This study examined the viability of canine oocytes following storage at 4 or 38$^{\circ}C$ for 5 h. Cumulus intact oocytes were collected from domestic dog following ovariohysterectomy at local veterinary clinics. In Exp I, the oocytes that collected from ovary transport different temperatures (4 or 38$^{\circ}C$) for 5 h, were cultured for (24 or 48 h). Survivability of oocytes judged by morphological appearance and PI (propidium iodide) staining. The survival rates at 4$^{\circ}C$ ovary transport group showed significantly lower than control group (0%; 0/129 vs. 72.9%; 129/177) 48 h after culture (P<0.05). In Exp II, to assess nuclear maturation of control group oocytes (ovary transported at 38$^{\circ}C$) after in vitro cultured for 24, 48 or 96 h. After 24 h and 48 h of culture, the metaphase I to metaphase II stages (MI to MII) was 8.3% (6/72) and 8.9% (9/101), and which was not increased at 96h (9.5%; 8/84). These results show that canine oocytes remarkably sensitive to low temperature and the percentage of oocytes reaching MI to MII did not increase 96 h after culture.
The present study investigated the effects of follicle stimulating hormone (FSH) and human chorionic gona-dotrophin (hCG) on the nuclear maturation of canine oocytes. Oocytes were recovered from mongrel female ovaries in various reproductive states; follicular, luteal or anestrous stage. Oocytes were cultured in sserum-free tissue culture medium (TCM)-199 supplemented with various concentrations of FSH (Exp. 1: 0, 0.5, 1.0 or 10 IU) or hCG (Exp.2:0, 0.5, 1.0 or 10 IU) or both (Exp. 3:1 IU FSH +1 IU hCG) for 72 hr to determine the effective concentration of these hormones, and to examine their combined effect. After maturation culture, oocytes were denuded in PBS containing 0.1% (w/v) hyaluronidase by gentle pipetting. The denuded oocytes were stained with $1.9\;{\mu}M$. Hoechst 33342 in glycerol and the nuclear state of oocytes was evaluated under UV light. More (p<0.05) oocytes matured to MII stage when follicular stage oocytes were supplemented with 1 IU FSH (6.2%) compared with the control, 0.1 or 10.0 IU FSH (0 to 1.2%). Significantly higher (p<0.05) maturation rate to MII stage was observed in follicular stage oocytes supplemented with 1.0 IU hCG (7.2%) compared with the control or other hCG supplemented groups (0 to 1.5%). However, the combination of FSH and hCG did not improve the nuclear maturation rate of canine oocyte (2.4 %) compared with FSH (6.2%) and hCG alone (7.2%). In conclusion, FSH or hCG alone significantly increased the maturation of canine oocytes to MII stage.
The growing oocytes become progressively capable of resuming meiosis, and full meiotic competence appear when they are about 80% of the size of fully grown oocytes. As hormonal influences vary at different stages of reproductive cycle, the size of oocytes may vary according to the reproductive stages. The present study was designed to compare the diameter between the ovulated and freshly collected immature canine oocytes. The ovulated oocytes were collected 72 hr after ovulation by oviductal tube flushing by laparotomy under general anesthesia. Immature oocytes were collected by ovarian slicing method. Diameter of all oocytes was measured directly using epiflurescence microscope with a calibrated micro-eyepiece micrometer at ${\times}200$ magnification. The thickness of zona pellucida and diameter of cytoplasm were measured separately and recorded. A total of 2209 zona intact oocytes were collected, among them 628 from anestrus, 675 from follicular, 838 from luteal and 68 by fallopian tubes flushing methods. The average number of oocytes was 104.7, 168.8, 119.7 and 11.3 for anestrus, follicular, luteal and fallopian tubes flushing methods, respectively. The average diameters of the ooplasm and oocyte were significantly varied in different reproductive stages as well as with ovulated oocytes (P<0.05). The average diameter of ooplasm and oocyte was 115.6 and 127.7, 143.0 and 162.0, 134.6 and 150.6, 159.6 and 185.6 for anestrus, follicular, luteal and ovulated oocytes, respectively. Highest number of oocytes with larger diameter could be collected from the follicular and luteal stages. In conclusion, the follicular and luteal ovaries are the best sources of oocytes for canine IVM.
These study was carried out to investigate the effects of the collection time, culture time and activation of canine oocytes on in vitro maturation rates. The activated oocytes were cultured in 10% FCS+TCM-199 media containing hormonal supplements (10 IU/ml HCG, 10 IU/ml PMSG, 10 ug/ml gonadotropin) at 5% $CO_2$, 95% air, $38^{\circ}C$. 1. IVM rate of in vitro cultured cumulus-attached oocytes recovered from ovaries that collected at follicular and luteal stages of the reproductive cycles were 11.4% and 5.7%, respectively. IVM rate of oocytes recovered from ovaries that collected at follicular stages of the reproductive cycles was significantly higher than that of luteal stage (p<0.05). 2. When IVM was carried out at different periods of 40, 48, and 70 hrs, the IVM rates of oocytes matured in vitro were 2.9%, 8.6%, 5.7%, respectively. These results indicate that the IVM time between $48{\sim}70$ hrs gives the highest maturation rate for the oocytes matured at the different stages. 3. IVM rate of oocytes matured in vitro for 10 hrs after single and combined activation treatment by ET, IP and CH and Ca+DMAP, CH+DMAP, ET+CH were $11.5{\pm}1.2%,\;10.8{\pm}1.0%,\;9.6{\pm}1.2%\;and\;12.4{\pm}1.5%,\;11.8{\pm}1.5%,\;11.2{\pm}1.4%$ respectively. This was higher than that in both single and combined stimulated groups compared to control group ($6.2{\sim}7.2%$).
Large quantities of high-quality recipient oocytes with uniform cytoplasm are needed for research in the promising field of somatic cell nuclear transfer (SCNT) and embryonic stem cell research. In canines, however, it is difficult to obtain large quantities of oocytes because each donor produces a limited number of mature oocytes in vivo. Although in vitro maturation (IVM) is considered an alternative approach to oocyte production, this technique is still too rudimentary to be used for the production of highquality, uniform oocytes in large quantities. One technique for overcoming this difficulty is to use oocytes obtained from different species. This technique is known as interspecies SCNT (iSCNT). This review provides an overview of recent advances in canine - porcine interspecies SCNT.
Zona pellucida (ZP), a primarily representative coat of mammalian egg and embryo, has an extremely heterogeneous morphology during different developmental stages. The objective of the present study was to compare the morphological changes of the ZP surface of immature, in vitro and in vivo matured canine oocytes by using scanning electron microscopy (SEM). Canine ovaries were collected from local veterinary hospitals to recover immature oocytes. The ovaries were sliced and the released cumulus oocyte complexes (COCs) were washed with TL-HEPES. The selected COCs were randomly divided into two groups, first group was processed immediately at immature state and the second group was processed 72 h after in vitro maturation, and compared with in vivo derived oocytes. Oocytes were fixed, critical point dried and examined under SEM. The diameters of oocyte and outer holes of the ZP were measured on a total of 249 oocytes; the results were analyzed using One-way ANOVA. Our results showed that, the diameter of immature oocytes significantly differed (p < 0.05) from that of in vivo matured oocytes ($79.60{\pm}0.77{\mu}m$ vs. $101.46{\pm}1.07{\mu}m$, respectively). Similarly, a significant difference (p < 0.05) in the diameters between those of in vitro and in vivo matured oocytes were found ($79.51{\pm}2.36{\mu}m$ vs. $101.46{\pm}1.07{\mu}m$, respectively). Moreover, the diameters of the outer holes of the ZP were significantly (p < 0.05) larger in in vivo matured ($1.48{\pm}0.42{\mu}m$) than in vitro matured for 72 and immature oocytes ($1.10{\pm}0.16$ and $0.43{\pm}0.12{\mu}m$, respectively). Taken together, these data indicates that the ZP surface is related to oocyte maturity in canine.
Proceedings of the Korean Society of Developmental Biology Conference
/
2003.10a
/
pp.123-123
/
2003
This study was conducted to determine the ability of nuclear development of canine oocytes depend on the kind of maturation media and addition of serum sources. Ovaries were collected from a bitches at various stages of estrus cycle by an ovariohysterectomy. Oocytes were collected of cumulus oocytes complexes after slicing of ovaries with blade. The maturation medium was containing 0.6 mM/ml cysteine, 0.2 mM pyruvic acid, 20 ng/ml $E_2$ and 1 $\mu g/ml$ rbST Exp. 1, the oocytes were matured in four different maturation medium as follows: 1) TCM-199, 2) DMEM, 3) NCSU37 and 4) modified-NCSU37 with 10% FBS. Exp. 2: the oocytes were matured in mNCSU37 supplemented with different protein sources (10% FBS, 10% EDS, 0.3% BSA and 0.1% PVA) to select the optimal one. Oocytes were matured in a humidified atmosphere containing 5% $CO_2$ at $39{\circ}C$ for 72 hrs. The maturation rate were analyzed by Duncan's multiple range test using General Linear Models procedure in SAS. The rates of meiotic resumption to MI-MII depend on different culture media were achieved with TCM-199 (5.2%), DMEM (5.0%), NCSU37 (7.2%) and m-NCSU37 (5.9%), respectively. The rates of meiotic resumption to MI-MII according to addition of protein source were 10% FBS (13.3%), 10% EDS (25.0%), 0.3% BSA (25.0%) and 0.1% PVA (15.4%), respectively. In conclusion, the results obtained showed that in vitro maturation media and protein supplement to m-NCSU37 culture medium tested did not promote the final steps of IVM in canine oocytes.
This study was carried out to investigate the in vitro fertilization rate of canine immature oocytes cryopreserved by vitrification freezing. The vitrification solutions of EPS and EDS were consisted of 40% ethylene glycol 18% Ficoll and 0.3M sucrose, and 20% ethylene glycol, 16.5% DMSO and 0.5M sucrose in TCM-199 medium supplemented with 10% FCS, respectively. The oocytes were exposed The developmental rate of in vitro cultured oocytes recovered from ovaries collected at different stages of the reproductive cycle were 3.8%, 10.7%, 46%, respectively. to EFS or EDS at $25^{\circ}C$ and loaded into straw fer 30 sec. The straws was slowly immersed into L$N_2$. Fertilization and survival rate was defined as development rate on in vitro culture or FDA-test. 1. The fertilization rate after vitrification freezing of immature oocytes at 1, 6, 12 and 24 hrs after collection from ovaries was very low(5.3%~31.4%) than the unfrozen oocyte(60.0%). And the fertilization rate after vitrification freezing of immature oocytes was very higher than that of mature oocytes. 2. The survival rate after vitrification freezing of immature oocytes at 1, 6, 12 and 24 hrs after collection from ovaries was 55.0%, 40.0%, 28.6% and 17.1%, respectively. And the survival rate after vitrification freezing of immature oocytes was slightly higher than that of mature oocytes.
Park, Ji-Hoon;Lee, Bong-Koo;Chung, Young-Ho;Rhee, Man-Hee;Kim, S.K.
Reproductive and Developmental Biology
/
v.35
no.4
/
pp.469-473
/
2011
These study was carried out to investigate the effects of the supplementation with sodium nitroprusside (SN) and nitric oxide (NO) of canine oocytes on IVM rates. Oocytes were incubated in TCM-199 supplement with at 0.03~0.10 mM SN and 0.3~1.0 mM NO for 48 hrs. Oocytes were transferred to 50 ul drops of maturation medium covered mineral oil and cultured in a $CO_2$ incubator (5% $CO_2$, 95% air, $38^{\circ}C$). The in vitro maturation rate of oocytes cultured for 48 hrs in TCM-199 medium supplement with 0.03, 0.05, 0.07, 0.10 mM SN were $25.9{\pm}3.5%$, $36.4{\pm}3.2%$, $33.3{\pm}3.5%$, $28.8{\m}3.2%$, respectively. The in vitro maturation rate of oocytes cultured for 48 hrs in TCM-199 medium supplement with 0.03~0.07 mM SN were significantly increased compare to the control ($26.0{\pm}2.2%$). The in vitro maturation rates of oocytes cultured for 48 hrs in TCM-199 medium supplement with 0.3, 0.5, 0.7, 1.0 mM NO were $28.0{\pm}4.2%$, $36.5{\pm}3.6%$, $30.0{\pm}3.8%$, $19.2{\pm}3.5%$, respectively. The in vitro maturation rate of oocytes in TCM-199 medium supplemented with 0.3 and 0.5 mM NO were significantly increased compare to the control ($26.0{\pm}2.2%$). The in vitro maturation rates of oocytes cultured for 12~48 hrs in TCM-199 medium supplement with 0.05 mM SN were $26.0{\pm}3.2%$, $28.0{\pm}3.4%$, $38.0{\pm}3.2%$, respectively. The in vitro maturation rate of oocytes cultured for 12~48 hrs in TCM-199 medium supplement with 0.5 mM NO were $22.0{\pm}3.0%$, $30.0{\pm}3.8%$, $36.0{\pm}4.2%$, respectively. These result was significantly increased compare to the control.
Canine follicular oocytes were used to establish a reliable system for maturation and fertilization in vitro. Ovaries were obtained from either slaughter house or hormone-primed bitches of mixed breeds. The oocytes were recovered by mincing the ovaries in M2+BSA. Good quality of oocyte-cumulus complexes (OCCs) were selected and cultured in TCM 199 containing 15% fetal calf serum(FCS) for 24~56 h in an atmosphere of 5% CO2 at 39$^{\circ}C$. Maturation rate of follicular oocytes was >87% showing metaphase I. Unlike other domestic animals the cumulus expansion did not occur fully in canine OCCs although minimum expansion was found between the cumulus cells and corona radiata cells, the clear nuclear morphology was presented for the first time by rapid staining. The IVM system used in this study may be useful to obtain fully maturated metaphase I oocyte in dog.
본 웹사이트에 게시된 이메일 주소가 전자우편 수집 프로그램이나
그 밖의 기술적 장치를 이용하여 무단으로 수집되는 것을 거부하며,
이를 위반시 정보통신망법에 의해 형사 처벌됨을 유념하시기 바랍니다.
[게시일 2004년 10월 1일]
이용약관
제 1 장 총칙
제 1 조 (목적)
이 이용약관은 KoreaScience 홈페이지(이하 “당 사이트”)에서 제공하는 인터넷 서비스(이하 '서비스')의 가입조건 및 이용에 관한 제반 사항과 기타 필요한 사항을 구체적으로 규정함을 목적으로 합니다.
제 2 조 (용어의 정의)
① "이용자"라 함은 당 사이트에 접속하여 이 약관에 따라 당 사이트가 제공하는 서비스를 받는 회원 및 비회원을
말합니다.
② "회원"이라 함은 서비스를 이용하기 위하여 당 사이트에 개인정보를 제공하여 아이디(ID)와 비밀번호를 부여
받은 자를 말합니다.
③ "회원 아이디(ID)"라 함은 회원의 식별 및 서비스 이용을 위하여 자신이 선정한 문자 및 숫자의 조합을
말합니다.
④ "비밀번호(패스워드)"라 함은 회원이 자신의 비밀보호를 위하여 선정한 문자 및 숫자의 조합을 말합니다.
제 3 조 (이용약관의 효력 및 변경)
① 이 약관은 당 사이트에 게시하거나 기타의 방법으로 회원에게 공지함으로써 효력이 발생합니다.
② 당 사이트는 이 약관을 개정할 경우에 적용일자 및 개정사유를 명시하여 현행 약관과 함께 당 사이트의
초기화면에 그 적용일자 7일 이전부터 적용일자 전일까지 공지합니다. 다만, 회원에게 불리하게 약관내용을
변경하는 경우에는 최소한 30일 이상의 사전 유예기간을 두고 공지합니다. 이 경우 당 사이트는 개정 전
내용과 개정 후 내용을 명확하게 비교하여 이용자가 알기 쉽도록 표시합니다.
제 4 조(약관 외 준칙)
① 이 약관은 당 사이트가 제공하는 서비스에 관한 이용안내와 함께 적용됩니다.
② 이 약관에 명시되지 아니한 사항은 관계법령의 규정이 적용됩니다.
제 2 장 이용계약의 체결
제 5 조 (이용계약의 성립 등)
① 이용계약은 이용고객이 당 사이트가 정한 약관에 「동의합니다」를 선택하고, 당 사이트가 정한
온라인신청양식을 작성하여 서비스 이용을 신청한 후, 당 사이트가 이를 승낙함으로써 성립합니다.
② 제1항의 승낙은 당 사이트가 제공하는 과학기술정보검색, 맞춤정보, 서지정보 등 다른 서비스의 이용승낙을
포함합니다.
제 6 조 (회원가입)
서비스를 이용하고자 하는 고객은 당 사이트에서 정한 회원가입양식에 개인정보를 기재하여 가입을 하여야 합니다.
제 7 조 (개인정보의 보호 및 사용)
당 사이트는 관계법령이 정하는 바에 따라 회원 등록정보를 포함한 회원의 개인정보를 보호하기 위해 노력합니다. 회원 개인정보의 보호 및 사용에 대해서는 관련법령 및 당 사이트의 개인정보 보호정책이 적용됩니다.
제 8 조 (이용 신청의 승낙과 제한)
① 당 사이트는 제6조의 규정에 의한 이용신청고객에 대하여 서비스 이용을 승낙합니다.
② 당 사이트는 아래사항에 해당하는 경우에 대해서 승낙하지 아니 합니다.
- 이용계약 신청서의 내용을 허위로 기재한 경우
- 기타 규정한 제반사항을 위반하며 신청하는 경우
제 9 조 (회원 ID 부여 및 변경 등)
① 당 사이트는 이용고객에 대하여 약관에 정하는 바에 따라 자신이 선정한 회원 ID를 부여합니다.
② 회원 ID는 원칙적으로 변경이 불가하며 부득이한 사유로 인하여 변경 하고자 하는 경우에는 해당 ID를
해지하고 재가입해야 합니다.
③ 기타 회원 개인정보 관리 및 변경 등에 관한 사항은 서비스별 안내에 정하는 바에 의합니다.
제 3 장 계약 당사자의 의무
제 10 조 (KISTI의 의무)
① 당 사이트는 이용고객이 희망한 서비스 제공 개시일에 특별한 사정이 없는 한 서비스를 이용할 수 있도록
하여야 합니다.
② 당 사이트는 개인정보 보호를 위해 보안시스템을 구축하며 개인정보 보호정책을 공시하고 준수합니다.
③ 당 사이트는 회원으로부터 제기되는 의견이나 불만이 정당하다고 객관적으로 인정될 경우에는 적절한 절차를
거쳐 즉시 처리하여야 합니다. 다만, 즉시 처리가 곤란한 경우는 회원에게 그 사유와 처리일정을 통보하여야
합니다.
제 11 조 (회원의 의무)
① 이용자는 회원가입 신청 또는 회원정보 변경 시 실명으로 모든 사항을 사실에 근거하여 작성하여야 하며,
허위 또는 타인의 정보를 등록할 경우 일체의 권리를 주장할 수 없습니다.
② 당 사이트가 관계법령 및 개인정보 보호정책에 의거하여 그 책임을 지는 경우를 제외하고 회원에게 부여된
ID의 비밀번호 관리소홀, 부정사용에 의하여 발생하는 모든 결과에 대한 책임은 회원에게 있습니다.
③ 회원은 당 사이트 및 제 3자의 지적 재산권을 침해해서는 안 됩니다.
제 4 장 서비스의 이용
제 12 조 (서비스 이용 시간)
① 서비스 이용은 당 사이트의 업무상 또는 기술상 특별한 지장이 없는 한 연중무휴, 1일 24시간 운영을
원칙으로 합니다. 단, 당 사이트는 시스템 정기점검, 증설 및 교체를 위해 당 사이트가 정한 날이나 시간에
서비스를 일시 중단할 수 있으며, 예정되어 있는 작업으로 인한 서비스 일시중단은 당 사이트 홈페이지를
통해 사전에 공지합니다.
② 당 사이트는 서비스를 특정범위로 분할하여 각 범위별로 이용가능시간을 별도로 지정할 수 있습니다. 다만
이 경우 그 내용을 공지합니다.
제 13 조 (홈페이지 저작권)
① NDSL에서 제공하는 모든 저작물의 저작권은 원저작자에게 있으며, KISTI는 복제/배포/전송권을 확보하고
있습니다.
② NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 상업적 및 기타 영리목적으로 복제/배포/전송할 경우 사전에 KISTI의 허락을
받아야 합니다.
③ NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 보도, 비평, 교육, 연구 등을 위하여 정당한 범위 안에서 공정한 관행에
합치되게 인용할 수 있습니다.
④ NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 무단 복제, 전송, 배포 기타 저작권법에 위반되는 방법으로 이용할 경우
저작권법 제136조에 따라 5년 이하의 징역 또는 5천만 원 이하의 벌금에 처해질 수 있습니다.
제 14 조 (유료서비스)
① 당 사이트 및 협력기관이 정한 유료서비스(원문복사 등)는 별도로 정해진 바에 따르며, 변경사항은 시행 전에
당 사이트 홈페이지를 통하여 회원에게 공지합니다.
② 유료서비스를 이용하려는 회원은 정해진 요금체계에 따라 요금을 납부해야 합니다.
제 5 장 계약 해지 및 이용 제한
제 15 조 (계약 해지)
회원이 이용계약을 해지하고자 하는 때에는 [가입해지] 메뉴를 이용해 직접 해지해야 합니다.
제 16 조 (서비스 이용제한)
① 당 사이트는 회원이 서비스 이용내용에 있어서 본 약관 제 11조 내용을 위반하거나, 다음 각 호에 해당하는
경우 서비스 이용을 제한할 수 있습니다.
- 2년 이상 서비스를 이용한 적이 없는 경우
- 기타 정상적인 서비스 운영에 방해가 될 경우
② 상기 이용제한 규정에 따라 서비스를 이용하는 회원에게 서비스 이용에 대하여 별도 공지 없이 서비스 이용의
일시정지, 이용계약 해지 할 수 있습니다.
제 17 조 (전자우편주소 수집 금지)
회원은 전자우편주소 추출기 등을 이용하여 전자우편주소를 수집 또는 제3자에게 제공할 수 없습니다.
제 6 장 손해배상 및 기타사항
제 18 조 (손해배상)
당 사이트는 무료로 제공되는 서비스와 관련하여 회원에게 어떠한 손해가 발생하더라도 당 사이트가 고의 또는 과실로 인한 손해발생을 제외하고는 이에 대하여 책임을 부담하지 아니합니다.
제 19 조 (관할 법원)
서비스 이용으로 발생한 분쟁에 대해 소송이 제기되는 경우 민사 소송법상의 관할 법원에 제기합니다.
[부 칙]
1. (시행일) 이 약관은 2016년 9월 5일부터 적용되며, 종전 약관은 본 약관으로 대체되며, 개정된 약관의 적용일 이전 가입자도 개정된 약관의 적용을 받습니다.