Objective: This study was to compare the characteristics between parthenogenetic mES (P-mES) cells and in vitro fertilization mES cells. Materials and Methods: Mouse oocytes were recovered from superovulated 4 wks hybrid F1 (C57BL/6xCBA/N) female mice. For parthenogenetic activation, oocytes were treated with 7% ethanol for 5 min and $5{\mu}g$/ml cytochalasin-B for 4 h. For IVF, oocytes were inseminated with epididymal sperm of hybrid F1 male mice ($1{times}10^6/ml$). IVF and parthenogenetic embryos were cultured in M16 medium for 4 days. Cell number count of blastocysts in those two groups was taken by differential labelling using propidium iodide (red) and bisbenzimide (blue). To establish ES cells, b1astocysts in IVF and parthenogenetic groups were treated by immunosurgery and recovered inner cell mass (ICM) cells were cultured in LIF added ES culture medium. To identify ES cells, the surface markers alkaline phosphatase, SSEA-1, 3,4 and Oct4 staining were examined in rep1ated ICM colonies. Chromosome numbers in P-mES and mES were checked. Also, in vitro differentiation potential of P-mES and mES was examined. Results: Although the cleavage rate (${\geq}$2-cell) was not different between IVF (76.3%) and parthenogenetic group (67.0%), in vitro development rate was significantly low in parthenogenetic group (24.0%) than IVF group (68.4%) (p<0.05). Cell number count of ICM and total cell in parthenogenetic b1astocysts ($9.6{\pm}3.1,\;35.1{\pm}5.2$) were signficantly lower than those of IVF blastocysts ($19.5{\pm}4.7,\;63.2{\pm}13.0$) (p<0.05). Through the serial treatment procedure such as immunosurgery, plating of ICM and colony formation, two ICM colonies in IVF group (mES, 10.0%) and three ICM colonies (P-mES, 42.9%) in parthenogenetic group were able to culture for extended duration (25 and 20 passages, respectively). Using surface markers, alkaline phosphatase, SSEA-l and Oct4 in P-mES and mES colony were positively stained. The number of chromosome was normal in ES colony from two groups. Also, in vitro neural and cardiac cell differentiation derived from mES or P-mES cells was confirmed. Conclusion: This study suggested that P-mES cells can be successfully established and that those cell lines have similar characteristics to mES cells.
Kim, J.Y.;Park, M.C.;Kim, S.B.;Park, H.D.;Lee, J.H.;Kim, Jae-Myeoung
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제22권8호
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pp.1117-1123
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2009
This study investigated the effects of IGF-I and EGF on the development of blastocysts or hatched blastocysts during the in vitro culture of embryos from immature porcine oocytes. After the in vitro maturation and fertilization of cumulus-oocyte complexes (COCs) and their culture in vitro in PZM3 medium, we examined the embryo development rate for 168 h. When different concentrations of IGF-I (0, 1, 10, 20 ng/ml) were supplemented to fertilized porcine embryos in vitro, there were no significant differences in cleavage rate, blastocyst development rate or blastocyst hatching rate among the treated groups. On the other hand, when different concentrations of EGF (0, 1, 10, 20 ng/ml) were supplemented to the in vitro culture medium, blastocyst development rate was highest in the group in which EGF was not supplemented and, specifically, it was higher than in the 20 ng/ml treatment group (p<0.05). When 10 ng/ml IGF-I and 1 ng/ml EGF were supplemented separately or simultaneously, there were no significant differences among the treated groups in blastocyst hatching rate and the number of cells in each condition. This study demonstrated that the addition of IGF-I and EGF into PZM3 medium did not enhance development of the blastocyst stage and total cell number in blastocysts.
Hyejin Yoon;Jongwoo Lee;Inyoung Kang;Kyoo Wan Choi;Jaewang Lee;Jin Hyun Jun
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제50권4호
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pp.244-252
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2023
Objective: We evaluated the efficacy of the newly developed optimized in vitro culture (OIVC) dish for cultivating preimplantation mouse embryos. This dish minimizes the need for mineral oil and incorporates microwells, providing a stable culture environment and enabling independent monitoring of individual embryos. Methods: Mouse pronuclear (PN) zygotes and two-cell-stage embryos were collected at 18 and 46 hours after human chorionic gonadotropin injection, respectively. These were cultured for 120 hours using potassium simplex optimized medium (KSOM) to reach the blastocyst stage. The embryos were randomly allocated into three groups, each cultured in one of three dishes: a 60-mm culture dish, a microdrop dish, and an OIVC dish that we developed. Results: The OIVC dish effectively maintained the osmolarity of the KSOM culture medium over a 5-day period using only 2 mL of mineral oil. This contrasts with the significant osmolarity increase observed in the 60-mm culture dish. Additionally, the OIVC dish exhibited higher blastulation rates from two-cell embryos (100%) relative to the other dish types. Moreover, blastocysts derived from both PN zygotes and two-cell embryos in the OIVC dish group demonstrated significantly elevated mean cell numbers. Conclusion: Use of the OIVC dish markedly increased the number of cells in blastocysts derived from the in vitro culture of preimplantation mouse embryos. The capacity of this dish to maintain medium osmolarity with minimal mineral oil usage represents a breakthrough that may advance embryo culture techniques for various mammals, including human in vitro fertilization and embryo transfer programs.
In our previous study, we observed that hydrosalpingeal fluid (HSF) adversely effect mouswe embryo development and hatching. The aim of this study was to evaluate the effect of HSF as assessed by the blastocyst development rate (BDR) and by cell counting in vitro. HSF was collected from ninie patients undergoing salpingoneostomy to correct hydrosalpinx. Two-cell embryos were obtained from superovulated ICR mice. T6 medium and $T6{\pm}0.4%$ bovine serum albumin were used as control media. T6 medium containing 10% or 50% HSF and 100% HSF from each patient were used as test media. Nine to 15 embryos were cultured in micro drops prepared from each of these media. To assess the total cell number within each blastocyst, the blastocysts were fixed and stained with Hoechst 33342 to facilitate cell counting. The mean BDR in two control media were 88.89% and 85.40%. The mean BDR in media containing 10%, 50%, 100% HSF were 85.87%, 89.58% and $75.57%^*$, respectively ($^*$: p<0.05). The overall mean cell count $({\pm}SEM)$ in control media were $87.6{\pm}9.65\;and\;90.12{\pm}11.38$. The BDR was affected adversely only by 100% HSF and not in media containing 10% or 50% HSF. Mean cell counts were decreased significantly only in blastocysts cultured 100% HSF ($63.8{\pm}13.66$; p<0.01) but not in blastocysts cultured in 10% or 50% HSF ($91.3{\pm}12.44\;and\;82.9{\pm}18.27$, respectively). Thus, it is concluded that HSF has no embyotoxic effect but has a mildly negatively effect on embryonic growth and development.
Oxygen consumption has been regarded as a useful indicator for assessment of mammalian embryo quality. This study was performed to investigate whether oxygen consumption reflects morphological grade of in vivo derived bovine blastocyst-stage embryos (blastocyst). The oxygen consumption of in vitro produced blastocyst was compared to its total cell number. In addition, pregnant rate was measured after transplantation of in vivo blastocysts with different oxygen consumption. The quality of blastocyst collected on day 7 after artificial insemination was categorized as grade I and II (G I and G II) based on microscopic observation of the morphology. Oxygen consumption of blastocyst was measured using a scanning electrochemical microscopy (SECM) and total cell number of in vitro blastocyst was enumerated by counting cells stained by propidium iodide. Pregnancy of recipient cow was confirmed with rectal palpation after 60 days of embryo transfer. The oxygen consumptions of G I blastocysts were significantly higher than those of G II blastocysts ($10.2{\times}10^{15}/mol\;s^{-1}$ versus $6.4{\times}10^{15}/mol\;s^{-1}$, p<0.05). Total cell numbers of in vitro blastocysts were 74.8, 90.7, and 110.2 in the oxygen consumption of below 10.0, 10.0~12.0, and over $12.0{\sim}10^{15}/mol\;s^{-1}$ respectively. Total cell number was significantly increased in embryos with high oxygen consumption (p<0.05). Pregnant rate in recipient cow was 0, 50, and 85.7% in the transplantation of embryo with the oxygen consumption of below 10.0, 10.0~12.0, and over $12.0{\times}10^{15}/mol\;s^{-1}$, respectively. These results suggest that measurement of oxygen consumption may help increase the pregnant rate of bovine embryos.
Objective : The purpose of the current series of experiments were to assess the effect of GM-CSF, as a medium supplement, on the development of mouse embryos and the expression of LIF and IL-1? mRNA. Materials and Methods: Mouse 2-cell embryos were collected from the oviducts of 6 weeks old ICR mice at 48 hours after hCG injection. Embryos were cultured in P-1 medium supplemented with mouse GM-CSF (0, 1, 5, 10 ng/ml). The embryo development to blastocysts and hatching blastocysts was assessed and the cell number in blastocyst was also examined. Using RT-PCR, the expressions of LIF and IL-1? mRNA in blastocyst were evaluated in the GM-CSF supplemented group and control group. Results: In mouse, the addition of GM-CSF increased the percentage of blastocysts (65.5%, 68.6%, 73.0% and 76.1% for control and 1, 5 and 10 ng/ml, respectively), and increased the proportion of hatching blastocysts (35.2%, 36.4%, 43.2% and 53.0% for control and 1, 5 and 10 ng/ml, respectively). The mean cell numbers in blastocyst were significantly increased in GM-CSF supplemented groups compared to control group. LIF and IL-1? expression in blastocyst were significantly higher in GM-CSF supplemented group than in control group. Conclusion: The results of experiment by mouse embryos showed beneficial effects of GM-CSF as a medium supplement. Furthermore, the addition of GM-CSF significantly increased the expression of LIF and IL-1? in mouse embryos. These results suggest that GM-CSF might be a important molecule in embryo implantation.
Kim, Mi-Jeong;Jung, Bae-Dong;Park, Choon-Keun;Cheong, Hee-Tae
한국발생생물학회지:발생과생식
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제25권1호
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pp.43-53
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2021
We examine the effect of endoplasmic reticulum (ER) stress inhibitor treatment time on the in vitro development of porcine somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos. Porcine SCNT embryos were classified by four groups following treatment time of ER stress inhibitor, tauroursodeoxycholic acid (TUDCA; 100 µM); 1) non-treatment group (control), 2) treatment during micromanipulation process and for 3 h after fusion (NT+3 h group), 3) treatment only during in vitro culture after fusion (IVC group), and 4) treatment during micromanipulation process and in vitro culture (NT+IVC group). SCNT embryos were cultured for six days to examine the X-box binding protein 1 (Xbp1) splicing levels, the expression levels of ER stress-associated genes, oxidative stress-related genes, and apoptosis-related genes in blastocysts, and in vitro development. There was no significant difference in Xbp1 splicing level among all groups. Reduced expression of some ER stress-associated genes was observed in the treatment groups. The oxidative stress and apoptosis-related genes were significantly lower in all treatment groups than control (p<0.05). Although blastocyst development rates were not different among all groups (17.5% to 21.7%), the average cell number in blastocysts increased significantly in NT+3 h (48.5±2.3) and NT+IVC (47.7±2.4) groups compared to those of control and IVC groups (p<0.05). The result of this study suggests that the treatment of ER stress inhibitor on SCNT embryos from the micromanipulation process can improve the reprogramming efficiency of SCNT embryos by inhibiting the ER and oxidative stresses that may occur early in the SCNT process.
Beta-catenin is very important in early development including involvement in cell adhesion, cell signaling, and developmental fate specification. Cell-cell interaction is an important process during mammalian embryonic development. In preimplantation embryos, embryonic compaction is the process of increased cellular flattening and adhesion of junctional complexes and results in a polarized distribution. Beta-catenin is associated with embryonic compaction in mammals. Here, we examined the relationship between beta-catenin expression and compaction in porcine embryos derived from in vitro fertilization. First of all, we investigated beta-catenin expression in each embryonic developmental stage and also focused on expression pattern according to full, partial and non-compaction at morula stage. We used the immunocyto-chemical method in this research. To confirm compaction affects on the embryonic development, we compared between compaction and developmental rates to the blastocyst. The result showed that compaction and non-compaction rates were 14.6% and 63.8% at 4 days after IVF, respectively The developmental rates to the blastocyst and their total cell number were 50.9% vs 36.4% and 41.4$\pm$11.5 vs 26.8$\pm$12.7 in compaction and non-compaction groups. Although no difference was detected in the ratio of ICM to total cells between two groups, total cell number of the blastocysts in compaction group was superior to that of the blastocysts in non-compaction group (P<0.05). Expression of beta-catenin appeared in the boundary of membrane surface between blastomeres in 2- and 4-cell stage, and observed irregular pattern from 8-cell to blastocyst stage. We also investigated beta-catenin expression pattern according to the degree of compaction in the 3 groups; full, partial (>50%) and non-compaction. The expression signal in fully compacted embryos was stronger than those of partial and non-compacted embryos. Especially, beta-catenin expression appeared various patterns in morula stage suggesting the aberrant distribution of beta-catenin is affected by compaction patterns. Our results suggest that abnormal beta-catenin expression was affected by embryo quality and further development in porcine embryos in vitro.
Kim, Jin-Woo;Park, Hyo-Jin;Yang, Seul-Gi;Koo, Deog-Bon
한국동물생명공학회지
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제35권4호
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pp.347-356
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2020
Gangliosides are glycolipids in which oligosaccharide is combined with sialic acids. Our previous studies have suggested an interplay between ganglioside GD1a/GT1b and meiotic maturation capacity in porcine oocyte maturation. Furthermore, ganglioside GD1a and GT1b are known for its antioxidant activity, but it is still unclear whether possible antioxidant role of GD1a and GT1b is involved in porcine embryos development competence during in vitro culture (IVC). Here, the effects of ganglioside GD1a and GT1b on the embryonic developmental competence during in vitro culture of porcine were investigated. The effects of ganglioside GD1a and GT1b on the expression of ST3GAL2 were confirmed during embryos development (2-cell, 4-cell, 8-cell and blastocyst) using immunofluorescent staining (IF). As a result, the fluorescent expression of ST3GAl2 was higher in embryos at 4-8 cells stage than blastocysts. Blastocyst development rate significantly increased in only 0.1 μM GD1a and GT1b treated groups compared with control group. To investigate the cellular apoptosis, we analyzed TUNEL assay. In case of only 0.1 μM GD1a and GT1b treated groups, the total number of cells in blastocyst compared with control group, but there was no significant difference in the rate of apoptotic cells. We identified the intracellular ROS levels using DCF-DA staining. According to the result, ROS production significantly decreased in blastocysts derived from the 0.1 μM GD1a and GT1b treated groups. These results suggest that ganglioside GD1a and GT1b improve the developmental competence of porcine embryos via reduction of intracellular ROS during preimplantation stage.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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