포유동물의 체외수정란 치적발달조건을 수립하기 위하여 난자의 성숙, 수정 및 배양시 형태학적인 관찰만으로는 불충분하여 각 세포내 구성물 및 핵상 등의 변화를 조사하여 개별 수정란의 품질평가를 통하여 수정란 발달 능력을 향상시키는 방법의 개발이 필요하다. 최근 체외생산된 수정란이 발달율 및 착상율이 현저히 감소되는 원인을 조사한 결과 이러한 수정란에서 할구의 파편화가 보다 더 진행되는 것을 관찰하였다. 이에 본 실험의 목적은 체외수정과 핵치환 유래 소 배반포에서 세포사멸 기전으로 알려진 apoptosis 조절 유전자로써 Bcl-2와 Bax 유전자의 전사체 발현량을 비교 조사함으로써 착상전 수정란 발달과정에서의 역할을 확립하고자 하였다. Apoptosis의 분석은 TUNEL 방법으로 수행하였다 체외수정과 핵치환유래 배반포에서 Bcl-2와 Bax 유전자의 발현량은 RT-PCR로 확인하였다. 핵치환유래 배반포에 있어 TUNEL 표식으로 확인된 비율은 체외수정 된 배반포보다 유의하게 높다 (P<0.001). 체외수정된 배반포의 Bcl-2의 발현량은 핵치환유래 배반포보다 높다. 반대로 체외수정된 배반포의 Bax 발현량은 핵치환 유래 소 배반포보다 낮았다 (P<0.05). 이러한 결과는 체외수정보다 핵치환 유래 소의 배반포에서 좀더 많은 파편화를 초래함을 보여준다. 또한, 핵치환 유래 수정란의 발달 정지의 증가는 apoptosis와 같은 핵의 파편화로써 야기될 수 있다고 사료된다.
목 적: 배양 환경과 동결 기술이 발달함에 따라 동결 포배의 해동-이식의 빈도가 증가하고 있으며, 신선 주기와 마찬가지로 해동-이식 주기에서도 질 좋은 배아를 선별하는 것은 임신 성공 여부를 결정하는 아주 중요한 과제이다. 본 연구는 동결 당시 포배로의 발달 속도가 임신 결과에 미치는 영향을 알아보기 위하여, 수정 후 5일 및 6일째 동결한 포배의 해동-이식 후 임신율을 비교 분석하였다. 연구방법: 2006년 1월부터 12월까지 5일째 또는 6일째 동결한 포배를 해동하여 2007년 6월까지 융해 이식한 87명, 93주기를 대상으로 하였다. 동결법은 ethylene glycol과 DMSO를 이용한 유리화 동결법을 이용하였으며, 팽창 포배는 인위적인 수축을 시행 후 동결하였다. 해동 과정은 이식 전날 시행하여 15~18시간 배양액에서 배양 후 재팽창 여부를 확인하였다. 결 과: 5일째 동결한 포배를 해동-이식한 52주기와 6일째 동결한 포배를 해동-이식한 41주기에서 환자의 나이, 이식한 배아의 수, 해동 배아의 생존율 등 임신 결과에 영향을 미칠만한 요인들의 차이는 없었다. 그러나 생화학적 임신율, 임상적 임신율, 진행 임신율, 착상율 등은 5일째 동결한 포배를 해동-이식한 주기에서 높게 나타났다. 결 론: 5일째 동결한 포배를 해동-이식했을 때의 임신율은 6일째 동결한 포배를 해동-이식했을 때의 임신율보다 2배 이상 높았으며, 이는 신선 주기와 마찬가지로 해동-이식 주기에서도 동결 전 배아의 발달 속도의 차이를 임신 성공 예측의 중요한 지표로 사용할 수 있음을 시사한다.
This study was conducted to investigate the developmental ability of caprine embryos after somatic cell interspecies nuclear transfer. Donor cells were obtained from an ear-skin biopsy of a caprine, digested with 0.25% trypsin-EDTA in PBS, and primary fibroblast cultures were established in TCM-199 with 10% FBS. After maturation, expanded cumulus cells were removed by vigorous pipetting in the presence of 0.3% hyaluronidase. The matured oocytes were dipped in D-PBS plus 10% FBS+7.5 $\mu\textrm{g}$/ml cytochalasin B and 0.05 M sucrose. The reconstructed oocytes were electrically fused with donor cells in 0.3 M mannitol fusion medium. After the electofusion, embryos were activated by electric stimulation. Interspecies nuclear transfer embryos with bovine cytoplasts were cultured in TCM-199 medium supplemented with 10% FBS including bovine oviduct epithelial cells for 7∼9 day. On the other hand, the NT embryos with porcine cytoplasts were cultured in NCSU-23 medium supplemented with 10% FBS for 6∼8 day at $39^{\circ}C, 5% CO_2$ in air. In caprine-bovine NT embryos, the cleavage(2-cell) rate was 36.8% in confluence and 43.8% in serum starvation. The developmental rate of morula- and blastocyst-stage embryos was 0.0% in confluence and 18.8% in serum starvation. In caprine-porcine NT embryos, the cleavage(2-cell) rate was 76.7% in confluence and 66.7% in serum starvation. The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos was 3.3% in confluence and 3.0% in serum starvation, and no significant difference was observed in synchronization treatment between donor cells. In caprine-bovine NT embryos, the cleavage(2-cell) rate of cultured donor cells was 30.8% and 17.6% in 5∼9 and 10∼14 passage(P<0.05). The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos were significantly higher(P<0.05) in 5∼9 passage(23.1%) than in 10∼14 passage(0.0%) of cultured donor cells. In caprine-porcine NT embryos, the cleavage rate was significantly higher(P<0.05) in 5∼9 passage(86.7%) than in 10∼14 passage(50.0%) of cultured donor cells. The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos were 3.3 and 0.0% in 5∼9 and 10∼14와 passage of cultured donor cells. In caprine-bovine NT embryos, the developmental rate of morula and blastocyst stage embryos were 22.6% in interspecies nuclear transfer, 33.9% in in vitro fertilization and 28.1% in parthenotes, which was no significant differed. The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos with caprine-porcine NT embryos were lower(P<0.05) in interspecies nuclear transfer(5.1%) than in vitro fertiltzation(26.9%) and parthenotes(37.4%).
This study was designed to investigate the effect of essential amino acids (EAA) and/or non-essential amino acids (NEAA) on the development of parthenogenetic and somatic cell nuclear transfer (SCNT) porcine embryos in vitro. To evaluate the timing of amino acids supplementation, activated oocytes were cultured in NCSU23-PVA with EAA, NEAA or NEAA+EAA (AAs) during specific periods as below: EAA, NEAA or AAs were supplemented during Day 0 to 6 (whole culture period: ALL), Day 2 to Day 6 (post-maternal embryonic transition period: POST-MET), Day 5 to Day 6 (post-compaction period: POST-CMP), Day 0 to Day 2 (pre-maternal embryonic transition period: PRE-MET), or Day 0 to Day 4 (post-compaction period: PRE-CMP). Supplementation of NEAA decreased cleavage rates in PRE-MET and PRE-CMP and also decreased blastocyst rates in POST-CMP. On the other hand, EAA significantly enhanced blastocyst formation rate in POST-MET and no detrimental effect on embryonic development in other groups. Interestingly, NEAA and EAA had synergistic effect when they were supplemented to the medium during whole culture period. Supplementation of AAs also enhanced SCNT porcine embryo development whereas BSA-free medium without AAs could not supported blastocyst formation of SCNT embryos. In conclusion, existence of EAA and NEAA in defined culture medium variously influences the development of parthenogenetic and SCNT porcine embryos, and their positive effect are only occurred when both EAA and NEAA are supplemented to the medium during whole culture period. Additionally, AAs supplementation enhances the blastocyst formation of SCNT porcine embryos when they are cultured in the defined condition.
This study was conducted to examine the viability of nuclear transfer bovine embryos following embryo transfer. Donor embryos were treated with nocodazole to arrest their cell-cycle-stage at mitotic(M) phase. After releasing from nocodazole blastomeres were separated and transferred into the enucleated oocytes(BC), or cultured in medium with aphidicolin. Freshly cleaved blastomeres within 1.5h after cleavage(AC) and non-cleaved ones up to 3h after releasing from nocodazole(NC) were transferred into the enucleated oocytes. Blastocysts derived from nuclear transfer were transferred to Day 7~8 recipient cows. Some blastocysts were vitrified and thawed before embryo transfer. Developmental rates to the blastocyst stage were higher in AC(18.1%, P<0.05) than BC(8.6%) and NC(5.1%). Blastocyst development slightly enhanced with aphidicolin(1~2$\mu\textrm{g}$/ml) treatment(16.9~22.6%) compared to non treated control(11.1%). Survival rate fo vitrified nuclear transfer embryos after thawing was 75%(24/32). Twnety-three vitrified nuclear transfer embryos and 3 fresh ones were transferred to 23 recipients, 6 heads were pregnant and 1 male calf(24 kg) was born from a recipient cow recevied one vitrifiedthawed nuclear transfer embryo at 277 days after embryo transfer. This result suggests that the nuclear transfer embryos can developed to term after vitrification andembryo transfer.
In this study I report that in vitro development rates of bovine nuclear transfer embryos activated either with boar sperm cytosolic factor (SCF) or with ionomycin followed by cycloheximide (CHX) and subsequent in vivo developmental rates after embryo transfer are related to blastocyst quality as evaluated by apoptosis analysis. SCF was extracted from porcine semen then purified for post-activation injection after nuclear transfer. The optimal timing for SCF injection was determined to be at least 22 h post-IVM for parthenogenetic activation of bovine oocyies. A total of 364 oocytes were successfully enucleated and 268 (73.6%) fused and were injected with SCF. The survival rate of fused and injected embryos was 109/113 (96.5%) after 2 h. The cleavage rates of nuclear transfer embryos after 3 d of culture in the ionomycin/CHX treated group were significantly higher than those of the SCF-activated group (93.3% vs 81.7%, p<0.01, respectively). However, at 7 d and 9 d there was no significant difference between the total developmental rates to blastocyst for either treatment group. Total blastocyst cell numbers were also not significantly different between the two activation treatments (ionomycin/CHX: 149.5${\pm}$7.7 vs. SCF: 139.3${\pm}$4.4 cells). In contrast, the apoptotic levels in the SCF blastocysts were higher than those produced after the chemical treatment (28.2${\pm}$5.1% vs. 8.8${\pm}$0.6%, respectively). A total of 18 expanded or hatching blastocysts was transferred to nine synchronized recipients in each activation group; 5/9 (55.5%) and 2/9 (22.2%) were pregnant at 40 d in the ionomycin/CHX treatment and SCF activated group, respectively. However, only one went to term in the ionomycin/CHX treatment while none of the pregnancies from the SCF group were maintained by 90 d. In conclusion, these results suggest that SCF derived from different species is a limited activator to be used for activation after bovine nuclear transfer in lieu of a chemical activation protocol.
Park, Bola;Lee, Joohyeong;Lee, Yongjin;Elahi, Fazle;Jeon, Yubyeol;Hyun, Sang-Hwan;Lee, Eunsong
한국수정란이식학회지
/
제28권2호
/
pp.133-139
/
2013
The objective of this study was to determine the effect of post-activation treatment with cytoskeletal regulators in combination with or without 6-dimethylaminopurine (DMAP) on embryonic development of pig oocytes after parthenogenesis (PA) and somatic cell nuclear transfer (SCNT). PA and SCNT oocytes were produced by using in vitro-matured pig oocytes and treated for 4 h after electric activation with $0.5{\mu}M$ latrunculin A (LA), $10.4{\mu}M$ cytochalasins B (CB), and $4.9{\mu}M$ cytochalasins D (CD) together with none or 2 mM DMAP. Post-activation treatment of PA oocytes with LA, CB, and CD did not alter embryo cleavage (85.8~88.6%), blastocyst formation (30.7~ 32.4%), and mean cell number of blastocysts (33.5~33.8 cells/blastocyst). When PA oocytes were treated with LA, CB, and CD in combination with DMAP, blastocyst formation was significantly (P<0.05) improved by CB+DMAP (42.5%) compared to LA+DMAP (28.0%) and CD+DMAP (25.1%), but no significant differences were found in embryo cleavage (77.5~78.0%) and mean blastocyst cell number (33.6~35.0 cells) among the three groups. In SCNT, blastocyst formation was significantly (P<0.05) increased by post-activation treatment with LA+DMAP (32.9%) and CD+DMAP (35.0%) compared to CB+DMAP (22.0%) while embryo cleavage (85.5~85.7%) and blastocyst cell number (41.1~43.8 cells) were not influenced. All three treatments (LA, CB, and CD with DMAP) effectively inhibited pseudo-polar body extrusion in SCNT oocytes. The proportions of oocytes showing single pronucleus formation were 89.6%, 83.9%, and 93.3%, respectively with the increased tendency (P<0.1) by LA+DMAP and CD+ DMAP compared to CB+DMAP. Our results demonstrate that post-activation treatment with LA or CD in combination with DMAP improves pre-implantation development of SCNT embryos and the stimulating effect of cytoskeletal modifiers on embryonic development is differentially shown depending on the origin (PA or SCNT) of embryos in pigs.
This study was conducted to enhance the efficiency of embryo transfer and embryos produced in vitro according to select good quality blastocyst among in vivo or in vitro produced embryos. After middle blastocys(MB) and late blastocyst(LB) stages embryos that developed in vitro for 7∼8 days were treated hypertonic solution(380 mOsm or 600 mOsm) and the rate of development to hatched blastocyst(HB) was examined. The results obtained were summarized as follows: The proportion of embryos developed to HB was higher than that of control regardless of hypertonic solution treatment. However, it was related to culture time in hypertonic solution The propotrion of embryos developed to HB of morphologically recovered embryos in 380 nOsm solution ws higher than that of morphologically shrinked embryos. However, treatment time was not significantly different the rates of HB development. Especially, the proportion of embryos developed to HB of morphologically recovered embryos of the 30-min-treated group was significantly higher than that of control (p<0.05). The results suggest that hypertonic solution treatment should enhance the efficiency for criterion of transferable blastocyst quality.
Interspecies somatic cell nuclear transfer (iSCNT) is a useful method to preserve endangered species and to study the reprogramming event of a nuclear donor cell by the oocyte. Although several studies of iSCNT using murine cells and bovine oocytes have been reported, the development of murine-bovine iSCNT embryos beyond the 8-cell stage has not been successful. In this paper, we examined the developmental potential of embryos reconstructed with a murine embryonic fibroblast as the nuclear donor and a bovine oocyte as the cytoplasm recipient. The reconstructed embryos were cultured in CZB (murine medium) or CR1aa (bovine medium). In addition, for the development of a murine-bovine iSCNT blastocyst, the antioxidant ${\beta}$-mercaptoethanol (${\beta}ME$) was supplemented to CR1aa medium. Furthermore, to verify the mouse genome activation in murine-bovine iSCNT embryos, RT-PCR analysis of murine Xist was performed. The development of the murine-bovine iSCNT embryos cultured in CR1aa was significantly higher than that in CZB (p<0.05). With respect to the effect of BME on the development of the murine-bovine iSCNT blastocyst, addition of BME produced a significant increase in blastocyst development (p<0.05). Karyotype analysis confirmed that the reconstructed embryos were derived from murine cells (40XX). The Xist gene was gradually increased from the 8-cell stage to the blastocyst stage. This is the first report of blastocyst development of iSCNT embryos derived from murine somatic cells and bovine oocytes. These results demonstrate that bovine cytoplasm can support the development of later stages of a preimplantation embryo from murine-bovine iSCNT.
This study was carried out to investigate the effect of activation timing, cell cycle and passage on the development of embryos produced by cumulus cell nuclear transfer in Hanwoo (Korean cattle). Nuclear donor cumulus cells were cultured in Dulbecco's modified Eagle medium supplemented with 10% fetal bovine serum at $38.5^{\circ}C$ in a humidified atmosphere of 5% $CO_2$ in air. The 1~6 passages of serum deprived or actively dividing cumulus cells were isolated and used as donor cells. The in vitro matured oocytes were enucleated and then the isolated donor cells were introduced. One pulse of 180 volts for $15{\mu}s$ was applied to induce the fusion between karyoplast and cytoplast. The activation was done before or after the fusion. To activate, oocytes were treated with $10{\mu}M$ calcium ionophore for 5 min immediately followed by 2 mM 6-dimethylaminopurine for 3 h. The nuclear transfer embryos were cultured in $500{\mu}l$ of modified CRlaa supplemented with 3 mg/ml BSA in four well dish covered with mineral oil. After 3 days culture, culture medium was changed into modified CRlaa medium containing 1.5 mg/ml BSA and 5% FBS for 4 days. The incubation environment was 5% $CO_2$, 5% $O_2$, 90% $N_2$ at $38.5^{\circ}C$. There was no blastocyst formation when the nuclear transfer embryos were activated before the fusion, whereas, 29.9% of blastocyst formation was shown when the nuclear transfer embryos were activated after the fusion. When serum deprived and actively dividing cumulus cells were used as nuclear donor cells, the developmental rates to blastocyst were 38.5% and 40.6%, respectively. There was no significant difference between serum deprived and actively dividing cells in the developmental rates. The developmental rates to blastocyst according to 1~6 passages were 37.5~44.4%. However, there were no significant differences among passages. These results indicate that 1~6 passage cumulus cell irrespective of cell cycle could support development of nuclear transfer embryos activated after the fusion.
본 웹사이트에 게시된 이메일 주소가 전자우편 수집 프로그램이나
그 밖의 기술적 장치를 이용하여 무단으로 수집되는 것을 거부하며,
이를 위반시 정보통신망법에 의해 형사 처벌됨을 유념하시기 바랍니다.
[게시일 2004년 10월 1일]
이용약관
제 1 장 총칙
제 1 조 (목적)
이 이용약관은 KoreaScience 홈페이지(이하 “당 사이트”)에서 제공하는 인터넷 서비스(이하 '서비스')의 가입조건 및 이용에 관한 제반 사항과 기타 필요한 사항을 구체적으로 규정함을 목적으로 합니다.
제 2 조 (용어의 정의)
① "이용자"라 함은 당 사이트에 접속하여 이 약관에 따라 당 사이트가 제공하는 서비스를 받는 회원 및 비회원을
말합니다.
② "회원"이라 함은 서비스를 이용하기 위하여 당 사이트에 개인정보를 제공하여 아이디(ID)와 비밀번호를 부여
받은 자를 말합니다.
③ "회원 아이디(ID)"라 함은 회원의 식별 및 서비스 이용을 위하여 자신이 선정한 문자 및 숫자의 조합을
말합니다.
④ "비밀번호(패스워드)"라 함은 회원이 자신의 비밀보호를 위하여 선정한 문자 및 숫자의 조합을 말합니다.
제 3 조 (이용약관의 효력 및 변경)
① 이 약관은 당 사이트에 게시하거나 기타의 방법으로 회원에게 공지함으로써 효력이 발생합니다.
② 당 사이트는 이 약관을 개정할 경우에 적용일자 및 개정사유를 명시하여 현행 약관과 함께 당 사이트의
초기화면에 그 적용일자 7일 이전부터 적용일자 전일까지 공지합니다. 다만, 회원에게 불리하게 약관내용을
변경하는 경우에는 최소한 30일 이상의 사전 유예기간을 두고 공지합니다. 이 경우 당 사이트는 개정 전
내용과 개정 후 내용을 명확하게 비교하여 이용자가 알기 쉽도록 표시합니다.
제 4 조(약관 외 준칙)
① 이 약관은 당 사이트가 제공하는 서비스에 관한 이용안내와 함께 적용됩니다.
② 이 약관에 명시되지 아니한 사항은 관계법령의 규정이 적용됩니다.
제 2 장 이용계약의 체결
제 5 조 (이용계약의 성립 등)
① 이용계약은 이용고객이 당 사이트가 정한 약관에 「동의합니다」를 선택하고, 당 사이트가 정한
온라인신청양식을 작성하여 서비스 이용을 신청한 후, 당 사이트가 이를 승낙함으로써 성립합니다.
② 제1항의 승낙은 당 사이트가 제공하는 과학기술정보검색, 맞춤정보, 서지정보 등 다른 서비스의 이용승낙을
포함합니다.
제 6 조 (회원가입)
서비스를 이용하고자 하는 고객은 당 사이트에서 정한 회원가입양식에 개인정보를 기재하여 가입을 하여야 합니다.
제 7 조 (개인정보의 보호 및 사용)
당 사이트는 관계법령이 정하는 바에 따라 회원 등록정보를 포함한 회원의 개인정보를 보호하기 위해 노력합니다. 회원 개인정보의 보호 및 사용에 대해서는 관련법령 및 당 사이트의 개인정보 보호정책이 적용됩니다.
제 8 조 (이용 신청의 승낙과 제한)
① 당 사이트는 제6조의 규정에 의한 이용신청고객에 대하여 서비스 이용을 승낙합니다.
② 당 사이트는 아래사항에 해당하는 경우에 대해서 승낙하지 아니 합니다.
- 이용계약 신청서의 내용을 허위로 기재한 경우
- 기타 규정한 제반사항을 위반하며 신청하는 경우
제 9 조 (회원 ID 부여 및 변경 등)
① 당 사이트는 이용고객에 대하여 약관에 정하는 바에 따라 자신이 선정한 회원 ID를 부여합니다.
② 회원 ID는 원칙적으로 변경이 불가하며 부득이한 사유로 인하여 변경 하고자 하는 경우에는 해당 ID를
해지하고 재가입해야 합니다.
③ 기타 회원 개인정보 관리 및 변경 등에 관한 사항은 서비스별 안내에 정하는 바에 의합니다.
제 3 장 계약 당사자의 의무
제 10 조 (KISTI의 의무)
① 당 사이트는 이용고객이 희망한 서비스 제공 개시일에 특별한 사정이 없는 한 서비스를 이용할 수 있도록
하여야 합니다.
② 당 사이트는 개인정보 보호를 위해 보안시스템을 구축하며 개인정보 보호정책을 공시하고 준수합니다.
③ 당 사이트는 회원으로부터 제기되는 의견이나 불만이 정당하다고 객관적으로 인정될 경우에는 적절한 절차를
거쳐 즉시 처리하여야 합니다. 다만, 즉시 처리가 곤란한 경우는 회원에게 그 사유와 처리일정을 통보하여야
합니다.
제 11 조 (회원의 의무)
① 이용자는 회원가입 신청 또는 회원정보 변경 시 실명으로 모든 사항을 사실에 근거하여 작성하여야 하며,
허위 또는 타인의 정보를 등록할 경우 일체의 권리를 주장할 수 없습니다.
② 당 사이트가 관계법령 및 개인정보 보호정책에 의거하여 그 책임을 지는 경우를 제외하고 회원에게 부여된
ID의 비밀번호 관리소홀, 부정사용에 의하여 발생하는 모든 결과에 대한 책임은 회원에게 있습니다.
③ 회원은 당 사이트 및 제 3자의 지적 재산권을 침해해서는 안 됩니다.
제 4 장 서비스의 이용
제 12 조 (서비스 이용 시간)
① 서비스 이용은 당 사이트의 업무상 또는 기술상 특별한 지장이 없는 한 연중무휴, 1일 24시간 운영을
원칙으로 합니다. 단, 당 사이트는 시스템 정기점검, 증설 및 교체를 위해 당 사이트가 정한 날이나 시간에
서비스를 일시 중단할 수 있으며, 예정되어 있는 작업으로 인한 서비스 일시중단은 당 사이트 홈페이지를
통해 사전에 공지합니다.
② 당 사이트는 서비스를 특정범위로 분할하여 각 범위별로 이용가능시간을 별도로 지정할 수 있습니다. 다만
이 경우 그 내용을 공지합니다.
제 13 조 (홈페이지 저작권)
① NDSL에서 제공하는 모든 저작물의 저작권은 원저작자에게 있으며, KISTI는 복제/배포/전송권을 확보하고
있습니다.
② NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 상업적 및 기타 영리목적으로 복제/배포/전송할 경우 사전에 KISTI의 허락을
받아야 합니다.
③ NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 보도, 비평, 교육, 연구 등을 위하여 정당한 범위 안에서 공정한 관행에
합치되게 인용할 수 있습니다.
④ NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 무단 복제, 전송, 배포 기타 저작권법에 위반되는 방법으로 이용할 경우
저작권법 제136조에 따라 5년 이하의 징역 또는 5천만 원 이하의 벌금에 처해질 수 있습니다.
제 14 조 (유료서비스)
① 당 사이트 및 협력기관이 정한 유료서비스(원문복사 등)는 별도로 정해진 바에 따르며, 변경사항은 시행 전에
당 사이트 홈페이지를 통하여 회원에게 공지합니다.
② 유료서비스를 이용하려는 회원은 정해진 요금체계에 따라 요금을 납부해야 합니다.
제 5 장 계약 해지 및 이용 제한
제 15 조 (계약 해지)
회원이 이용계약을 해지하고자 하는 때에는 [가입해지] 메뉴를 이용해 직접 해지해야 합니다.
제 16 조 (서비스 이용제한)
① 당 사이트는 회원이 서비스 이용내용에 있어서 본 약관 제 11조 내용을 위반하거나, 다음 각 호에 해당하는
경우 서비스 이용을 제한할 수 있습니다.
- 2년 이상 서비스를 이용한 적이 없는 경우
- 기타 정상적인 서비스 운영에 방해가 될 경우
② 상기 이용제한 규정에 따라 서비스를 이용하는 회원에게 서비스 이용에 대하여 별도 공지 없이 서비스 이용의
일시정지, 이용계약 해지 할 수 있습니다.
제 17 조 (전자우편주소 수집 금지)
회원은 전자우편주소 추출기 등을 이용하여 전자우편주소를 수집 또는 제3자에게 제공할 수 없습니다.
제 6 장 손해배상 및 기타사항
제 18 조 (손해배상)
당 사이트는 무료로 제공되는 서비스와 관련하여 회원에게 어떠한 손해가 발생하더라도 당 사이트가 고의 또는 과실로 인한 손해발생을 제외하고는 이에 대하여 책임을 부담하지 아니합니다.
제 19 조 (관할 법원)
서비스 이용으로 발생한 분쟁에 대해 소송이 제기되는 경우 민사 소송법상의 관할 법원에 제기합니다.
[부 칙]
1. (시행일) 이 약관은 2016년 9월 5일부터 적용되며, 종전 약관은 본 약관으로 대체되며, 개정된 약관의 적용일 이전 가입자도 개정된 약관의 적용을 받습니다.