Honokiol and magnolol, the major bioactive neolignans of magnolia officinalis, are the most important constituents of the crude drug prescriptions that are used in the therapy of neuroses and various nervous disorders. There have been limited reports on the effects of neolignoid compounds on human cytochrome P450 activity. Therefore, the inhibitory effects of honokiol and magnolol on seven human cytochrome P450 s were evaluated in human liver microsomes. Honokiol and magnolol showed the most potent inhibition of CYP1A2-mediated phenacetin O-deethylase activity ($IC_{50}$ values of 3.5 and 5.4 mM, respectively) among the seven P450s tested. These in vitro data indicate that neolignan compounds can inhibit the activity of CYP1A2 and suggest that these compounds should be examined for potential pharmacokinetic drug interactions in vivo.
Deep sea water was tested for cancer chemopreventive activity by measuring the activities of ${\beta}-$ naphthoflavone $({\beta}-NF)-induced$ cytochrome P 450 1A2 (CYP 1A2), quinone reductase (QR) and glutathione-S-transferase (GST), glutathione (GSH) levels, and ornithine decarboxylase (ODC) activity. The in vitro incubation of rat liver microsome with deep sea water (a hardness range of $100{\sim}1,000$) showed a hardness-dependent inhibition of CYP 1A2 activity. QR and GST activities were induced about $1.1{\sim}1.2$ fold with the treatment of deep sea water in murine hepatoma Hepa 1clc7 cells. In addition GSH levels were increased $1.3{\sim}1.4$ fold in a hardness range of $100{\sim}1,000$. The deep sea water showed 20.3 and 35.0% inhibition of 12-O- tetradecanoylphorbol-13-a-cetate (TPA)-induced ODC activity at hardness 800 and 1,000, respectively. Therefore, deep sea water is worth further investigation with respect to cancer chemoprevention or therapy.
The purpose of this study was to investigate the effect of ticlopidine on the pharmacokinetics of diltiazem and its active metabolite, desacetyldiltiazem, in rats. Pharmacokinetic parameters of diltiazem and desacetyldiltiazem were determined in rats after oral administration of diltiazem (15 $mg{\cdot}kg^{-1}$) with ticlopidine (3 or 9 $mg{\cdot}kg^{-1}$). The effects of ticlopidine on P-glycoprotein (P-gp) and cytochrome P450 (CYP) 3A4 activities were also evaluated. Ticlopidine inhibited CYP3A4 enzyme activity in a concentrationdependent manner with a 50% inhibition concentration ($IC_{50}$) of 35 ${\mu}M$. In addition, ticlopidine did not significantly enhance the cellular accumulation of rhodamine-123 in NCI/ADR-RES cells overexpressing P-gp. Compared with the control (given diltiazem alone), ticlopidine significantly altered the pharmacokinetic parameters of diltiazem. The peak concentration ($C_{max}$) and the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of diltiazem were significantly (9 $mg{\cdot}kg^{-1}$, p<0.05) increased in the presence of ticlopidine. The AUC of diltiazem was increased by 1.44-fold in rats in the presence of ticlopidine (9 $mg{\cdot}kg^{-1}$). Consequently, the absolute bioavailability (A.B.) of diltiazem in the presence of ticlopidine (9.3-11.5%) was signifi cantly higher (9 $mg{\cdot}kg^{-1}$, p<0.05) than that in the control group (8.0%). Although ticlopidine significantly (p<0.05) increased the AUC of desacetyldiltiazem, the metabolite-parent AUC ratio (M.R.) in the presence of ticlopidine (9 $mg{\cdot}kg^{-1}$) was significantly decreased compared to that in the control group, implying that ticlopidine could effectively inhibit the metabolism of diltiazem. In conclusion, the concomitant use of ticlopidine significantly enhanced the oral bioavailability of diltiazem in rats by inhibiting CYP3A4-mediated metabolism in the intestine and/or liver rather than by inhibiting intestinal P-gp activity or renal elimination of diltiazem.
Dithiocarbamate and mixed disulfide containing allyl functions were designed and synthesized as putative chemopreventive agents, i.e. N,N-diallyldithiocarbamate (DATC) and S-(N,N-diallyldithiocarbamoyl)-N-acetylcysteine (AC-DATC). DATC and AC-DATC were administered and the activities of cytosolic glutathione S-transferase (GST), glutathione reductase (GR) and microsomal N-nitrosodiethylamine (NDEA) deethylase were assayed in order to test the effects of these organosulfur com-pounds on the detoxification and metabolic activation system of NDEA. The amounts of hepatic glutathione (GSH and GSSG) was also determined. The administration of DATC to rats led to an increase in the activity of GR and to an inhibition of CYP2E1-mediated NDEA deethylation. AC-DATC induced the activity of GR and GST, increased the hepatic GSH content and inhibited the rate of NDEA deethylation. The level of GSSG was decreased as a consequence of the increased activity of GR. These effects may contribute to possible antimutagenic and anticarcinogenic action of the dithiocarbamates investigated.
Plant extracts produced from branches of Crataegus pinnatifida and barks of Crataegus pinnatifida inhibited ethanol-induced cytotoxicity and DNA damage in liver cells. Furthermore, these two extracts inhibited the expression and activities of CYP2E1 enzyme. Cinnamomum cassia had a better effect on inhibition of DNA damage than Crataegus pinnatifida, as well as showed a high tendency to inhibit CYP2E1 expression and catalytic activities. It is considered that extracts produced from Crataegus pinnatifida or Cinnamomum cassia have an effect to reduce ethanol-induced cytotoxicity and DNA damage in liver cells. Therefore, we suggest to use Crataegus pinnatifida and Cinnamomum cassia and their ingredients as potential candidate substances to prevent and treat ethanol-induced cytotoxicity and genotoxicity in liver cells.
The aim of this study was to investigate the effect of atrovasatatin on the pharmacokinetics of nicardipine after oral and intravenous administration of nicardipine to rats. Nicardipine was administered orally (12 mg/kg) or intravenously (i.v., 4 mg/kg) without or with oral administration of atrovasatatin (0.3 or 1.0 mg/kg) to rats. The effect of atorvastatin on the P-glycoprotein (P-gp) as well as CYP3A4 activity was also evaluated. Atorvastatin inhibited CYP3A4 enzyme activity in a concentration-dependent manner with 50% inhibition concentration ($IC_{50}$) of 48 ${\mu}M$. Compared to the controls (nicardipine alone), the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of nicardipine was significantly (1.0 mg/kg, p<0.05) greater by 16.8-45.4%, and the peak plasma concentration ($C_{max}$) was significantly (1.0 mg/kg, p<0.05) higher by 28.0% after oral administration of nicardipine with atorvastatin, respectively. Consequently, the relative bioavailability (R.B.) of nicardipine was increased by 1.17- to 1.45-fold and the absolute bioavailability (A.B.) of nicardipine with atrovasatatin was significantly greater by 16.7-20.9% compared to that of the controls (14.3%). Compared to the i.v. control, atrovasatatin did not significantly change pharmacokinetic parameters of i.v. administration nicardipine. The enhanced oral bioavailability of nicardipine by atorvastatin suggests that CYP3A subfamily-mediated metabolism were inhibited in the intestine and/or in the liver rather than P-gp-mediated efflux of nicardipine. Based on these results, modification of nicardipine of dosage regimen is required in the patients. Human studies are required to prove the above hypothesis.
Kim, Seon-Hwa;Kim, Kyu-Bong;Um, So-Young;Oh, Yun-Nim;Chung, Myeon-Woo;Oh, Hye-Young;Choi, Ki-Hwan
Biomolecules & Therapeutics
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v.17
no.3
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pp.299-304
/
2009
Rosiglitazone maleate (RGM) is widely used for improving insulin resistance. RGM is a moderate inhibitor of cytochrome P450 2C8 (CYP2C8) and is also mainly metabolized by CYP2C8. The aim of this study was to determine whether the effect of RGM on CYP2C8 is altered by co-treatment with other drugs, and whether amlodipine camsylate (AC) changes the pharmacokinetics (PK) of RGM. Of the 11 drugs that are likely to be co-administered with RGM in diabetic patients, seven drugs lowered the $IC_{50}$ value of RGM on CYP2C8 by more than 80%. In vitro CYP2C8 inhibitory assays of RGM in combination with drugs of interest showed that the $IC_{50}$ of RGM was decreased by 98.9% by AC. In a pharmacokinetic study, Sprague-Dawley (SD) rats were orally administered 1 mg/kg of RGM following by single or 10-consecutive daily administrations of 1.5 mg/kg/day of AC. No significant changes in the pharmacokinetic parameters of RGM were observed after a single administration of AC, but the AUC and $C_{max}$ values of RGM were significantly reduced by 36% and 31%, respectively, by multiple administrations of AC. In conclusion, RGM was found to be affected by AC by in vitro CYP2C8 inhibition testing, and multiple dosing of AC appreciably changed the pharmacokinetics of RGM. These findings suggest that a drug interaction exists between AC and RGM.
The purpose of this study was to investigate the effect of ticlopidine on the pharmacokinetics of nimodipine in rats. Pharmacokinetic parameters of nimodipine were determined in rats after oral administration of nimodipine (16 mg/kg) with or without ticlopidine (3 or 10 mg/kg). Ticlopidine inhibited cytochrome P450 (CYP)3A4 activity. Ticlopidine significantly (p<0.05, 10 mg/kg) increased the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of nimodipine and ticlopidine significantly (p<0.05, 10 mg/kg) prolonged the terminal half-life ($t_{1/2}$) of nimodipine. Ticlopidine significantly (p<0.05, 10 mg/kg) decreased the total body clearance ($CL_t$). The absolute bioavailability (AB%) and relative bioavailability (RB%) of nimodipine by presence of ticlopidine were increased by 14% and by 42%, respectively, compared to the control. Based on these results, the increased bioavailability of nimodipine might be due to inhibition of the metabolizing enzyme cytochrome P450 (CYP)3A4 in the liver or intestinal mucosa and/or reducing total body clearance by ticlopidine.
Effects of tributyltin chloride (TBTC) in vitro on mixed function oxygenase (MFO) system on liver microsome of eight marine fish species were investigated. To determine the effects on MFO system, cytochrome P45O (CYP) and cytochrome b5 con-tents, activities of two reductases (NADH-cytochrome b5 reductase and NADPH-cy-tochrome P450 reductase) and four dealkylation enzymes (EROD, PROD, MROD and ECOD) were measured in fish microsoms exposed to TBTC for 20 min. The WP content was reduced to 10% of the control group in 6 out of 8 species exposed to TBTC, whereas there was no significant change in the cytochrome bs content. the response of NAD(P)H dependant reductases depended on fish species. The dealkylation enzyme activities in microsome were also apparently inhibited by TBTC. The degree of inhibition was different among fish species and four enzymes. The EROD activities in eight species were decreased to the range of 1∼65% of control group.
Scenedesmus spp. were cultured for 51 days in newly developed medium, KEP I (Kim and Ecopeace: initials of corresponding author and environmental company) made with Bacterio-Mineral-Water (3%, v/v) that had been bio-reacted with swine urine medium to 10% (v/v) Bold's Basal medium, and investigated for cancer chemopreventive potential by measuring the induction of quinone reductase (QR), glutathione S-transferase (GST), and reduced glutathione (GSH), and inhibition of cytochrome P450 (CYP) 1A1 activity. The activitives of QR and GST of Scenedesmus spp. cultured in KEP I medium were increased by 3.0-fold and 1.5-fold, respectively. However, Scenedesmus spp. cultured in control medium (CT) increased the activitives of QR and GST by 1.8-fold and 1.3-fold, respectively. Scenedesmus spp. in KEP I medium strongly inhibited CYP 1Al activity. These results show that Scenedesmus spp. in KEP I medium has cancer chemopreventive potential and may be a candidate for further development as a chemopreventive agent.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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