electron capture atmospheric pressure chemical ionization/mass spectrometry (LC-ECAPCI/MS) allows us to couple normal phase chiral chromatography without loss of sensitivity. Analytical specificity was obtained by the use of collision-induced dissociation (CID) and tandem MS (MS/MS). With combination of stable isotope dilution methodology, complex mixtures of regioisomeric and enantiomeric eicosanoids have been resolved and quantified in biological samples with high sensitivity and specificity. Targeted chiral lipidomics profiles of bioactive eicosanoid lipids obtained from various cell systems and their biological implications have been discussed.
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