Sequential changes in cell proliferation during the development of epitherial kidney tumors induced in rats were investigated by autoradiographic determination of the $^3H$-thymidine-labeling index. Renal cell tumors were induced in male Sprague-Dawley rats by oral administration of N-nitrosomorpholine at the concentration of 120 mg/l in the drinking water for 7 weeks. At different times between 12 and 34 weeks after withdrawal of the carcinogen (stop model) animals were sacrificed. According to cytological criteria, neoplastic lesions were classified into clear cell, acidophilic cell, basophilic cell and oncocytic tumors. The labeling index was found to be increased in all types of preneoplastic tubules as compared to their corresponding original tubules. A much stronger elevation of cell proliferation was ocurred during the development of renal cell tumors from preneoplastic tubules. Of four tumor types, acidophilic cell tumor showed the highest labeling index while oncocytoma exhibited the lowest proliferative activity. These findings are in good accordance with the clinical observations that acidophilic cell tumors have a worse prognosis than oncocytoma. The data presented in this study suggest that the individual proliferation rates may be an objective biological marker of kidney tumor aggressiveness.
The present study was carried out to determine viral antigens and its morphogenesis in the ultrathin frozen and araldite sections of cell cultures infected with ADV by protein A-gold labeling. ADV antigens were labeled with 10nm gold probes, and electron-dense gold particles were mainly present on viral nucleocapsids and viral envelopes. Immunogold labeling in the ultracryosections showed a very low degree of interaction with tissue structures. Immunogold labeling in the ultrathin cryosections can be useful tool for the detection of ADV antigens, and the technique also may provide its great potential for immunocytochemical studies on various virus-host cell Interactions.
We propose a new 3 dimensional labeling method based on slice information for the volume data. This method is named SIL (Slice Information based Labeling). Compare to the conventional algorithms, it has advantages that the use of memory is efficient and it Is possible to combine with a variety of 2 dimensional labeling algorithms for finding an appropriate labeling algorithm to its application. In this study, we applied SIL to confocal microscopy images of cervix cancer cell and compared the results of labeling. According to the measurement, we found that the speed of Sd combined with, CCCL (Contour based Connected Component Labeling) is almost 2 times higher than that of other methods. In conclusion, considering that the performance of labeling depends on a kind of image, we obtained that the proposed method provide better result for the confocal microscopy cell volume data.
Clinical and preclinical in vivo immune cell imaging approaches have been used to study immune cell proliferation, apoptosis and interaction at the microscopic (intra-vital imaging) and macroscopic (whole-body imaging) level by use of ex vivo or in vivo labeling method. A series of imaging techniques ranging from non-radiation based techniques such as optical imaging, MRI, and ultrasound to radiation based CT/nuclear imaging can be used for in vivo immune cell tracking. These imaging modalities highlight the intrinsic behavior of different immune cell populations in physiological context. Fluorescent, radioactive or paramagnetic probes can be used in direct labeling protocols to monitor the specific cell population. Reporter genes can also be used for genetic, indirect labeling protocols to track the fate of a given cell subpopulation in vivo. In this review, we summarized several methods dealing with dendritic cell, macrophage, and T lymphocyte specifically labeled for different macroscopic whole-body imaging techniques both for the study of their physiological function and in the context of immunotherapy to exploit imaging-derived information and immune-based treatments.
Cellular uptake of nanoparticles for stem cell labeling and tracking is a critical technique for biomedical therapeutic applications. However, current techniques suffer from low intracellular labeling efficiency and cytotoxic effects, which has led to great interest in the development of a new labeling strategy. Using silica-coated nanoparticles conjugated with rhodamine B isothiocyanate (RITC) (SR), we tested the cellular uptake efficiency, biocompatibility, proliferation or differentiation ability with murine bone marrow derived hematopoietic stem/progenitor cells. The bone marrow hematopoietic cells showed efficient uptake with SR with dose or time dependent manner and also provided a higher uptake on hematopoietic stem/progenitor cells. Biocompatibility tests revealed that the SR had no deleterious effects on cell cytotoxicity, proliferation, or multi-differentiation capacities in vitro and in vivo. SR nanoparticles are advantageous over traditional labeling techniques as they possess a high level of cellular internalization without limiting the biofunctionality of the cells. Therefore, SR provides a useful alternative for gene or drug delivery into hematopoietic stem/progenitor cells for basic research and clinical applications.
This research was conducted to compare differences in colon cancer lymphatic vessel invasion (LVI) with D2-40 antibody labeling and regular HE staining, blood vessel invasion (BVI) with CD34 antibody labeling and HE staining and to assess the possibility of using D2-40-LVI/CD34-BVI in combination for predicting stage II colon cancer prognosis and guiding adjuvant chemotherapy.Anti-D2-40 and anti-CD34 antibodies were applied to tissue samples of 220 cases of stage II colon cancer to label lymphatic vessels and small blood vessels, respectively. LVI and BVI were assessed and multivariate COX regression analysis was performed for associations with colon cancer prognosis. Regular HE staining proved unable to differentiate lymphatic vessels from blood vessels, while D2-40 selectively labeled lymphatic endothelial cell cytosol and CD34 was widely expressed in large and small blood vessels of tumors as well as normal tissues. Compared to regular HE staining, D2-40-labeling for LVI and CD34-labeling for BVI significantly increased positive rate (22.3% vs 10.0% for LVI, and 19.1% vs 9.1% for BVI). Multivariate analysis indicated that TNM stage, pathology tissue type, post-surgery adjuvant chemotherapy, D2-40-LVI, and CD34-BVI were independent factors affecting whole group colon cancer prognosis, while HE staining-BVI, HE staining-LVI were not significantly related. When CD34-BVI/D2-40-LVI were used in combination for detection, the risk of death for patients with two or one positive results was 5.003 times that in the LVI(-)&BVI(-) group (95% CI 2.365 - 9.679). D2-40 antibody LVI labeling and CD34 antibody BVI labeling have higher specificity and accuracy than regular HE staining and can be used as molecular biological indicators for prognosis prediction and guidance of adjuvant chemotherapy for stage II colon cancer.
Lineage tracing is a widely used method for understanding cellular dynamics in multicellular organisms during processes such as development, adult tissue maintenance, injury repair and tumorigenesis. Advances in tracing or tracking methods, from light microscopy-based live cell tracking to fluorescent label-tracing with two-photon microscopy, together with emerging tissue clearing strategies and intravital imaging approaches have enabled scientists to decipher adult stem and progenitor cell properties in various tissues and in a wide variety of biological processes. Although technical advances have enabled time-controlled genetic labeling and simultaneous live imaging, a number of obstacles still need to be overcome. In this review, we aim to provide an in-depth description of the traditional use of lineage tracing as well as current strategies and upcoming new methods of labeling and imaging.
${\alpha}$-Expansins are bound to the cell wall of plants and can be solubilized with an extraction buffer containing 1 M NaCl. Localization of ${\alpha}$-expansins in the cell wall was confirmed by immunogold labeling and electron microscopy. The subcellular localization of vegetative ${\beta}$-expansins has not yet been studied. Using antibodies specific for OsEXPB3, a vegetative ${\beta}$-expansin of rice (Oryza sativa L.), we found that OsEXPB3 is tightly bound to the cell wall and, unlike ${\alpha}$-expansins, cannot be solubilized with extraction buffer containing 1 M NaCl. OsEXPB3 protein could only be extracted with buffer containing SDS. The subcellular localization of the OsEXPB3 protein was confirmed by immunogold labeling and electron microscopy. Gold particles were mainly distributed over the primary cell walls. Immunohistochemistry showed that OsEXPB3 is present in all regions of the coleoptile and root tissues tested.
Kim, Jong-Sik;Awano, Tatsuya;Yoshinaga, Arata;Takabe, Keiji
Journal of the Korean Wood Science and Technology
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v.39
no.5
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pp.420-428
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2011
The distribution of arabino-4-O-methylglucuronoxylans (AGXs) and O-acetyl-galactoglucomannans (GGMs) in warts and the warty layer of tracheids in normal wood (NW) and compression wood (CW) of Cryptomeria japonica was investigated. Under field emission scanning electron microscope (FE-SEM) observation, warts and the warty layer of delignified NW and CW tracheids were degraded by xylanase treatment, indicating that warts and the warty layer contain high amounts of AGXs. However, the effect of xylanase was not observed in NW and CW tracheids before delignification, suggesting that AGXs in warts and the warty layer may be encrusted with lignin. After ${\beta}$-mannanase treatment, no noticeable changes were observed in warts and the warty layer of NW tracheids, indicating that warts and the warty layer contain either no or very few GGMs. Similar results to FE-SEM observations were also observed with immunogold labeling. AGX labeling was observed in warts and the warty layer of NW and CW tracheids, while GGM labeling was not detected. NW tracheids showed a much stronger density of AGX labeling than did CW tracheids in warts and the warty layer, indicating differences in the chemical compositions of warts and the warty layer between NW and CW tracheids.
This study examined the effect of viable bifidobacteria and non-digestible carbohydrates on the cecal pH, colonic neoplastic lesion (aberrant crypt) and proliferating cell nuclear antigen (PCNA) labeling index in carcinogen-treated mts. Animals received s.c. injection of dimethylhydrazine (DMH) (15 mg/kg body weight) twice 3 days apart. Three days after the second carcinogen administration, the treatments were begun. 1he treatments were basal diet (AIN-76) with skim milk (Basal/skim), or the following diets with daily gavage of $10^8$ bifidobacteria: basal (Basal/bifido), $2\%$ fructo-oligosaccharide (FOS/bifido), $2\%$ soybean oligosaccharide (SBO/bifido), $2\%$ wheat bran oligosaccharide (WBO/bifido) and $8.4\%$ wheat bran (WB/bifido). After 4 weeks of treatment, cecal pH was measured using a pH probe. The number of aberrant crypt (AC), aberrant crypt foci (ACF) and crypt multiplicity were enumerated and colonic PCNA labeling index was determined using immunohistochemistry. Cecal pH was significantly reduced in SBO/bifido and FOS/bifido groups compared to control group. However, there were no significant differences in either number of AC or rates of cell proliferation as shown by PCNA labeling index among the groups, although mts fed FOS/bifido reduced the numbers of ACF compared to Basal/skim group. The SBO/bifido group did not reduce the number of ACF or PCNA labeling index. Also, other oligosaccharides did not reduce the risk of colon cancer compared to control group. The concomitant reduction of cecal pH and number of ACF suggest that the combination of bifidobacteria and FOS may reduce the risk of colon cancer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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