Large scale mammalian cell culture has become, over the past two decades, the preferred method to produce therapeutic monoclonal antibodies. In this presentation, I will introduce disposable bioreactor system and analyze key factors and points for consideration during mammalian cell culture process development. Example will be provided highlighting the selection of master cell, culture media and environmental factors based on productivity and product quality.
To verify in vivo viability of IVF-derived bovine embryos, morula and blastocysts that developed from in vitro matured and fertilized ova were transferred to the uteri of recipient cows and normal calves were produced. To produce IVF-derived bovine morula or blastocysts, ova matured and fertilized in vitro were cultured in culture medium for 7~8 days at 39$^{\circ}C$ under the humicified atmosphere of 5% CO2. Two different culture systems, a co-culture system with TCM-199 and bovine epithelial cells (BOEC) and CR1aa without somatic cell support, were compared. Cleavage rates to 2~8 cell stage and developmental rates of IVF-derived bovine embryos to blastocyst stage were not different between co-culture system (51.3 and 14.0%) and CR1aa medium (60.4 and 22.1%), respectively. Embryos were classified into three grades by embryo quality and then one or two embryos in higher quality(A and B grades) were transferred to the uterus of recipients. In this study Korean Native calf was first born after transfer of IVF-derived embryos. Total four live calves were normally developed to term from IVF-derived bovine blastocysts and one female fetus was still-born approximatedly 8 months of gestation, but there was no pregnancy after transfer of morula. Therefore, normal calves could be produced after transfer of IVF-derived bovine embryos cultured in CR1aa medium without somatic cell support. In addition, our results suggest that in transfer of IVF-derived bovine embryos blastocyst stage is better than morula.
This study was designed to investigate the effects of ${\alpha}$-tocopherol and granulosa cells monolayer on nuclear maturation and cleavage rates of ovine cumulus-oocyte complexes (COCs). The COCs (n = 2814) were matured in maturation medium supplemented with various concentration of ${\alpha}$-tocopherol (0, 5, 10, $15{\mu}g/ml$), oocytes were incubated at $39^{\circ}C$ with 5 % $CO_2$ for 24 h in three culture systems: (a) maturation medium (MM; n = 884), (b) co-cultured with granulosa cells (CG; n = 982) and (c) co-cultured with granulosa cells and cells were further cultured in MM for 12 h (CG + 12hMM; n = 948). Our results showed that ${\alpha}$-tocopherol had no effect on GVBD and MII as compared to control group, but when ${\alpha}$-tocopherol added to maturation medium the rate of cleavage decreased. This indicates interaction of above mentioned factors in any of the treatments showed no significant differences on the rate of maturation and cleavage stages (MII, GVBD and cleavage) (p > 0.05). The oocytes co-cultured with granulosa cells for 24 h had beneficial effects on cleavage rate. The maximum MII and cleavage rates were achieved when oocytes had extra 12 h culture in the maturation medium without granulosa cells. Results also showed our modified co-culture system (CG + 12hMM), improved rates of MII and the cleavage in comparison with other studied maturation systems.
This experiment was carried out to develop an in vitro culture system for rabbit embryos. The zygotes or 2-cell embryos were collected from the oviducts of the superovulated and mated does with D-PBS/10% FCS at 24 hours after hCG injection. The in vitro developmental rate of blastocyst formation and the number of nuclei in the embryos were examined under the following treatments; 1) TCM-199 with 10% FCS, 2) EBSS with 10% FCS, 3) rabbit vitreous humor(VH), 4) TCM-199 with 10% FCS+BOEC, 5) TCM-199 with 10% FCS+ROEC, 6) EBSS with 10% FCS+BOEC and 7) EBSS with 10% FCS+ROEC. For a comparative study of in vivo and in vitro development, the fresh blastocysts, which were developed in vivo for 96 hours after hCG injection, were collected from the uterus and their numbers of nuclei were counted. 1. The zygotes or 2-cell embryos developed to the blastocyst stage in TCM-199, EBSS and VH at the rates of 93, 92 and 89%, respectively. 2. The higher developmental rates 95~98% of blastocyst formation was achieved when the embryos were co-cultured with a monolayer of bovine or rabbit oviductal epithelial cells in TCM-199 or EBSS. No significant difference in developmental rates was shown between bovine and rabbit oviductal epithelial cells. 3. In a comparative study of in vivo and in vitro development, the total numbers of nuclei were significantly less in the in vitro cultured embryos(104~224) than the in vivo developed embryos(1, 0090 at 96 hours after hCG injectin. 4. The mean cell cycle numbers in the embryos cultured for 72 hours in TCM-199 with 10% FCS, EBSS with 10% FCS, TCM-199 with 10% FCS+BOEC, TCM-199 with 10% FCS+ROEC, EBSS with 10% FCS+BOEC and in vivo was 7.38, 6.63, 7.76, 7.69, 7.01 and 9.92, respectively. From these results, it can be suggested the optimal culture system for in vitro culture of rabbit embryos is a co-culture system with bovine or rabbit oviductal epithelial cells in TCM-199 with 10% FCS. Considering the significant reduction in total numbers of nuclei in the in vitro cultured embryos, the advanced research on development of in vitro culture system for rabbit embryos is expected.
To obtain informations for construction of a mass culture system, factors affecting on the specific growth rate of marine Chlorella sp. purchased from the Chungmu Laboratory of the South Sea Fisheries Institute, the National Fisheries Research and Development Agency were investigated using a vertical tubular photobioreactor (VT-PBR) system. Optimal temperature, illumination intensity, air- and $CO_{2-}$ flow rate for Chlorella sp. were $20^{\circ}C$, 6,000 lux, 0,56 vvm and 0.028 vvm, respectively.
Present study was performed to investigate the effect of single and co-culture of adipocyte and muscle cell lines on cell differentiation. 3T3-L1 (adipocyte) and L6 (muscle) cell lines were single-cultured on the condition of 10% fetal bovine serum (FBS)/Dulbeco's modified eagle's medium (DMEM) for 48 h followed by culture within 5% FBS/DMEM as a growth media. Then, the growth media was replaced by differentiation media composed of 2% FBS/DMEM without additives in single- or co-culture of the 3T3-L1 and the L6 cells to induce differentiation of both cell types. In co-culture system, the 3T3-L1 and the L6 cells were grown in separated places by being seeded on a $0.4{\mu}m$ insert membrane and on the bottom of 6 well plate, respectively. Cell differentiation was measured using morphological investigation and cytosolic analysis of glycerol-3-phosphate dehydrogenase (GPDH; for 3T3-L1) and creatine kinase (CK; for L6). Based on the GPDH results, the presence of L6 cells did not stimulate 3T3-L1 differentiation showing more differentiation of 3T3-L1 cells in the single-culture compared to the co-culture condition. In contrast, 3T3-L1 cells in the co-culture promoted differentiation of L6 cells. Enzymatic analysis supported this result showing that 3T3-L1 cells showed statistically (P<0.05) higher GPDH activity in the single-culture than the co-culture, whereas CK results of L6 cells were vice versa (P<0.05). Overall, present results may indicate that co-culture system is more reliable and precise technique compared to single-culture. Further studies on several co-culture trials including different media conditions, supplementation of differentiating substances, molecular biological analysis, etc. should be required to obtain practical and fundamental mass data.
Optimization of the preimplantation mammalian embryo culture condition was widely focused on refining medium composition under the name of chemically defined media. However, recent research revealed that the alteration of physical environment can be a crucial factor to a successful embryo development. In this study, under the same embryo density, a novel culture device named oil-free micro tube culture (MTC) system was evaluated using porcine parthenogenetic embryos. The activated oocytes were placed into the 0.2 ml thin-wall flat cap PCR tube and cultured to the blastocyst stage. As a preliminary step, embryo density and culture medium volume were optimized under a standard drop culture system. The optimal embryo density range for in vitro culture was 0.5 embryos per ${\mu}l$ in $20\;{\mu}l$ drop (20.5%) and 1.0 embryos per ${\mu}l$ in $10\;{\mu}l$ drop (20.6%). Based on these results, we compared drop culture system and 'MTC' system in terms of the developmental rate to the blastocyst stage. In $20\;{\mu}l$ medium volume, the 'MTC' system showed similar blastocyst formation rate when compared with drop culture system (20.2% versus 20.5%, respectively) while the 'MTC' system showed lower blastocyst formation rate than drop culture system in $10\;{\mu}l$ one (12.7% versus 20.0%, respectively). Therefore the $20\;{\mu}l$ MTC system may be an alternative incubation system for short-distance embryo transport without carrying the $CO_2$ incubator and this provides novel embryo culture device to clinical veterinary embryologists.
The uptake of glucose for metabolism and growth is essential to most animal cells and is mediated by glucose-transporter (GLUT) proteins. The aim of this study was to determine which class of glucose transporter molecules was responsible for uptake of glucose in the mouse early embryo and at which stage the corresponding genes were expressed. In addition, co-culture system with vero cell was used to investigate the effect of the system on GLUT expression. Two-cell stage embryos were collected from the superovulated ICR female and divided into 3 groups. As a control, embryos were cultured in 0.4% BSA-T6 medium which includes glucose. For the experimental groups, embryos were cultured in either co-culture system with vero cells or glucose-free T6 medium supplemented with 0.4% BSA and pyruvate as an energy substrate. 2-cell to blastocyst stage embryos in those groups were respectively collected into microtubes (50 embryos/tube). Total RNA was extracted and RT-PCR was performed. The products were analysed after staining ethidium bromide by 2% agarose gel electrophoresis. Blastocysts were collected from each group at l20hr after hCG injection. They were fixed in 2.5% glutaraldehyde, stained with hoechst, and mounted for observation. In control, GLUT1 was expressed from 4-cell to blastocyst. GLUT2 and GLUT3 were expressed in morula and blastocyst. GLUT4 was expressed in all stages. When embryos were cultured in glucose-free medium, no significant difference was shown in the expression of GLUT1, 2 and 3, compared to control. However GLUT4 was not expressed until morular stage. When embryos were co-cultured with vero cell, there was no significant difference in the expression of GLUT1, 2, 3 and 4 compared to control. To determine cell growth of embryos, the average cell number of blastocyst was counted. The cell number of co-culture ($93.8{\pm}3.1$, n=35) is significantly higher than that of control and glucose-free group ($76.6{\pm}3.8$, n=35 and $68.2{\pm}4.3$, n=30). This study shows that the GLUT genes are expressed differently according to embryo stage. GLUTs were detectable throughout mouse preimplantation development in control and co-culture groups. However, GLUT4 was not detected from 2- to 8-cell stage but detected from morula stage in glucose-free medium, suggested that GLUT genes are expressed autocrinally in the embryo regardless of the presence of glucose as an energy substrate. In addition, co-culture system can increase the cell count of blastocyst but not improve the expression of GLUT. In conclusion, expression of GLUT is dependent on embryo stage in preimplantation embryo development.
This study was conducted to examine the condition of in vitro culture system and the viability after embryo transfer of in vitro matured-in vitro fertilized (IVM-IVF) bovine embryos. The in vitro development to the blastocyst stage was enhanced by supplying bovine serum albumin(BSA) to co-culture medium with bovine oviduct epithelial tissue(BOET) compared with that in medium supplemented with fetal bovine serum(FBS) (41.2% vs. 26. 3%, P<0.05). After transfer of IVM-IVF blastocysts into the uterine horn of recipient females (Aberdeen Angus), one was pregnant to term and produced a head of male Korean native calf. These results confirm that the in vitro development of IVM-IVF bovine embryos is affected with different protein source in co-culture with BOET, and IVM-IVF embryos can develop to term after in vitro culture and embryo transfer.
An internal membrane bioreactor system was employed for continuous succinic ac id production from glucose in order to prove its performance and practicality. Succinic acid-producing Anaerobiospirillum succiniciproducens required more $CO_2$ for the proper growth and succinic acid production in cell recycled continuous culture than in batch culture. The maximum productivity obtained in cell recycled continuous culture was about 3.3 g/L-h which was ca. 3.3 times higher than that obtained in batch culture.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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