Purpose : To address the ability of Dohaekseungkitang (DST: a commonly used herb formulation in Korea, Japan and China to have anti-cancer effect on cervical carcinoma), we investigated the effects of DST on programmed cell death (apoptosis) in HeLa human cervical carcinoma cells. Methods : We cultured HeLa cell which is human metrocarcinoma cell in D-MEM included 10% fetal bovine serum(Hyclone Laboratories) below $37^{\circ}C$, 5% CO2. Then we observed apoptosis of log phage cell which is changed cultivation liquid 24 Hours periodically. Results : After the treatment of DST for 48 hours, apoptosis occurred in a dose-dependent manner. In this study, we have shown that DST induces calpain and the associated caspase-8 and -9 activations. Apoptosis was prevented by pre-incubation of the cells with the calcium cHeLator-BAPTA-AM, calcium channel blocker-Nif edipine or Ryonidine agonist-Ryonidine peptide, implicating calcium in the apoptotic process. Ubiquitous calpains (mu- and m-calpain) have been repeatedly implicated in apoptosis, especially in calcium-related apoptosis. However this study showed 1hat either calpain inhibitor-calpastin or caspase-3 inhibitor-DEVD- did not blocked the herb formulation-induced apoptosis in HeLa human cervical carcinoma cells. D ST initiates a cell death pathway that is partially dependent of caspases. DST-induced apoptosis requires caspase-independent mechanism. Conclusion : We conclude that DST-induced calpain activation triggers the intrinsic apoptotic pathway in which caspase-independent mechanism is also involved.
Low density lipoproteins (LDL) play important roles in the pathogenesis of atherosclerosis. Diabetes is associated with accelerated atherosclerosis leading to cardiovascular disease in diabetic patients. Although LDL stimulates the proliferation of arterial smooth muscle cells (SMC), the mechanisms are not fully understood. We examined the effects of native LDL and glycated LDL on the extracellular signal-regulated kinase (ERK) pathway. Addition of native and glycated LDL to rat aorta SMCs (RASMCs) stimulated ERK phosphorylation. ERK phosphorylation was not affected by exposure to the $Ca^{2+}$ chelator BAPTA-AM but inhibition of protein kinase C (PKC) with GF109203X, inhibition of Src kinase with PP1 ($5{\mu}M$) and inhibition of phospholipase C (PLC) with U73122/U73343 ($5{\mu}M$) all reduced ERK phosphorylation in response to glycated LDL. In addition, pretreatment of the RASMCs with a cell-permeable mitogen-activated protein kinase kinase (MEK) inhibitor (PD98059, $5{\mu}M$) markedly decreased ERK phosphorylation in response to native and glycated LDL. These findings indicate that ERK phosphorylation in response to glycated LDL involves the activation of PKC, PLC, and MEK, but is independent of intracellular $Ca^{2+}$.
Apoptosis has been implicated in the pathophysiological mechanisms of various neurodegenerative diseases. In a variety of cell types, oxidative stress has been demonstrated to play an important role in the apoptotic cell death. However, the exact mechanism of oxidative stress-induced apoptosis in neuronal cells is not known. In this study, we induced oxidative stress in IMR-32 human neuroblastoma cells with tert- butylhydroperoxide (TBHP), which was confirmed by significantly reduced glutathione content and glutathione reductase activity, and increased glutathione peroxidase activity. TBHP induced decrease in cell viability and increase in DNA fragmentation, a hallmark of apoptosis, in a dose-dependent manner. TBHP also induced a sustained increase in intracellular $Ca^{2+}$ concentration, which was completely prevented either by EGTA, an extracellular $Ca^{2+}$ chelator or by flufenamic acid (FA), a non-selective cation channel (NSCC) blocker. These results indicate that the TBHP-induced intracellular $Ca^{2+}$ increase may be due to $Ca^{2+}$ influx through the activation of NSCCs. In addition, treatment with either an intracellular $Ca^{2+}$ chelator (BAPTA/AM) or FA significantly suppressed the TBHP-induced apoptosis. Moreover, TBHP increased the expression of p53 gene but decreased c-myc gene expression. Taken together, these results suggest that the oxidative stress-induced apoptosis in neuronal cells may be mediated through the activation of intracellular $Ca^{2+}$ signals and altered expression of p53 and c-myc.
Salviae Miltiorrhizae Radix has been used for treatment of cardiovascular diseases in oriental medicine. To investigate the possible involvement of cardiac ion channel in this effect, we examined electrophysiological effects of the extract of Salviae Miltiorrhizae Radix on action potentials and ionic currents in rat ventricular myocytes. The extracts of Salviae Miltiorrhizae Radix were fractionated into nine fractions, and the effect of each fraction on action potential was tested. The fraction containing monomethyl lithospermic acid-A (LSA-A) induced a significant prolongation of action potential duration (APD). LSA-B which is a major component of Salviae Miltiorrhizae Radix, however, did not cause a significant effect. In voltage clamp experiments, the effects of LSA-A on K currents, Ca currents and Na currents were tested. Neither K currents nor L-type Ca currents were affected by LSA-A. On the contrary, LSA-A significantly slowed down the inactivation kinetics of the Na current with no effect on the fast component of the inactivation process. The amplitude of the peak current and the voltage-dependence of activation were not changed by LSA-A. The effect of LSA-A on Na current was abolished when high concentration of $Ca^{2+}$ buffer (10 mM BAPTA) was included in the pipette solution or when Ca2+ current was blocked by nicardipine (1 $\mu$M) in the bath solution.n.
The inhibitory effects of the constituents of Gastrodia elata Bl. (GE) on glutamate-induced apoptosis in human neuronal cells were investigated using IMR32 human neuroblastoma cells. Glutamate (GLU) induced DNA fragmentation, a hallmark of apoptosis, in a dose-dependent manner. GLU also induced a slow and sustained increase in intracellular $Ca^{2+}$ concentration. Treatment with EGTA, an extracellular $Ca^{2+}$ chelator, in a nominal $Ca^{2+}$ -free buffer solution abolished the GLU-induced intracellular $Ca^{2+}$ increase, indicating that GLU stimulated Ca2+ influx pathway in the IMR32 cells. BAPTA, an intracellualr $Ca^{2+}$ chelator, significantly inhibited the GLU-induced apoptosis assessed by the flow cytometry measuring hypodiploid DNA content indicative of apoptosis, implying that intracellular $Ca^{2+}$ rise may mediate the apoptotic action of GLU. Vanillin (VAN) and p-hydroxybenzaldehyde(p-HB), known constituents of GE, significantly inhibited both intracellular $Ca^{2+}$ rise and apoptosis induced by GLU. These results suggest that the apoptosis-inhibitory actions of the constituents of GE may account, at least in part, for the basis of their antiepileptic activities. These results further suggest that intracelluarl $Ca^{2+}$ signaling pathway may be a molecular target of the constituents of GE.
Although statins, inhibitors of 3-hydroxy-3-methylglutaryl-coenzyme A (HMG-CoA) reductase, have been shown to increase melanin synthesis, the exact mechanism of this action is not fully understood. In this study we investigated the possible involvement of intracellular $Ca^{2+}$ signal in the mechanism of stimulation of melanin synthesis induced by lovastatin in B16 cells. Lovastatin stimulated the production of melanin in a dose-dependent manner in the cells. Treatment with mevalonate, FPP and GGPP, precursors of cholesterol, did not significantly suppress the lovastatin-induced melanin production, suggesting that inhibition of cholesterol synthesis may not be involved in the mechanism of the action of lovastatin. In addition, lovastatin did not significantly alter the cAMP concentration and the stimulated production of melanin by lovastatin was not significantly changed by treatment with H89, a potent inhibitor of protein kinase A, which demonstrates that cAMP pathway may not be involved. However, lovastatin increased intracellular $Ca^{2+}$ concentration in a dose-related fashion. Treatment with EGTA, an extracellular $Ca^{2+}$ chelator did not significantly alter the lovastatin-induced intracellular $Ca^{2+}$ increase and melanin synthesis, whereas intracellular $Ca^{2+}$ reduction with BAPTA/AM and intracellular $Ca^{2+}$ release blockers (dantrolene and TMB-8) completely blunted these actions of lovastatin. Taken together, these results suggest that the intracellular $Ca^{2+}$ release may play an important role in the lovastatin-induced stimulation of melanin synthesis in B16 cells. These results further suggest that lovastatin may be useful for the treatment of hypopigmentation disorders, such as vitiligo.
Vu, Thom Thi;Dieterich, Peter;Vu, Thu Thi;Deussen, Andreas
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제23권5호
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pp.345-356
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2019
Docosahexaenoic acid (DHA), an omega-3-fatty acid, modulates multiple cellular functions. In this study, we addressed the effects of DHA on human umbilical vein endothelial cell calcium transient and endothelial nitric oxide synthase (eNOS) phosphorylation under control and adenosine triphosphate (ATP, $100{\mu}M$) stimulated conditions. Cells were treated for 48 h with DHA concentrations from 3 to $50{\mu}M$. Calcium transient was measured using the fluorescent dye Fura-2-AM and eNOS phosphorylation was addressed by western blot. DHA dose-dependently reduced the ATP stimulated $Ca^{2+}$-transient. This effect was preserved in the presence of BAPTA (10 and $20{\mu}M$) which chelated the intracellular calcium, but eliminated after withdrawal of extracellular calcium, application of 2-aminoethoxy-diphenylborane ($75{\mu}M$) to inhibit store-operated calcium channel or thapsigargin ($2{\mu}M$) to delete calcium store. In addition, DHA ($12{\mu}M$) increased ser1177/thr495 phosphorylation of eNOS under baseline conditions but had no significant effect on this ratio under conditions of ATP stimulation. In conclusion, DHA dose-dependently inhibited the ATP-induced calcium transient, probably via store-operated calcium channels. Furthermore, DHA changed eNOS phosphorylation suggesting activation of the enzyme. Hence, DHA may shift the regulation of eNOS away from a $Ca^{2+}$ activated mode to a preferentially controlled phosphorylation mode.
N형 칼슘전류의 비활성화 vs 전압곡선은 U형을 보인다 - 즉 칼슘 내향전류의 크기와 비활성화 정도가 어느 정도 일치한다. 이러한 U형 비활성화는 순수한 전압의존성 기전으로 설명되어져 왔으나 칼슘의존성 비활성화 기전 또한 보고되었다. 이 연구에서는 흰쥐 상행 경동맥 결절뉴론을 단일 세포로 얻은 후, whole cell patch clamp technique를 사용하여 N형 칼슘전류를 기록하고, 세포외액의 charge carrier 로서 바륨과 칼슘을 사용하면서, 칼슘이 N형 칼슘통로의 비활성화에 미치는 역할을 알아보았다. charge carrier 로 칼슘을 사용하였을 경우에 바륨을 사용하였을 때에 비하여 비활성화 정도가 증가하였으며 이러한 증가는 세포속 $Ca^{2+}$ Chelator가 11 mM EGTA 로부터 20 mM BAPTA 로 치환되어도 계속 관찰되었다. 비활성화 vs 전압 곡선은 바륨과 칼슘 모두에서 U형이었다. charge carrier 를 칼슘으로 치환시 추가로 유도되는 비활성화 정도는 바륨사용시의 비활성화 정도와 역비례관계를 보여 두 이온에서 같은 기전으로 비활성화가 일어날 가능성을 시사하였다. 이러한 가능성을 지원해 주는 결과로 5초의 긴 저분극 자극시 바륨과 칼슘을 써서 얻은 전류기록은 2중 지수함수로 잘 그려낼 수 있었고, 그 결과 빠른 성분(시정수: -150 ms) 과 느린 성분(시정수 -2500 ms) 를 얻었다. 칼슘이 각각의 성분에 미치는 효과는 각기 달라서 빠른 성분의 amplitude는 증가하였고 느린 성분의 시정수는 빨라졌다. 칼슘에 의해 빠른 성분의 amplitude는 증가하였으므로 이는 더 많은 채널이 빠른 경로로 비활성화되었음을 시사한다. 빠른 성분의 시정수는 변화하지 않았으므로, 이는 비촬성화의 빠른 경로는 칼슘과 바륨에서 같음을 시사하며 즉 비활성화 기전이 칼슘의존성이 아님을 보여주는 증거이다. 그러나 비활성화의 느린 성분은 칼슘에 의해 그 시정수가 빨라졌으므로 칼슘의존성일 가능성이 있다.
직경 $10{\mu}m$ 미만의 대기 미립자 물질(particulate matter, PM10)은 다양한 신체기관에서 산화 스트레스와 염증반응을 유발한다. 본 연구의 목적은 인간 표피 각질형성세포(HEK)에서 PM10에 의해 유도되는 반응성 산소종(ROS) 생성의 메커니즘을 알아보는 것이다. 배양된 HEK를 PM10에 노출시켰을 때 ROS가 증가하였으며, 이는 항산화제 apocynin에 의해 저해되었다. PM10에 의해 유도되는 ROS 생성에서 NADPH oxidase(NOX) family의 역할을 규명하기 위하여 이들의 mRNA 발현을 분석하였다. PM10은 NOX1, NOX2, dual oxidase (DUOX)1 및 DUOX2의 mRNA 발현을 증가시켰다. 다른 NOX들에 비교하여 DUOX1 및 DUOX2의 발현 수준이 높았으며, 이들 효소의 maturation factors, 즉 DUOXA1와 DUOXA2의 mRNA 발현도 PM10에 의하여 증가하였다. 칼슘 의존성 효소인 DUOX1과 DUOX2가 PM10에 의해 유도되는 ROS의 생성을 매개하는지 조사하였다. 선택적인 세포내 칼슘 킬레이터인 BAPTA-AM은 PM10 및 칼슘 ionophore A23187에 유도된 ROS 생성을 감소시켰다. 작은 간섭 RNA (siRNA)에 의한 DUOX2의 하향 조절은 PM10에 의해 유도된 ROS의 생성을 감소시켰고 DUOX1 siRNA는 영향이 없었다. PM10은 interleukin $(IL)-1{\beta}$, IL-6, IL-8 및 interferon $(IFN)-{\gamma}$ 등 사이토카인의 발현을 증가시켰다. siRNA에 의한 DUOX2의 하향 조절은 $IFN-{\gamma}$의 발현을 저해하였지만 다른 사이토카인의 발현은 저해하지 않았다. 본 연구는 PM10에 노출된 HEK의 ROS 생성 및 염증 반응에서 DUOX2가 중요한 역할을 함을 시사한다.
2,3,7,8-Tetrachlorodibenzo-p-dioxin(TCDD) has previously shown to induce neurotoxicity through intracellular $Ca^{2+}$ increase in rat neurons. In this study we investigated the role and signaling pathway of intracellular $Ca^{2+}$ in TCDD-induced inhibition of neuronal cell proliferation in SK-N-SH human neuronal cells. We found that TCDD(10nM) rapidly increased the level of intracellular $Ca^{2+}$, which was completely blocked by the extracellular $Ca^{2+}$ chelation with EGTA (1 mM) or by pretreatment of the cells with the non-selective cation channel blocker. flufenamic acid (200 ${\mu}M$). However, pretreatment of the cells with dantrolene (25 ${\mu}M$) and TMB-8(10 ${\mu}M$), intracellular $Ca^{2+}$-release blockers, or a voltage-sensitive $Ca^{2+}$ channel blocker, varapamil (100 ${\mu}M$), failed to block the TCDD-induced $Ca^{2+}$ increase in the cells. In addition, TCDD induced a rapid and transient activation of phatidvlinositol 3-kinase (PI3K) and extracellular signal-regulated kinase 1/2(ERK1/2), which was ingnificantly blocked by the pretreatment with BAPTA, an intracellular $Ca^{2+}$ chelator, and LY294002, a PI3K inhibitor. Furthermore, inhibitors of PI3K, ERK, or an intracellular $Ca^{2+}$ chelator further potentiated the anti-proliferative effect of TCDD in the cells. Collectively, the results suggest that intracellular $Ca^{2+}$ and PI3K-dependent activation of ERK 1/2 may be involved in the TCDD-induced inhibition of cell proliferation in SK-N-SH human neuronal cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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