The fire resistance of thermal insulation and interior finishing materials is recently much emphasized after the fire accident at the Icheon Cold Store in January 2008. Three kinds of thermal insulation are used in buildings. They are Organic, Non-organic and cellulosic insulation. Organic insulation such as polystyrene foam board and urethane foam has high thermal resistance but it has no fire resistance. While non-organic insulation such as rockwool and glassfiber has high fire resistance, it has lower thermal resistance than organic insulation. Cellulose insulation is primarily manufactured from recycled newsprint or cardboard using shredders and fiberizers. Despite of its environmental friendliness and high thermal resistivity, its domestic use has not much increased because of the prejudice that paper can easily burn. However, the cellulose insulation as a product is about 80 wt.% cellulosic fiber and 20 wt.% chemicals, most of which are fire retardants such as boric acid and ammonium sulfate. It is required to secure its fire safety for more consumption as a building insulation in Korea. Therefore, this study investigates the fire resistance of Korean cellulose insulation according to the rate of fire retardant and finally presents the optimum rate of fire retardant in cellulose as building insulation. The fire safety test was conducted according to the ASTM C 1485-00. The test results indicate that above 18 wt% of fire retardant is necessary to secure the fire safety of cellulose insulation.
Ficin, a proteolytic enzyme in Fig latex, was extracted and purified with using ammonium sulfate and CM-cellulose column chromatography, respectively, and studied for its chemical properties. The disc gel electrophoresis showed one major and three minor bands for $(NH_4)_2SO_4$ extract and only one band showed after CM-cellulose chromatography. The optimum conditions for ficin activity was found to be pH 7.0 and $50^{\circ}C$. The amino acids composition of the purified ficin were 21.8% as acidic, 3.5% as basic and 74.7% as neutral amino acids. The amino acids analysis indicated that the ficin was composed of 174 amino acids residue having molecular weight of 19,500.
A cellulose-degrading enzyme from Ganoderma lucidum was partially purified by ammonium sulfate precipitation and its enzymatic properties were studied. The enzyme had an optimum pH for activity at 4.0, and its stability range was pH $4.0{\sim}7.0$. The optimum temperature was $55^{circ}C$ and the enzyme retained 80% original activity after heated at $50^{\circ}C$ for 60 min. The activation energy of the enzyme for CMC degradation was caculated and found to be 6.2 Kcal/mole. The enzyme was activited by the addition of $Co^{++},\;Mn^{++}$, but slightly inactivated by $Hg^{++}$. Various enzyme inhibitors and chemical reagents did not affect the enzyme activity. The enzyme acted on native celluose as well as CMC. The Michaelis constant for CMC was calculated to be 2.4 mg glucose ep/ml.
Cultivation conditions for the production of extracellular alkaline protease by a nonpiamentation Serratia sp. and purification of the enzyme were studied. The maximum enzyme level was obtained at the beginning of stationary phase when the organism was cultured on brain heart infusion medium at $25^{\circ}C$ under aeration (gyratory shaking, 180 cycles/min). The enzyme was purified about 100 fold with 16.5% yield by ammonium sulfate precipitation, ammonium sulfate fractionation followed by DEAE-cellulose chromatography (1st and 2nd). The purified enzyme moved as a single symmetrical peak in the analytical ultracentrifuge. The enzyme demonstrated its maximum activity at pH 8.5-9.0 and 4$0^{\circ}C$ when vitamin-free casein was used as a substrate.
1. Crude cellulase extracted from wheat bran media of Chaetomium globosum with pH 7.0 McIlvaine buffer was fractionated by precipitation with ammonium sulfate and by treatment with the cellulose powder, DEAE-Sephadex A-25 and Amberite XE-65 (IRC-50) column chromatography. 2. Consquently two cellulases C-1 and C-2 were obtained by cellulose column chromatography. Cellulose C-1 was a powerful CMC-saccharifying and CMC-liquefying activity but cellulose C-2 was stronger CMC-liquefying activity compared to CMC-saccharifying activity and cellulase C-2 had smaller protein than that of cellulose C-1. And cellulose C-2 was fractionated by DEAE-Sephadex A-25 column chromatography into cellulase C-1-1 and cellulose C-1-2. 3. It can be obtained, therefore, that cellulose produced Chaelomium globosum consisted, at least, of three cellulases C-2, C-1-1 and C-1-2. 4. Cellulose C-1-1 was homogenous in the ultraviolet and the ultracentrifuge pattern. And cellulose C-1-1 had enzyme for CMC-saccharifying activity. 5. The optimum pH for the enzyme activity of cellulose C-1-1 was 4.0 in any methods of meas urement reducing sugar and viscosity. The optimum temperature was $40^{\circ}C$ in any methods. 6. The pH stability of cellulase C-1-1 was within pH 5.0 to pH 6.0 at $40^{\circ}C$ and fairly stable in acidic solution. 7. The heat stability was below $50^{\circ}C$ at pH 4.0 and complete heat inactivation of this cellulase occurred at $70^{\circ}C$.
Journal of Korean Academy of Oral and Maxillofacial Radiology
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v.23
no.2
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pp.291-299
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1993
This study was designed to evaluate the correlationship between radiologic classifications of cysts in oral region and glycosaminoglycan analysis of cystic fluids using cellulose acetate electrophoresis. The materials for this study consisted of 37 cases-8 periapical cysts, 10 dentigerous cysts, 10 primordial cysts, 2 residual cysts, 3 incisive canal cysts, 2 post-operative maxillary cysts, 1 mucocele on maxillary sinus, & 1 unicystic ameloblastoma-diagnosed as cystic lesions radiologically. The obtained results were as follows: 1. At the stepwise discriminant analysis, four variables-low mobility material, heparin, hyaluronic acid, & dermatan sulfate-were used to define diagnostic model for the odotogenic cyst. The model produced a sensitivity of 100% and a specificity of 85%. 2. The intensities of heparin and chondroitin-4-sulfate were greater in dentigerous cyst than periapical cyst(p<0.05). The intensity of chondroitin-4-sulfate was greater in primordial cyst than in periapical cyst(p<0.05). 3. It showed no statistically significant difference in glycosaminoglycan of the cystic fluids between dentigerous cyst and primordial cyst(p>0.05). 4. On the fluids of the cysts originated from maxillary sinus, there were especially high intensities of heparin and dermatan sulfate, and low intensity of chondroitin-4-sulfate. 5. On the fluids of unicystic ameloblastoma, there were high intensity of dermatan sulfate and low intenity of chondroitin-4-sulfate.
The properties of polygalacturonase by Ganoderma lucidum in liquid culture were investigated. The enzyme was composed of an endo- and an exo-polygalacturonase. The endo- and exo-polygalacturonase were purified approximately 56 and 9.2-fold, respectively, through ammonium sulfate fractionation, gel filtration on Biogel P-100, anion exchange chromatography on DEAE-cellulose, gel chromatography on Sephadex G-150 and re-gel chromatography on Sephadex G-150. The endo- and exo-polygalacturonase had higher affinity for apple pectin than for citrus pectin or pectic acid. The Km values of the endo- and exo-polygalacturonase for apple pectin, determined on the Lineweaver-Burk plot, were 1.44 and 10.6 mg $ml^{-1}$ for apple pectin, respectively. Purified endo-polygalacturonase was found to be homogeneous electrophoretically and had a molecular weight of 54,000 estimated on SDS polyacrylamide gel. The optimal pH for the activity of the enzymes was 4.0. The endo- and exo-polygalacturonase were stable in the pH range of 4.0 to 6.0 and 3.5 to 5.5, respectively. The optimal temperatures of the endo- and exo-polygalacturonase were 40 and $60^{\circ}C$, respectively. The exo-polygalacturonase was more resistant to heat than the endo-polygalacturonase, requiring heating for 40 min at $80^{\circ}C$ for complete inactivation. The activity of the endo-polygalacturonase was increased by $Ca^{++}$ and $Mn^{++}\;ions$, while that of the exo-polygalacturonase was increased by $Ca^{++}\;ion$ only, and was not affected by $Mn^{++}\;ion$.
Chitinase (EC 3.2.1.14) was isolated from the culture filtrate of Streptomyces sp. M-20 and purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE-cellulose ion-exchange chromatography, and Sephadex G-100 gel filtration. No exochitinase activity was found in the culture filtrate. The molecular mass of the purified chitinase was 20 kDa, estimated by a sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis, and was confirmed by activity staining with Calcofluor White M2R. Chitinase was optimally active at pH of 5.0 and at $30^{\circ}C$. The enzyme was stable from pH 4 to 8, and up to $40^{\circ}C$. Among the metals and inhibitors that were tested, the $Hg^+$, $Hg^{2+}$, and p-chloromercuribenzoic acid completely inhibited the enzyme activity. The chitinase activity was high on colloidal chitin, chitotriose, and chitooligosaccharide. The purified chitinase showed antifungal activity against Botrytis cinerea, and lysozyme activity against the cell wall of Botrytis cinerea.
Journal of the Korean Society of Clothing and Textiles
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v.22
no.8
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pp.1060-1068
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1998
The effects of various catalysts and softners on the anti-crease finish of ramie with glyoxal were investigated. A number of metal salts commonly used as Lewis acid catalysts in DP finishing of cotton with formaldehyde and N-methylol agents were screened for glyoxal treatment of ramie fabric. Various organic and inorganic acids were mixed with Lewis acid catalyst as co-catalysts to improve catalytic activity. As a result, the combination of aluminum sulfate and citric acid was proven highly effective in catalyzing the crosslinking of ramie cellulose by glyoxal under lower curing temperature. With a mixed catalyst, performance properties, such as whiteness and tearing strength as well as wrinkle recovery of treated ramie fabric were improved as compared with that treated with aluminum sulfate alone. Additional improvement of tearing strength and wrinkle recovery was achieved by applying silicons softner in the treatment bath.
A thermotolerable restriction endonuclease. Svil, found in Streptomyces violochromogenes D2-5 was purified. For the purification, streptomycin sulfate and ammonium sulfate precipitation was used. Ph osphocellulose P-ll, DEAE-Cellulose and Sephacryl-S200 HR colum chromatography were also performed. The purified enzyme was found to be homogeneous and the molecular weight of the enzyme estimated by polyacrylamide gel electrophoresis containing 0.1$%$ SDS was about 32, 000 daltons. The recognition sequence and cleavage site of the enzyme were determined to be $5^1$-$TT\downarrow CGAA$-$3^1$ which is the same sequence as that of Asull. Unlike Asull, however, the Svil shows high thermal stability.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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