The formation of inclusion complexes between cyclodextrin(CD) and Congo red was studied by spectrophotometric methods at various temperatures. The cavity sizes are 0.49 nm, 0.62 nm for $\alpha$-and $\beta$-CD, respectively. Therefore, $\alpha$-CD was not found to form an inclusion complex with Congo red due to steric hinderance. In the $\beta$-CD use two $\beta$-CD molecules formed an inclusion complex with one molecule of Congo red, from the slope of the S-shaped curve increased. Two prominent isosbestic points appear at 346 nm and 478 nm. The formation constants were decreased with the increasing temperatures, due to low binding energy between $\beta$-CD and Congo red. The thermodynamic parameters were calculated from the plot of $lnK_f$ vs 1/T. The $\Delta$H, $\Delta$S and $\Delta$G were -50.73 kJ/mol, $-108.96J/K{\cdot}mol$ and -18.26 kJ/mol, respectively.
Na, Yi Rang;Jung, Daun;Gu, Gyo Jeong;Seok, Seung Hyeok
Molecules and Cells
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v.39
no.10
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pp.734-741
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2016
Granulocyte-macrophage colony stimulating factor (GM-CSF) has a role in inducing emergency hematopoiesis upon exposure to inflammatory stimuli. Although GM-CSF generated murine bone marrow derived cells have been widely used as macrophages or dendritic cells in research, the exact characteristics of each cell population have not yet been defined. Here we discriminated GM-CSF grown bone marrow derived macrophages (GM-BMMs) from dendritic cells (GM-BMDCs) in several criteria. After C57BL/6J mice bone marrow cell culture for 7 days with GM-CSF supplementation, two main populations were observed in the attached cells based on MHCII and F4/80 marker expressions. GM-BMMs had $MHCII^{low}F4/80^{high}$ as well as $CD11c^+CD11b^{high}CD80^-CD64^+MerTK^+$ phenotypes. In contrast, GM-BMDCs had $MHCII^{high}F4/80^{low}$ and $CD11c^{high}CD8{\alpha}^-CD11b^+CD80^+CD64^-MerTK^{low}$ phenotypes. Interestingly, the GM-BMM population increased but GM-BMDCs decreased in a GM-CSF dose-dependent manner. Functionally, GM-BMMs showed extremely high phagocytic abilities and produced higher IL-10 upon LPS stimulation. GM-BMDCs, however, could not phagocytose as well, but were efficient at producing $TNF{\alpha}$, $IL-1{\beta}$, IL-12p70 and IL-6 as well as inducing T cell proliferation. Finally, whole transcriptome analysis revealed that GM-BMMs and GM-BMDCs are overlap with in vivo resident macrophages and dendritic cells, respectively. Taken together, our study shows the heterogeneicity of GM-CSF derived cell populations, and specifically characterizes GM-CSF derived macrophages compared to dendritic cells.
Interleukin-4(IL-4) is known to be a major cytokine regulating immunoglobulin E(IgE) response by the induction of IgE production and type II IgE receptor(IgER II: CD23) expression. Recently, however, the role of neuroendocrine factors has been implicated in modulating the IgE response. Among various neuroendocrine growth factors, we investigated the effects of the insulin-like growth factor-1(IGF-1) since IL-4 and IGF-1 share common intracellular signaling molecules, such as the insulin receptor substrate-1/2(IRS-1/2) to induce a specific cellular response. In the human peripheral blood mononuclear cell (PBMC) cultures, IGF-1 was capable of inducing a substantial level of IgE production in a dose-dependent manner. It also noticeably upregulated the IL-4-induced or IL-4 plus anti-CD40-induced IgE production. Similarly, the IGF-1-induced IgE production was enhanced by IL-4 or anti-CD40 in an additive manner, which became saturated at high concentrations of IGF-1. Although IGF-1 alone did not induce IgER II (CD23) expression, it augmented the IL-4-induced surface CD23 expression in a manner similar to the action of anti-CD40. These results imply that IGF-1 is likely to utilize common signaling pathways with IL-4 and anti-CD40 to induce IgE and IgER II expression. In support of this notion, we observed that IGF-1 enhanced the IL-4-induced signal transducers and activators of transcription 6(STAT6) activation and independently induced $NF-{\kappa}B$ activation. Both of these bind to the IgE(C) or IgER II (CD23) promoters. Together, our data suggest that IL-4 and IGF-1 work cooperatively to activate STAT6 and $NF-{\kappa}B$. This leads to the subsequent binding of these transcription factors to the $C{\varepsilon}$ and CD23 promoters to enhance the expression of IgE and IgER II. The observed differential ability of IGF-1 on the induction of IgE vs. IgER II is discussed based on the different structure of the two promoters.
Kang, Sang Mee;Jang, Eunkyeong;Paik, Doo-Jin;Jang, Young-Ju;Youn, Jeehee
Molecules and Cells
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v.25
no.1
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pp.64-69
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2008
Although the arthritis symptoms observed in the K/BxN model have been shown to be dependent on the functions of T and B cells specific to the self antigen glucose-6-phosphate isomerase, less is known about the in vivo roles of $CD4^{+}CD25^{+}$ regulatory T($T_{reg}$) cells in the pathology of K/BxN mice. We determined the quantitative and functional characteristics of the $T_{reg}$ cells in K/BxN mice. These mice contained a higher percentage of $Foxp3^+\;T_{reg}$ cells among the $CD4^+$ T cells than their BxN littermates. These $T_{reg}$ cells were anergic and efficiently suppressed the proliferation of $na\ddot{i}ve$$CD4^+$ T cells and cytokine production by effector $CD4^+$ T cells in vitro. Antibody-mediated depletion of $CD25^+$ cells caused K/BxN mice to develop multi-organ inflammation and autoantibody production, while the symptoms of arthritis were not affected. These results demonstrate that despite the inability of the $T_{reg}$ cells to suppress arthritis development, they play a critical role protecting the arthritic mice from systemic expansion of autoimmunity.
Sang-Hyun Kim;Ha-Eun Park;Seong-Un Jeong;Jun-Hyeok Moon;Young-Ran Lee;Jeong-Ki Kim;Hyunseok Kong;Chan-Su Park;Chong-Kil Lee
IMMUNE NETWORK
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v.21
no.6
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pp.44.1-44.15
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2021
Tumor peptides associated with MHC class I molecules or their synthetic variants have attracted great attention for their potential use as vaccines to induce tumor-specific CTLs. However, the outcome of clinical trials of peptide-based tumor vaccines has been disappointing. There are various reasons for this lack of success, such as difficulties in delivering the peptides specifically to professional Ag-presenting cells, short peptide half-life in vivo, and limited peptide immunogenicity. We report here a novel peptide vaccination strategy that efficiently induces peptide-specific CTLs. Nanoparticles (NPs) were fabricated from a biodegradable polymer, poly(D,L-lactic-co-glycolic acid), attached to H-2Kb molecules, and then the natural peptide epitopes associated with the H-2Kb molecules were exchanged with a model tumor peptide, SIINFEKL (OVA257-268). These NPs were efficiently phagocytosed by immature dendritic cells (DCs), inducing DC maturation and activation. In addition, the DCs that phagocytosed SIINFEKL-pulsed NPs potently activated SIINFEKL-H2Kb complex-specific CD8+ T cells via cross-presentation of SIINFEKL. In vivo studies showed that intravenous administration of SIINFEKL-pulsed NPs effectively generated SIINFEKL-specific CD8+ T cells in both normal and tumor-bearing mice. Furthermore, intravenous administration of SIINFEKL-pulsed NPs into EG7.OVA tumor-bearing mice almost completely inhibited the tumor growth. These results demonstrate that vaccination with polymeric NPs coated with tumor peptide-MHC-I complexes is a novel strategy for efficient induction of tumor-specific CTLs.
Leukotrienes (LTs) are produced by several biosynthetic enzymes including cytosolic phospholipase $A_2$ ($cPLA_2$), 5-lipoxygenase (5-LO), and 5-lipoxygenase activating protein (FLAP) in the perinuclear area. In the present study, we showed that pretreatment with methyl-${\beta}$-cyclodextrin (MβCD), a cholesterol-depleting agent, dramatically reduced the synthesis of LTs in response to A23187 in mast cells. A23187-induced LT synthesis was inhibited by pretreatment with M${\beta}$CD, and this effect was reversed when cholesterol was added. In an approach to identifying the $M{\beta}CD$-sensitive protein(s), we observed that FLAP co-localized with flotillin-1, a lipid raft marker protein, in the lipid raft-rich low-density region of sucrose gradients. In addition, electron microscopic analysis revealed that FLAP co-localized with flotillin-1. Together, these results suggest that FLAP is present in cholesterol-rich lipid raft-like domains and that its localization in these domains is critical for LT synthesis.
CD11c and costimulatory molecules such as CD80 and CD86 express mainly in dendritic cells (DCs). In this study, we investigated the biologic effects of recombinant Fms-like tyrosine kinase-3 (Flt-3) ligand on the expression of DC surface markers, including CD11c in leukemia cell lines, such as KG-1, HL-60, NB4, and THP-1 cells. The expression of the Flt-3 receptor was found in NB4 and HL-60 cells, as well as KG-1 cells, but not in THP-1 cells. When KG-1 cells were cultured in a medium containing Flt-3 ligand or granulocyte macrophage-colony stimulating factor (GM-CSF) plus tumor necrosis factor (TNF)-$\alpha$, cell proliferation was inhibited and the expression levels of CD11c, major histocompatibility complex (MHC)-I, and MHC-II were increased in the cells. Flt-3 ligand also increased the expression level of CD11c on HL-60 and NB4 cells, but not on THP-1 cells. In comparison with CD11c expression, the expression level of CD11b on KG-1 cells, but not on NB4 and HL-60 cells, was slightly increased by Flt-3 ligand. Flt-3 ligand induced phosphorylation of extracellular signal-regulated kinase-1/2 (ERK-1/2) and p38-mitogen-activated protein kinase (p38-MAPK) in KG-1 cells, and the up-regulation of CD11c expression by Flt-3 ligand in the cells was abrogated by PD98059, an inhibitor of MEK. The results suggest that Flt-3 ligand up-regulates DC surface markers on $CD34^+$ myelomonocytic KG-1 cells, as well as promyelocytic leukemia cells, and that the differentiation of the leukemia cells into DC-like cells by Flt-3 ligand is mediated by ERK-1/2 activity.
It has been reported that bone marrow (BM)-side population (SP) cells, with hematopoietic stem cell activity, can transdifferentiate into cardiomyocytes and contribute to myocardial repair. However, this has been questioned by recent studies showing that hematopoietic stem cells (HSCs) adopt a hematopoietic cell lineage in the ischemic myocardium. The present study was designed to investigate whether BM-SP cells can in fact transdifferentiate into functional cardiomyocytes. Phenotypically, BM-SP cells were $19.59%{\pm}9.00\;CD14^+$, $8.22%{\pm}2.72\;CD34^+$, $92.93%{\pm}2.68\;CD44^+$, $91.86%{\pm}4.07\;CD45^+$, $28.48%{\pm}2.24\;c-kit^+$, $71.09%{\pm}3.67\;Sca-1^+$. Expression of endothelial cell markers (CD31, Flk-1, Tie-2 and VEGF-A) was higher in BM-SP cells than whole BM cells. After five days of co-culture with neonatal cardiomyocytes, $7.2%{\pm}1.2$ of the BM-SP cells expressed sarcomeric ${\alpha}$-actinin as measured by flow cytometry. Moreover, BM-SP cells co-cultured on neonatal cardiomyocytes fixed to inhibit cell fusion also expressed sarcomeric ${\alpha}$-actinin. The co-cultured BM-SP cells showed neonatal cardiomyocyte-like action potentials of relatively long duration and shallow resting membrane potential. They also generated calcium transients with amplitude and duration similar to those of neonatal cardiomyocytes. These results show that BM-SP cells are capable of functional cardiomyogenic differentiation when co-cultured with neonatal cardiomyocytes.
In this study, we fabricated a polymer light emitting diode (PLED) and investigated its electrical and optical characteristics in order to examine the effects of the PFO [poly(9,9-dioctylfluorene-2-7-diyl) end capped with N,N-bis(4-methylphenyl)-4-aniline] concentrations in the emission layer (EML). The PFO polymer was dissolved in toluene ranging from 0.2 to 1.2 wt%, and then spin-coated. To verify the influence of the TPBI [2,2',2"-(1,3,5-Benzinetriyl)-tris(1-phenyl-1-H-benzimidazole)]electron transport layer, TPBI small molecules were deposited by thermal evaporation. The current density, luminance, wavelength and current efficiency characteristics of the prepared PLED devices with and without TPBI layer at various PFO concentrations were measured and compared. The luminance and current efficiency of the PLED devices without TPBI layer were increased, from 117 to $553\;cd/m^2$ and from 0.015 to 0.110 cd/A, as the PFO concentration increased from 0.2 to 1.0 wt%. For the PLED devices with TPBI layer, the luminance and current efficiency were $1724\;cd/m^2$ and 0.501 cd/A at 1.0 wt% PFO concentration. The CIE color coordinators of the PLED device with TPBI layer at 1.0 wt% PFO concentration showed a more pure blue color compared with the one without TPBI, and the CIE values varied from (x, y) = (0.21, 0.23) to (x, y) = (0.16, 0.11).
Yim, Soon-Ho;Jung, Da-Woon;Williams, Darren R.;Geckeler, Kurt E.;Kim, Kyung Keun;Shin, Boo Ahn;Lee, Ik-Soo;Kim, Huyn Jung
Korean Journal of Pharmacognosy
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v.46
no.2
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pp.133-139
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2015
Two coumarinolignans, cleomiscosins C (1) and D (2) were isolated from the heartwood of Acer mono, together with four compounds, 5-O-methyl-(E)-resveratrol-3-O-${\beta}$-D-glucopyranoside (3), 5-O-methyl-(E)-resveratrol-3-O-${\beta}$-D-apiofuranosyl-(1$\rightarrow$6)-${\beta}$-D-glucopyranoside (4), scopoletin (5), and (E)-resveratrol-3-O-${\beta}$-D-glucopyranoside (6). Of them, cleomiscosins C (1) and D (2) were applied to preparing inclusion complex molecules with ${\beta}$-cyclodextrin (${\beta}$-CD) to improve the very poor solubility in cell media. The CD complexes of 1 and 2 exhibited an enhancement of water solubility which is feasible to measure their cytotoxicity using a spectrophotometer in a cell-based assay. Anti-proliferative activity of these complex molecules was successfully estimated on HCT116 human colon cancer cells, and cleomiscosin D (2) showed anti-proliferative effects at the concentration of 1.95~31.2 ${{\mu}g}$/mL in a dose-dependent manner.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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