Four peroxidase isozymes from horseradish roots (isozymes A, B, C and D) were isolated by chromatography and were thermally inactivated at $70{\sim}97^{\circ}C$ and pH 7.0. The four isozymes had different inactivation rates and the inactivation of each isozymes did not follow first order kinetics. D values of isozymes A, B, C, D and crude enzyme were 594s, 1850s, 2050s, 78s, 130s and z values were $24.0^{\circ}C$, $12.5^{\circ}C$, $18.0^{\circ}C$, $23.7^{\circ}C$ and $24.0^{\circ}C$, respectively. Sephadex gel chromatogram of the thermally treated isozyme C indicated that the shape and molecular weight of the native isozyme changed during inactivation.
Periodate-oxidized soluble starch and maltohexaose reacted with ${\alpha}-NH_2$ group of free amino acids and ${\varepsilon}-NH_2$ group of peptidyl lysine. The result shows that periodate-oxidized soluble starch and maltooligosaccharides reacted with protein and formed Schiff base between CHO group of oxidized sugar and ${\varepsilon}-NH_2$ group of surface lysine of protein molecule. Carbon and hydrogen composition of sweet potato ${\beta}-amylase$ modified with oxidized soluble starch increased and it's nitrogen composition decreased. Carbohydrate contents of sweet potato ${\beta}-amylase$ modified with oxidized soluble starch were 13.2% (pentamer), 13.4% (monomer), and with oxidized maltohexaose were 9.7% (pentamer), 9.3% (monomer) by $phenol-H_2SO_4$ method. Alpha-amino group of N-terminal, and ${\varepsilon}-NH_2$ group of lysine, of sweet potato ${\beta}-amylase$ were reacted with oxidized soluble starch by dinitrophenylation were 70% (pentamer), 73% (monomer) and 33% (pentamer), 26% (monomer), respectively, in comparison with native enzyme.
The peptidyl prolyl sis-trans isomerase (PPIase, EC 5.2.1.8) from bacillus stearothermophilus was extracted from the cells treated with by lysozyme. PPIase was purified from the cell extracts by heat treatment, ammonium sulfate precipitation, ion exchange chromatography and finally gel filtration, sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis(SDS-PAGE). The molecular weight of the purified PPIase was estimated as 18kDa by SDS-PAGE. The 39 amino acid residues from the N-terminus were determined by the protein sequencer. The enzyme showed the optimum pH at 8.0 and was stable at the range of pH 7.0∼8.0. The enzyme was considerably stable after heat treatment at 60$\^{C}$ for 30minutes, and the enzyme was quite stable up to 65$\^{C}$. The presence of the PPIase in the refolding solution accelerated the isomerization rate of the assay peptide. PPIase gene of Bacillus stearothermophilus was screened from a genomic library by plaque hybridization using the A-l primer as a probe. A PPIase positive plaque contained a 3.0kb insert of the chromosomal DNA. A 3.0kb fragment was subcloned into pUC18, resulting pPI-40. A DNA fragment encoding the N-terminal portion of the PPIase in pPI-40 was amplified by polymerase chain reaction(PCR) method using the A-1 and B-2 primers. The amplified fragment was cloned into the Sma I site of pUC18 and recombinant plasmid was designated as pSN-18. The nucleotide sequence of 167bp fragment was determined. The deduced amino acid sequence of PPIase was completely matched with the determined N-terminal amino acid sequence of PPIase B. stearothermophilus.
A simple and reliable method to diagnose cucumber green mottle mosaic virus of watermelon in Korea (CGMMV-WK) was determined by RT-PCR, and coat protein gene for CGMMV-WK was cloned. Comparing to a method reported by Lee et al. (1996), the method developed here showed a better RT-PCR reaction. RT-PCR was possible by one step in the PCR reaction mixture that contains 20 pmol of primer, reverse transcriptase (30 unit), RNasin (5 unit) using the crude RNA solution. RT-PCR condition for specifically diagnosing CGMMV-WK was that cDNA was synthesized at 42$^{\circ}C$ for 45 min followed by pre-denaturation at 95$^{\circ}C$ for 2 min, and then PCR reaction was carried out with a programmed condition that consisted of 36 sequential cycles at 96$^{\circ}C$ for 30 sec, 6$0^{\circ}C$ for 30 sec, and 72$^{\circ}C$ for 1 min. A gene encoding the coat protein of CGMMV-WK was cloned and characterized. Nucleotide sequence of coat protein gene of CGMMV-WK shared 98.77% and 99.38% of sequence identity with those of CGMMV-W and CGMMV-SH, respecitvely, however, all of amino acid sequences were same.
Kim, Eun-Ah;Lee, Kyung-Wook;Boo, Won-Back;Lee, Hyung-Hoan;Kwak, Hae-Soo
Korean Journal of Food Science and Technology
/
v.23
no.4
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pp.452-458
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1991
Psychrotrophs producing protease were isolated during ripening periods of Cheddar cheese and one of them containing the highest protease activity was identified as Pseudomonas fluorescens 65. The extracelluar proteolytic enzyme was partially purified from P. fluorescens 65 through the Sephadex G-100 gel filtration. The protease was eluted between 190 ml and 230 ml of elution volume of sodium phosphate buffer. The purified protease showed a single band in SDS-PAGE and its molecular weight was 47,000. The composition of amino acid for the protease was determined and the most abundant amino acids were glutamic acid (14.96%) and serine (13.86%). The optimum temperature and pH for the activity was $45{\sim}50^{\circ}C$ and 6.0, respectively.
Heat shock proteins (HSPs) are a family of highly conserved proteins playing an important role in the functioning of unstressed and stressed cells. The HSP70 family, the most widely studied of the hsps, is constitutively expressed (hsc70) in unstressed cells and is also induced in response to stressors (hsp70), especially those affecting the protein machinery. The HSP/HSC70 proteins act as molecular chaperones and are crucial for protein functioning, including folding, intracellular localization, regulation, secretion, and protein degradation. Here, we report the identification and characterization of the putative amino acid sequence deduced from one cDNA clone identified as heat shock protein 70. The alignment showed that the putative sequence is 100% identical to the heat shock protein 70 cognate (HSC 70) of olive flounder. The 5'-flanking region sequence (approximately 1 kb) ahead of the hsc70 gene was cloned by genome walking and a putative core promoter region and transcription elements were identified. We characterized the promoter of the olive flounder hsc70 gene by examining the ability of 5'-upstream fragments to drive expression of green fluorescent protein (GFP) in live embryos.
Uu-ilys, an i-type lysozyme from spoon worm (Urechis unicinctus), is an innate immune factor that plays an important role in the defense against pathogens. It also possesses non-enzymatic antibacterial activity. Thus, there is a possibility to develop an antimicrobial model peptide from Uu-ilys. In this study, we report the design, production, and antibacterial activity of an Uu-ilys analog that exhibits antibacterial activity. The Uu-ilys structure was fragmented according to its secondary structures to predict the regions with antimicrobial activity using antimicrobial peptide (AMP) prediction tools from different AMP databases. A peptide containing the C-terminal fragment was predicted to exert antimicrobial activity. The chosen fragment was designated as an Uu-ilys analog containing the C-terminal fragment, Uu-ilys-CF. To examine the possibility of developing an AMP using the sequence of Uu-ilys-CF, recombinant fusion protein (TrxA-Uu-ilys-CF) was produced in an expression system that was heterologous. The produced fusion protein was cleaved after methionine leaving Uu-ilys-CF free from the fusion protein. This was then isolated through high performance liquid chromatography and reverse phase column, CapCell-Pak C18. The antibacterial activity of Uu-ilys-CF against different microbial strains (four gram-positive, six gram-negative, and one fungal strain) were assessed through the ultrasensitive radial diffusion assay (URDA). Among the bacterial strains tested, Salmonella enterica was the most susceptible. While the fungal strain tested was not susceptible to Uu-ilys-CF, broad spectrum antibacterial activity was observed.
Olfactory receptor protein ODR10 was expressed in E.coli as fusion protein with GST and His6 Tag. Crude membrane extract of the expressed protein was coated on the surface of quartz crystal microbalance, and the interaction of the ODR10 with several odorants was examined. Although the expression level was very low, quartz crystal microbalance showed that the expressed protein interacted most strongly with diacetyl (butanedione), which is known to bind to the ODR10 protein selectively. The interaction between ODR10 and diacetyl was $5{\sim}10$ times stronger than the interaction between ODR10 and other odorants. Thus, E. coli cells expressing the olfactory receptor protein could be used as an olfactory biosensor. Also, such system could be used to test which olfactory receptor reacts specifically with which odorant molecules, since there has been no cheap and convenient way to test the interaction of olfactory receptors and odorant molecules yet.
This study was performed to understand the behavior of protein mobility and intensity of enzymatic hydrolysis according to crosslinking of sodium caseinate, whey protein isolate, skim milk and whole milk powders with or without transglutaminase (TGase, w/w = 200 : 1) at $38^{\circ}C$. Whey protein was limited to crosslinking and skim milk was relatively more increased in high molecular polymer than whole milk. The degree of crosslinking decreased in the order of sodium caseinate>skim milk>whole milk>whey protein isolate. The SDS-PAGE results indicated that main bands of TGase treated samples had a high mobility and formed bands of molecular weights below 15 kDa by hydrolysis with pepsin after 10 min of reaction time. However, ${\beta}-lactoglobulin$ showed remarkable stability against pepsin hydrolysis treated with and without TGase. The high molecular polymers were easily hydrolyzed with digestive enzymes in vitro experiment. These results suggested that novel dairy products using TGase would have no special digestive problem in human body.
The cellular responses of soil-borne bacterium, Pseudomonas sp. HK-6 to explosive 2,4,6-trinitrotoluene (TNT) were examined. Two stress shock proteins (SSPs), approximately 70-kDa DnaK and a 60-kDa GroEL were found in HK-6 cells in response to TNT. Analyses of SDS-PAGE and Western blot using anti-DnaK and GroEL revealed that SSPs were induced in HK-6 cells exposed to 0.5 M of TNT far 6-12 hrs. The maximum induction of proteins was achieved at 8-hr incubation point after HK-6 cells'exposure to TNT. Similar SSPs were found to be induced in HK-6 cells by heat shock (shift of temperature, from $30^{\circ}C$ to $42^{\circ}C$) or cold shock (shift of temperature,$30^{\circ}C$ to $4^{\circ}C$).2D-PAGE of soluble protein tractions from the culture of Pseudomonas sp. HX-6 exposed to TNT demonstrated that approximately 450 spots were observed on the silver stained gels ranging from pH 3 to pH 10. Among them, 12 spots significantly induced and expressed in response to TNT were selected and analyzed. Approximately 60-kDa protein, which was assumed highly expressed on the gel, was used for amino acid sequencing. N-terminal microsequencing with in-gel digestion showed that N-terminal sequence of the TNT-induced protein, <$^1XXAKDVKFGDSARKKML^17$, shared extensive similarity with $^1XXAKDVKFGDSARKKML^17$, N-terminal sequence of (P48216) GroEL of Pseudomonas putida.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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