Wang, Pi-Chao;Hisamune Kato;Takehiro Inoue;Masatoshi Matsumura;Noriyuki Ishii;Yoshinobu Murakami;Tsukasa Seya
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.7
no.2
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pp.67-75
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2002
The human complement receptor type 1 (CR 1, C3 b/C4b receptor) is a polymorphic membrane glycoprotein expressed on human erythrocytes, peripheral leukocytes, plasma and renal glomerular podocytes, which consists of transmembrane and cytoplasmic domains with 30 repeating homologous protein domains known as short consensus repeats (SCR). CR1 has been used as an inhibitor for inflammatory and immune system for the past several years. Recently; it is reported that CRl was found to suppress the hyper-acute rejection in xeno-transplantation and can be used to cure autoimmune diseases. A soluble form of CRl, called sCRl, is a recombinant CRl by cleaving the transmembrane domain at C-terminus and has been expressed in Chinese Hamster Ovary (CHO) cells. Several purification methods for sCR1 from CHO cells have been reported, but most of them require complicated steps at high cost. Moreover, such methods are mostly performed under the pH condition apt to denaturing sCR1 and causes sCRl losing its activity. We here report a rapid and efficient method to purify sCR1 from CHO cell. The new method consists of a two-stage of cell culture by cultivating cells in serum medium followed by serum-free medium, and a two-stage of column purification by means of heparin and gel filtration column chromatography. By using this novel method, sCR1 can be purified in a simple and effective way with high yield and purity, furthermore, the purified sCR1 was confirmed to retain its activity to suppress the complement activation in vivo and ex vivo.
Viral safety is an important prerequisite for clinical preparations of mammalian cell culture-derived biopharmaceuticals, because numerous adventitious viruses have been contaminated during the manufacturing process. In particular, Chinese hamster ovary (CHO) cells are highly susceptible to several RNA viruses including reovirus (Reo), bovine viral diarrhea virus (BVDV), and bovine parainfluenza virus (BPIV) and there have been reports of such viral contaminations. Therefore, viral detection during the CHO cell process is necessary to ensure the safety of biopharmaceuticals against viruses. In this study, a multiplex reverse transcription (RT)-PCR assay was developed and subsequently evaluated for its effectiveness as a means to simultaneously detect Reo, BVDV, and BPIV during the manufacture of cell culture-derived biopharmaceuticals. Specific primers for Reo, BVDV, and BPIV were selected, and a multiplex RT-PCR was optimized. The sensitivity of the assay for simultaneous amplification of all viral target RNAs was $7.76{\times}10^2\;TCID_{50}/ml$ for Reo, $7.44{\times}10^1\;TCID_{50}/ml$ for BVDV, and $6.75{\times}10^1\;TCID_{50}/ml$ for BPIV. The multiplex RT-PCR was proven to be very specific to Reo, BVDV, and BPIV and was subsequently applied to the validation of CHO cells artificially infected with each virus. It could detect each viral RNA from CHO cells as well as culture supernatants. Therefore, it was concluded that the multiplex RT-PCR assay can be applied to detection of the adventitious viruses during the manufacture of cell culture-derived biopharmaceuticals.
Serotonin receptor binds to serotonin (5-HT) and activates effector proteins such as adenylyl cyclase, phospholipase C, cyclic GMP phosphodiesterase or ion channel through G protein on the cell membrane, resulting in various physiological responses like diuresis, memory and development. To examine the comparative expression of the 5-HT$\_$7/ receptor of Aedes aegypti, the Aedes 5-HT$\_$7/ receptor gene was transfected into Drosophila Schneider2 (S2) cells and mammalian Chinese hamster ovary (CHO)-Kl cells. The expression of the Aedes 5-HT$\_$7/ receptor gene in selected cell lines, Tr-CHO and Tr-S2, was confirmed with reverse transcription-PCR, Western blot and immunocytochemistry. Compared with the induced intracellular cAMP level of Tr-S2 cell line to 5-HT, the induced cAMP in the Tr-CHO cell line was over 9 times higher and was dose-dependent. These results suggest that the functionality of Aedes 5-HT$\_$7/ receptor is much more effective in mammalian CHO-K 1 cells and that the Tr-CHO cell line expressing Aedes 5-HT$\_$7/ receptor can be used for synthetic agonist or antagonist candidate screening.
Human chorionic gonadotropin (hCG) is a heterodimeric glycoprotein hormone consisting of non-covalently linked two subunits, the ${\alpha}$ and ${\beta}$ subunit. It has been used as a infertility drug for ovulation to mimic luteinizing hormone $(LH).^{1)}$ A stable cell line was established by transfection of Rc/CMV-i-dhfr-hCG, expression vector containing hCG ${\alpha}-$ and ${\beta}-genes$, into dihydrofolate reductase-deficient CHO cells and subesquent methotrexate-mediated gene amplification. Anchorage-dependent CHO cells were adapted into a serum-free and/or animal component-free suspension medium through gradual serum weaning for the hCG production. The established cell line showed typical morphological characteristics and growth profile of CHO cells, and could produce FSH with passage-to-passage consistency. The high density perfusion culture of the CHO cells was carried out in Celligen Plus bioreactor equipped with a spin-filter as a internal cell retention device. The cell density reached up to $>1x10^{7}$ cells/ml in less than 7 days and a perfusion-control strategy based on cellular consumption rates of glucose was $established.^{2)}$ Biologically active recombinant hCG was purified by a series of chromatographic steps including anion exchange chromatography and hydrophobic interaction chromatography to homogeneity. The highly purified recombinant hCG was characterized for physicochemical, immunological and biological properties.
CD29 $({\beta}1-integrins)$ is one of major adhesion molecules involved in regulating cell adhesion, migration and morphological changes. In this study, we investigated the regulatory role of CD29 in monocytic functions using monocytic cell line U937 cells. CD29 was found to be one of highly expressed membrane proteins in U937 cells, according to flow cytometric analysis. The activation of CD29 by agonistic antibody MEM101A and extracellular matrix protein (ECM) fibronectin strongly induced cell-cell and cell-fibronectin adhesions. However, blocking antibodies to CD98 and CD147 showed different inhibitory features in these two adhesion events. Furthermore, U0126, an ERK inhibitor, only blocked cell-cell adhesion but not cell-fibronectin adhesion, indicating that cell-cell or cell-fibronectin adhesion events may be regulated by different molecular mechanisms. Meanwhile, CD29 activation also enhanced ROS generation but not phagocytic ability, and similarly radical scavenger N-acetyl-L-cysteine strongly blocked CD29-mediated cell-cell adhesion, implying that ROS may play a critical role in up-regulating cell-cell adhesion. Therefore, our data suggest that the activation of CD29 may be critically involved in regulating monocytic cell-mediated cell-cell adhesion and ROS generation.
Lee, H. G;Lee, P. Y.;Lee, Y. K.;Kim, S. J.;H. K. Chung;M. K. Seo;Park, J. K.;K. S. Min;W. K. Chang
Korean Journal of Animal Reproduction
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v.27
no.4
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pp.299-307
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2003
The effects of additions/deletions in glycosylated residues of recombinant human EPO (rhEPO) produced in CHO-K1 on their secretion were examined. hEPO cDNA was amplified from human liver mRNA and cloned into the pCR2.1 TOPO. Using overlapping-extension site-directed mutagenesis method, glycosylation sites at 24th, 38th, 83rd, and 126th were respectively or accumulatively removed by substituting its asparagine (or serine) with glutamine. To add novel glycosylation sites, 69 and 105th leucine was mutated to asparagine. Mutant and wild type rhEPO constructs were cloned into the pcDNA3 expression vector with CMV promoter and transfected into CHO cell line, CHO-K1, to produce mutant rhEPO mutant rhEPO proteins. Enzyme-linked immunosorbant assay (ELISA) and Western analysis with monoclonal anti-EPO antibody were performed using supernatants of the cultures showing transient and stable expressions respectively. Addition of novel glycosylation reduced rhEPO secretion dramatically while deletion mutants had little effect except some double deletion mutants ($\Delta$24/83 and $\Delta$38/83) and triple mutant ($\Delta$24/38/83). This fact suggests that not single but combination of changes in glycosyl groups affect secretion of rhEPO in cell culture, possibly via changes in their conformations.
We investigated the expression of muscarinic acetylcholine receptors (mAChRs) and their possible involvement in the regulation of cell proliferation in four colon cancer cell lines (SNU-61, SNU-81, SNU-407, and SNU-1033) derived from Korean colon carcinoma patients. A ligand binding assay showed that all four cell lines expressed mAChRs. Treatment of the four cell lines with the cholinergic agonist carbachol led to the activation of extracellular signal-regulated kinases 1 and 2 (ERK1/2). In SNU-407 cells, carbachol significantly stimulated cell proliferation, which could be abolished by the muscarinic antagonist atropine and the ERK1/2 kinase inhibitor PD98059. These results indicate that mAChRs specifically mediate the proliferation of SNU-407 colon cancer cells via the ERK1/2 pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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