Campylobacter is a pathogen for both humans and animals that can be transferred from animals to humans. Four isolates, which grew under 5-10% $CO_2$ and had small and translucent colonies, were obtained from swine gastric mucosa and characterized using various methods. These bacteria were gram negative, spirally shaped with round ends. One or two non-sheathed polar flagella were observed under electron microscopy. A PCR with species-specific protein (SSP) primers for 16S rRNA gene in Campylobacter produced a typical 462 bp fragment. The isolates had various biochemical and molecular characteristics which differentiated them from other Campylobacters. The isolates were catalase and oxidase positive, urease (rapid) negative, nitrate reduction positive, indoxyl acetate hydrolysis positive, y-glutamyl transpeptidase negative, and alkaline phosphatase negative. All four isolates showed growth at $37^{\circ}C{\;}and{\;}42^{\circ}C{\;}but{\;}not{\;}at{\;}25^{\circ}C$, were resistant to cephalotin and cefoperazone, and susceptible to carbenicillin. The isolates showed various results in the reduction of chloride to triphenyl tetrazolium (TTC) and a susceptibility to nalidixic acid. Western blot analysis of these isolates with antiserum raised against one isolate showed different patterns from those of reference strains. A dendrogram drawn with the RAPD results showed that these isolates belonged to a new Campylobacter spp. group different from those of C. jejuni, C. doylei, C. lari, and C. coli.
Hyun Dong Hwan;Jung Sun Yeong;Jung Sang Shin;Ha Ki Tae;Kim Cheorl Ho;Kim Dong Wook;Kim June Ki;Choi Dall Yeong
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.17
no.2
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pp.297-307
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2003
In the present study, we investigated the protective effect of the Puerarie Radix water extract (PRE) against CCl₄-induced hepatotoxicity and the mechanism underlying these protective effects in the rats. The pretreatment of PRE has shown to possess a significant protective effect by lowering the serum alanine and aspartate aminoteansferase (AST and ALT) and alkaline phosphatase (ALP). This hepatoprotective action was confirmed by histological observation. In addition, the pretreatment of PRE prevented the elevation of hepatic malondialdehyde (MDA) formation and the depletion of reduced glutathione (GSH) content and catalase activity in the liver of CC1₄-injected rats. The PRE also displayed hydroxide radical scavenging activity in a dose-dependent manner (IC50 = 83.6 μg/ml), as assayed by electron spin resonance (ESR) spin-trapping technique. Moreover, the expression of cytochrome P450 2E1 (CYP2E1) mRNA, as measured by reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR), was significantly decreased in the liver of PRE-pretreated rats when compared with that in the liver of control group. Based on these results, it was suggested that the hepatoprotective effects of the PRE may be related to antioxidant effects and regulation of CYP2E1 gene expression.
The rice CHLH gene encodes the $Mg^{2+}$-chelatase H subunit, which is involved in chlorophyll biosynthesis. Growth of the chlorophyll-deficient oschlh mutant is supported by mitochondrial activity. In this study, we investigated the activity of mitochondrial respiration in the illuminated leaves during oschlh seedling development. Growth of mutant plants was enhanced in the presence of 3% sucrose, which may be used by mitochondria to meet cellular energy requirements. ATP content in these mutants was, however, significantly lowered in light conditions. Low cytosolic levels of NADH in illuminated oschlh mutant leaves further indicated the inhibition of mitochondrial metabolism. This down-regulation was particularly evident for oxidative stressresponsive genes in the mutant under light conditions. Hydrogen peroxide levels were higher in oschlh mutant leaves than in wild-type leaves; this increase was largely caused by the impairment of the expression of the antioxidant genes, such as OsAPXl, OsRACl, and OsAOXc in knockout plants. Moreover, treatment of mesophyll protoplasts with ascorbic acid or catalase recovered ATP content in the mutants. Taken together, these results suggest that the light-mediated inhibition of mitochondrial activity leads to stunted growth of CHLH rice seedlings.
A study aimed at identifying putative drought responsive genes that confer tolerance to water stress deficit in tea plants was conducted in a 'rain-out shelter' using potted plants. Eighteen months old drought tolerant and susceptible tea cultivars were each separately exposed to water stress or control conditions of 18 or 34% soil moisture content, respectively, for three months. After the treatment period, leaves were harvested from each treatment for isolation of RNA and cDNA synthesis. The cDNA libraries were sequenced on Roche 454 high-throughput pyrosequencing platform to produce 232,853 reads. After quality control, the reads were assembled into 460 long transcripts (contigs). The annotated contigs showed similarity with proteins in the Arabidopsis thaliana proteome. Heat shock proteins (HSP70), superoxide dismutase (SOD), catalase (cat), peroxidase (PoX), calmodulinelike protein (Cam7) and galactinol synthase (Gols4) droughtrelated genes were shown to be regulated differently in tea plants exposed to water stress. HSP70 and SOD were highly expressed in the drought tolerant cultivar relative to the susceptible cultivar under drought conditions. The genes and pathways identified suggest efficient regulation leading to active adaptation as a basal defense response against water stress deficit by tea. The knowledge generated can be further utilized to better understand molecular mechanisms underlying stress tolerance in tea.
The liver is an essential organ for the detoxification of exogenous xenobiotics, drugs and toxic substances. The incidence rate of non-alcoholic liver injury increases due to dietary habit change and drug use increase. Our previous study demonstrated that Ecklonia stolonifera (ES) formulation has hepatoprotective effect against alcohol-induced liver injury in rat and tacrine-induced hepatotoxicity in HepG2 cells. This present study was designated to elucidate hepatoprotective effects of ES formulation against carbon tetrachloride ($CCl_4$)-induced liver injury in Sprague Dawley rat. Sixty rats were randomly divided into six groups. The rats were treated orally with ES formulation and silymarin (served as positive control, only 100 mg/kg/day) at a dose of 50, 100, or 200 mg/kg/day for 21 days. Seven days after treatment, liver injury was induced by intraperitoneal injection of $CCl_4$ (1.5 ml/kg, twice a week for 14 days). The administration of $CCl_4$ exhibited significant elevation of hepatic enzymes (like AST and ALT), and decrease of antioxidant related enzymes (superoxide dismutase, glutathione peroxidase and catalase) and glutathione. Then, it leaded to DNA damages (8-oxo-2'-deoxyguanosine) and lipid peroxidation (malondialdehyde). Administration of ES formulation inhibited imbalance of above factors compared to $CCl_4$ induced rat in a dose dependent manner. Real time PCR analysis indicates that CYP2E1 was upregulated in $CCl_4$ induced rat. However, increased gene expression was compromised by ES formulation treatment. These findings suggests that ES formulation could protect hepatotoxicity caused by $CCl_4$ via two pathways: elevation of antioxidant enzymes and normalization of CYP2E1 enzyme.
Park, Mi-Seon;Shin, Hyun-Suk;Choi, Cheol-Young;Kim, Na-Na;Park, Dae-Won;Kil, Gyung-Suk;Lee, Je-Hee
Animal cells and systems
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v.15
no.3
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pp.219-225
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2011
We studied oxidative stress in cinnamon clownfish exposed to hypoosmotic (35 psu ${\rightarrow}$ 17.5 psu and 17.5 psu with prolactin (PRL)) and low temperature ($28^{\circ}C{\rightarrow}24^{\circ}C$ and $20^{\circ}C$) conditions by measuring the expression and activity of Cu/Zn-superoxide dismutase (Cu/Zn-SOD), catalase (CAT), and glutathione peroxidase (GPX). The expression and activity of the antioxidant enzymes were significantly higher after the fish were exposed to $24^{\circ}C$, $20^{\circ}C$, and 17.5 psu, and expression was repressed by PRL treatment. Furthermore, we measured $H_2O_2$ and lipid peroxidation levels and found that they were significantly higher after exposure to the hypoosmotic and low-temperature environments. Additionally, we investigated changes in plasma AST and ALT levels after exposure to low temperature and hypoosmotic stress. These levels increased upon exposure of the clownfish to $24^{\circ}C$, $20^{\circ}C$, and 17.5 psu, but the levels of these parameters decreased in the 17.5 psu with PRL treatment during a salinity change. The results indicate that hypoosmotic and low-temperature conditions induce oxidative stress in cinnamon clownfish and that the parameters tested in this study may be indices of oxidative stress in the cinnamon clownfish.
The objective of this study was to identify the coccoidal bacteria present in 188 samples of fermented yaks’, mares’ and cows’ milk products collected from 12 different regions in Mongolia. Furthermore, we evaluated the fermentation properties of ten selected isolates of the predominant species, Streptococcus (S.) thermophiles, during the process of milk fermentation and subsequent storage of the resulting yoghurt at 4℃. Overall, 159 isolates were obtained from 188 samples using M17 agar. These isolates were presumed to be lactic acid bacteria based on their gram-positive and catalase-negative properties, and were identified to species level using 16S rRNA gene sequence analysis. These coccoid isolates were distributed in four genera and six species: Enterococcus (E.) durans, Enterococcus (E.) faecalis, Lactococcus (Lac.) subsp. lactis, Leuconostoc (Leuc.) lactis, Leuconostoc (Leuc.) mesenteroides. subsp. mesenteroides and S. thermophilus. Among these S. thermophilus was the most common species in most samples. From evaluation of the fermentation characteristics (viable counts, pH, titratable acidity [TA]) of ten selected S. thermophilus isolates we could identify four isolates (IMAU 20246, IMAU20764, IMAU20729 and IMAU20738) that were fast acid producers. IMAU20246 produced the highest concentrations of lactic acid and formic acid. These isolates have potential as starter cultures for yoghurt production.
Background: Continuous exposure to high temperatures can lead to heat stress. This stress response alters the expression of multiple genes and can contribute to the onset of various diseases. In particular, heat stress induces oxidative stress by increasing the production of reactive oxygen species. The liver is an essential organ that plays a variety of roles, such as detoxification and protein synthesis. Therefore, it is important to protect the liver from oxidative stress caused by heat stress. Korean ginseng has a variety of beneficial biological properties, and our previous studies showed that it provides an effective defense against heat stress. Methods: We investigated the ability of Korean Red Ginseng and Korean black ginseng extracts (JP5 and BG1) to protect against heat stress using a rat model. We then confirmed the active ingredients and mechanism of action using a cell-based model. Results: Heat stress significantly increased gene and protein expression of oxidative stress-related factors such as catalase and SOD2, but treatment with JP5 (Korean Red Ginseng extract) and BG1 (Korean black ginseng extract) abolished this response in both liver tissue and HepG2 cells. In addition, JP5 and BG1 inhibited the expression of inflammatory proteins such as p-NF-κB and tumor necrosis factor alpha-α. In particular, JP5 and BG1 decreased the expression of components of the NLRP3 inflammasome, a key inflammatory signaling factor. Thus, JP5 and BG1 inhibited both oxidative stress and inflammation. Conclusions: JP5 and BG1 protect against oxidative stress and inflammation induced by heat stress and help maintain liver function by preventing liver damage.
Chang, So Youn;Yoon, Joon Sik;Park, Yong Ha;Yang, Song Suk;Yoon, Seong Myeong;Lee, In Hwa;Kim, Si Wouk
Journal of Microbiology
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v.35
no.3
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pp.165-171
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1997
A sulfer-oxidizing bacterium was isolated from mine wastewater and characterized. The isolate was gra-negative, rod (0.2 * 1.2-1.5.mu.m), nonmotiloe, catalase positive, and oxidase prositive. The opotimal pH and temperature for growth were 7.0 and 30.deg.C. respectively. The optimum thiosulfate concentration was 70 mM and the maximum growth rate was 0.081 hr. The major ubiquinone contained in the isolate was Q-8. The cellular fatty acid composition was $C_{16 : 0}$, $C_{18 : 1}$, $C_{17cyc}$,and $C_{19cyc}$ as nonpolar fatty acids, and 3-OH C10 : 0 and 3-OH $C_{12 : 0}$ as hydroxylated fatty acids. The isolate was a facultative chemolithoautotroph which can grow autotrophically on sodium thiosulfate and sodium sulfide and which can grow heterotrophically on yeast extract. It can also grow mixotrophically on sodium thiosulfate and yeast extract. Comparison of the 16S rRNA gene sequence of the isolate with that of Thiobacillus species and Paracoccus thiocyanatus revealed that it is closely related to T. caldus which belongs to the .betha.-subclass of the class Proteobacteria. However, the isolated could not grow at extremely low pH (pH 1-3.5). On the basis of the phenotypic, chemotaxonomic and phylogenetic data, the isolate was tentatively named Thiobacillus sp. strain C.ain C.
Kim, Il-Sup;Shin, Sun-Young;Kim, Young-Saeng;Kim, Hyun-Young;Yoon, Ho-Sung
Molecules and Cells
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v.28
no.5
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pp.479-487
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2009
Glutathione reductase (GR) is an enzyme that recycles a key cellular antioxidant molecule glutathione (GSH) from its oxidized form (GSSG) thus maintaining cellular redox homeostasis. A recombinant plasmid to overexpress a GR of Brassica rapa subsp. pekinensis (BrGR) in E. coli BL21 (DE3) was constructed using an expression vector pKM260. Expression of the introduced gene was confirmed by semi-quantitative RT-PCR, immunoblotting and enzyme assays. Purification of the BrGR protein was performed by IMAC method and indicated that the BrGR was a dimmer. The BrGR required NADPH as a cofactor and specific activity was approximately 458 U. The BrGR-expressing E. coli cells showed increased GR activity and tolerance to $H_2O_2$, menadione, and heavy metal ($CdCl_2$, $ZnCl_2$ and $AlCl_2$)-mediated growth inhibition. The ectopic expression of BrGR provoked the co-regulation of a variety of antioxidant enzymes including catalase, superoxide dismutase, glutathione peroxidase, and glucose-6-phosphate dehydrogenase. Consequently, the transformed cells showed decreased hydroperoxide levels when exposed to stressful conditions. A proteomic analysis demonstrated the higher level of induction of proteins involved in glycolysis, detoxification/oxidative stress response, protein folding, transport/binding proteins, cell envelope/porins, and protein translation and modification when exposed to $H_2O_2$ stress. Taken together, these results indicate that the plant GR protein is functional in a cooperative way in the E. coli system to protect cells against oxidative stress.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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