Ischemia/reperfusion injury(I/RI) is the major cause of acute renal failure and delayed graft function(DGF) unavoidable in renal transplantation. Enormous studies on ischemia damage playing a role in activating graft rejection factors, such as T cells or macrophages, are being reported. Present study was performed to determine whether ischemia time would play an important role in activating rejection-related factors or not in rat models of I/RI. Male Sprague-Dawley rats were submitted to 30, 45, and 60 minutes of warm renal ischemia with nephrectomy or control animals underwent sham operation(unilateral nephrectomy). Renal function and survival rates were evaluated on day 0, 1, 2, 3, 5 and 7. Immunofluorescence staining of dendritic cells(DCs), natural killer(NK) cells, macrophages, B cells, CD4+ and CD8+ T cells were measured on day 1 and 7 after renal I/RI. Survival rates dropped below 50% after day 3 in 45 minutes ischemia. Histologic analysis of ischemic kidneys revealed a significant loss of tubular architecture and infiltration of inflammatory cells. DCs, NK cells, macrophages, CD4+ and CD8+ T cells were infiltrated from a day after I/RI depending on ischemia time. Antigen presenting cells(DCs, NK cells or macrophages) and even T cells were infiltrated 24 hours post-I/RI, which is at the time of acute tubular necrosis. During the regeneration phase, not only these cells increased but B cells also appeared in more than 45 minutes ischemia. The numbers of the innate and the adaptive immune cells increased depending on ischemia as well as reperfusion time. These changes of infiltrating cells resulting from each I/RI model show that ischemic time plays a role in activating rejection related immune factors and have consequences on progression of renal disease in transplanted and native kidneys.
To study the nature of differentially manifested adaptive response of an organism according to the intensities of the stress, the immune effects of different levels of repeated hypoxia were investigated. Four experimental groups (NH : not -handled, 20% : handled, 15% or 10% : exposed to 15% or 10% $\textrm{O}_2$ 씨오투 with balanced nitrogen, respectively) of mice were exposed to different levels of hypoxia for 60 min/day, 5days/week in a repeated and intermittent manner. After 8 weeks' exposure to hypoxia environment, mice were subjected to immune function measurements, A decreased proportion of CD3+ CD8 phenotype cells in the study of splenocyte subsets was observed in the 10% group. Ovalbumin-stimulated IgG2a production was increased in the 15% group, while no changes were noted in the IgGl and IgM production. No significant changes of the antigen-stimulated splenocyte proliferation and the natural killer cell cytotoxicity were found. These results show that the stress effects on the immune systems can be varied according to the strength of the stress and that a mild level of repeated hypoxic stress can enhance the immune function of mice in this experimental model.
Background: The activated T lymphocyte by inhalaed mycobacterial antigen may evoke cell-mediated immunity in patients with active pulmonary tuberculosis. These activated lymphocyte may influence the response of tuberculin-purified protein derivative (PPD) in skin test. But occasionally, anergy to PPD appear in patients with pulmonary tuberculosis in spite of active stage. Thus we evaluated the effect of change of subtypes of lymphocyte in bronchoalveolar lavage fluid (BAL) and peripheral blood on anergy to PPD in patients with active pulmonary tuberculosis. Method: We performed tuberculin skin test and flow-cytometry analysis of lymphocytes obtained from BAL fluid and peripheral blood in 11 healthy normal volunteers and 20 patients with active pulmonary tuberculosis. Results: 1) The composition of lymphocyte significantly increased in patients with active pulmonary tuberculosis when compared with that in healthy control ($25.2{\pm}4.8$ vs $6.5{\pm}1.3%$, p<0.01), but composition of monocyte significantly decreased ($69.6{\pm}5.7$ vs $89.2{\pm}1.4%$, p<0.05) in analysis of BAL fluid. 2) There were no differences in compositions of cells in BAL fluid between responders and no-responders to PPD. 3) The compositions of CD3 (+), CD4 (+), CD3 (+) IL-2R (+), CD3 (+) HLA-DR (+) significantly increased in BAL fluid when compared with those in peripheral blood in patients with active pulmonary tuberculosis. But the composition of CDS (+), CD4/CDS were not different between BAL fluid and peripheral blood. 4) There were no correlations between response to PPD and compositions of cells and lymphocyte subtypes in BAL fluid and peripheral blood in all patients with tuberculosis, responders, and no-responders, respectively. Conclusion: From these results, we suggest no direct relationship between compositions of inflammatory cells in bronchoalveolar lavage fluid and we could not rule out the possibility of compartmentalization of activated lymphocyte involving in anergy to PPD in skin test in patients with active pulmonary tuberculosis.
Background: Dendritic cells (DCs) are the most potent APCs (antigen-presenting cells) and playa critical role in immune responses. Galectin-3 is a biological lectin with a beta-galactoside binding affinity. Recently, proteomic analysis revealed the presence of galectin-3 in the exosome of mature DCs. However, the expression and function of galectin-3 in DCs remains unclear yet. Methods: We used bone marrow-derived DCs of mouse and showed the expression of galectin-3 in DCs by using flow cytometry analysis and Western blot analysis. Results: Galectin-3 was determined as single band of 35 kDa in Western blot analysis. Flow cytometry analysis showed the major growth factor for DCs, granulocyte-macrophage colony stimulating factor (GM-CSF) and maturing agents, anti-CD40 monoclonal antibody (mAb) and lipopolysaccharide (LPS) consistently increased the intracellular expression of galectin-3 in DCs compared to medium alone. In addition, DCs treated with maturing agents did marginally express galectin-3 on their surface. Conclusion: This study suggests that galectin-3 in DCs may be regulated by critical factors for DC function.
This report shows that hydroxyl radical, generated by a Fenton reaction involving adenosine $5'-diphosphate/Fe^{2+}$ complex ($5-15\;{\mu}M$) and $H_2O_2$ ($2\;{\mu}M$), induced differentiation of HL-60 cells in a dose- and time-dependent manner. This is evidenced by the increases in 12-O-tetradecanoylphorbol 13-acetate- and fMLP-stimulated superoxide production capability. The cells exposed to hydroxyl radical for defined periods (24∼96 hr) continued to differentiate even after the hydroxyl radical generating system had been removed. The differentiated cells displayed fMLP-stimulated calcium mobilization and increased expression of myeloid-specific antigen CD11b and CD14. The extent of the differentiation was markedly reduced by desferrioxamine ($100\;{\mu}M$), dimethylthiourea (5 mM), N,N'-diphenyl-1,4-phenylenediamine ($2\;{\mu}M$), and N-acetyl-L-cysteine (5 mM). The induction of differentiation by hydroxyl radical was enhanced by 3-isobutyl-1-methylxanthine ($200\;{\mu}M$) and Ro-20-1724 ($8\;{\mu}M$), and inhibited by dipyridamole (2 ${\mu}M$). These results suggest that hydroxyl radicals may induce commitment of HL-60 cells to differentiate into more mature cells of myelomonocytic lineage through specific signal-transduction pathway that is modulated by phosphodiesterase inhibitors.
Phosphorylated dextran (P-Dex) is an acidic polysaccharide that functions as an immune adjuvant. P-Dex is known to regulate immune response by maintaining a balance between Th1 and Th2 cells in vitro, and thus may also be important in the control of allergic reactions. In the current study, we report the optimum conditions required for the efficient phosphorylation of dextran without toxicity. We found that when dextran was heated at 160${^{\circ}C}$ for 24 h in phosphate buffer (pH 5.0), the resulting P-Dex demonstrated the highest phosphorus content (6.8%). We also report that P-Dex enhances mitogenic activity in mouse splenocytes and induces expression of CD69 and CD86 on the surface of B cells and dendritic cells (DC) in vitro. Oral administration of P-Dex to ovalubmin (OVA)-immunized mice was found to reduce antigen-induced cell proliferation and suppress the expression of CD86 on Th2-inducing DC via exogenous OVA stimulation. P-Dex was also found to increase IL-10 expression in the splenocytes of treated mice. These findings suggest that oral administration of P-Dex increases immunological tolerance and improves the specificity of immunological response to specific antigens.
Background Macrophages play a major role in wound healing and prevent infection from the outside. Polarization conversion of macrophages regulates aspects of inflammation, and two macrophages, M1 (classically activated) and M2 (alternatively activated), exist at both ends of broad-spectrum macrophage polarization. Thus, we aimed to investigate whether macrophage polarization can be artificially regulated. To this end, MgSO4 and small-interfering RNA (siRNA) targeting magnesium transport 1 (MAGT1) were used to investigate the effects of intracellular magnesium (Mg2+) concentrations on the differentiation of macrophages in vitro. Methods THP-1 derived macrophages maintained in a culture medium containing 5 mM MgSO4 and siRNA to inhibit the expression of MAGT1. As comparative groups, THP-1 derived macrophages polarized into M1 and M2 macrophages by treatment with M1, M2 inducer cytokine. The polarization status of each group of cells was confirmed by cell surface antigen expression and cytokine secretion. Results We found that MgSO4 treatment increased CD163 and CD206, similar to the effect noted in the M2 group. The expression of CD80 and HLA-DR was increased in the group treated with MAGT1 siRNA, similar to the effect noted in the M1 group. Functional assays demonstrated that the group treated with MgSO4 secreted higher levels of IL-10, whereas the MAGT1 siRNA-treated group secreted higher levels of IL-6 cytokines. Additionally, the conditional medium of the Mg2+ treated group showed enhanced migration of keratinocytes and fibroblasts. Conclusion Mg2+ can help to end the delay in wound healing caused by persistent inflammation in the early stages.
Young-Saeng Jang;Sun-Hee Park;Seung-Goo Kang;Jung-Shin Lee;Hyun-Jeong Ko;Pyeung-Hyeun Kim
IMMUNE NETWORK
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v.23
no.5
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pp.37.1-37.11
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2023
Forkhead box P3-positive (Foxp3+)-inducible Tregs (iTregs) are readily generated by TGF-β1 at low TCR signaling intensity. TGF-β1-mediated Foxp3 expression is further enhanced by retinoic acid (RA) and lactoferrin (LF). However, the intensity of TCR signaling required for induction of Foxp3 expression by TGF-β1 in combination with RA and LF is unknown. Here, we found that either RA or LF alone decreased TGF-β1-mediated Foxp3 expression at low TCR signaling intensity. In contrast, at high TCR signaling intensity, the addition of either RA or LF strongly increased TGF-β1-mediated Foxp3 expression. Moreover, decreased CD28 stimulation was more favorable for TGF-β1/LF-mediated Foxp3 expression. Lastly, we found that at high signaling intensities of both TCR and CD28, combined treatment with TGF-β1, RA, and LF induced robust expression of Foxp3, in parallel with powerful suppressive activity against responder T cell proliferation. Our findings that TGFβ/RA/LF strongly generate high affinity Ag-specific iTreg population would be useful for the control of unwanted hypersensitive immune reactions such as various autoimmune diseases.
Background: This study was aimed to differentiate two forms of CTLA-4 (CD152) in activated peripheral blood lymphocyte and clarify the mechanism how cytoplasmic form of this molecule is targeted to cell surface. Methods: For this purpose we generated 2 different anti-human CD152 peptide antibodies and 5 different N'-terminal deletion mutant CTLA4Ig fusion proteins and carried out a series of Western blot and ELISA analyses. Antipeptide antibodies made in this study were anti-CTLA4pB and anti-CTLA4pN. The former recognized a region on extracellular single V-like domain and the latter recognized N'-terminal sequence of leader domain of human CD152. Results: In Western blot, the former antibody recognized recombinant human CTLA4Ig fusion protein as an antigen. And this recognition was completely blocked by preincubating antipeptide antibody with the peptide used for the antibody generation at the peptide concentration of 200 ug/ml. These antibodies were recognized human CD152 as a cytoplasmic sequestered- and a membrane bound- forms in phytohemagglutinin (PHA)-stimulated peripheral blood lymphocyte (PBL). These two forms of CD152 were further differentiated by using anti-CTLA4pN and anti-CTLA4pB antibodies such that former recognized cytosolic form only while latter recognized both cytoplasmic- and membraneforms of this molecule. Furthermore, in a transfection expression study of 5 different N'-terminal deletion mutant CTLA4Ig, mutated proteins were secreted out from transfected cell surface only when more than 6 amino acids from N'-terminal were deleted. Conclusion: Our results implies that cytosolic form of CTLA-4 has leader sequence while membrane form of this molecule does not. And also suggested is that at least N'-terminal 6 amino acid residues of human CTLA-4 are required for regulation of targeting this molecule from cytosolic- to membrane- area of activated human peripheral blood T lymphocyte.
Park, Joung-Su;Kang, Hee;Myung, Eu-Gene;Park, Sung-Min;Shim, Bum-Sang;Kim, Sung-Hun;Choi, Seung-Hoon;Ahn, Kyoo-Seok
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.20
no.3
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pp.548-556
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2006
This study was to evaluate the effect of Samjayangchin-tang (STYCT) on mouse Th1 and Th2 cells' differentiation and ovalbumin (OVA)-induced allergic inflammation. The proliferation of mouse CD4 T cells and the secretion of Th1/Th2 cytokines under the influence of STYCT extract were measured as well as the amount of ${\beta}-hexosaminidase$ in RBL-2H3 cells and the levels of $TNF-{\alpha}$ and IL-6 secretion in Raw264.7 cells. BALB/c mice were orally administered with STYCT extract and simultaneously inoculated with OVA to induce allergic reaction and measure the level of total IgE, OVA-specific IgE and the production of IFN- g, IL-4, IL-5 by the spleen cells. When mouse CD4 T cell were stimulated with anti-CO3 and anti-CD28 for 48 hours in various concentrations of STYCT extract, it decreased proliferation of CD4 cells. CD4 T cells under Th1/Th2 polarizing conditions for 3 days with STYCT resulted in mild decrease of IFN- g in Th1 cells and significant decrease of IL-4 in Th2 cells. STYCT extract had a dose-dependent inhibitory effect on antigen-induced release of ${\beta}-hexosaminidase$ in RBL-2H3 cells. Treatment of STYCT extract on LPS stimulated Raw 264.7 cells showed dose-dependent decrease in IL-6 production. Oral administration of STYCT extract on OVA-induced allergic mice showed an inhibitory effect on the levels of total serum IgE and OVA-specific IgE by 53% and 44%, respectively. Culture of spleen cells with OVA resulted in significant increase of IFN- g by 54% and significant decrease of IL-4 and IL-5 by 42%, and 29%, respectively. The results show that STYCT does not strongly induce mouse T cells to transform into Th1 or Th2 but it has an anti-allergic effect in vitro, and that it also corrects the unbalance between the reactions of Th cells in allergic diseases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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