To establish in vitro nodal culture conditions of Echinosophora koreensis Nakai, one of rare and endangered species famous for beautiful flowers in the Korean Peninsula, the influence of plant growth regulators (PGRs) on shooting and rooting from in vitro shoots was investigated. In shoot multiplication, addition of 6-benzylaminopurine (BA) to the half-strength Driver and Kuniyuki's media in the range of 2.22 to 8.88 ${\mu}M $induced 2.5 to 2.7 shoots per axillary bud; and addition of 2.27 ${\mu}M $ thidiazuron (TDZ) produced 3.2 shoots, during 4 weeks of culture, while zeatin and isopentenyl adenine (2ip) were not effective on shoot multiplication as observed from several combination treatments of BA with other PGRs. Shoots established were smaller than 2 cm in length, in most of the treatments. while in BA 8.88 ${\mu}M $ treatment more than 30% of shoots were longer than 2 cm and shorter than 4 cm. In rooting, naphthalene acetic acid (NAA) from 5.37 to 21.48 ${\mu}M $ showed the rooting rate from 40.0 to 62.5%. Indole butyric acid (IBA) addition had little effect on rooting (<10%), although some roots in IBA-containing media were longer than those in NAA. Micropropagation from axillary buds of nodular explants was applicable and promising to multiplication and conservation of Echinosophora koreensis Nakai.
Protocorms were newly formed from the culture of axillary buds, obtained in the seedlings of Dendrobium moniliforme in vitro. Its formation ratio was calculated to 43.7% on MS medium containing 1.0 mg/L BA. To test their survival ratio, we gradually increased the inoculation of transplant populations from single to more than three, and then found that the ratio in three populations went up as high as 95.2% rather than those of one or two. In bioreactor, explant obtained from the axillary bud grew well in lower concentration as 1/4 MS medium, while clearly grew slow in a little bit high concentration as 1/2 MS medium. We found that the explant of axillary bud, obtained from the Dendrobium moniliforme seedlings, would grow five times after culturing in a bioreactor for six weeks in 1/4 MS medium.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2020.12a
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pp.60-60
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2020
To establish in vitro axillary bud culture conditions of Echinosophora koreensis Nakai, one of Korean endemic endangered species famous for beautiful flowers, we tested the influence of plant growth regulators (PGRs) in shooting and rooting stage from in vitro plants. In shoot multiplication, addition of 6-benzylaminopurine (BA) to the media induced 2.5 to 3 shoots per bud during 4 weeks of culture. And media including 0.5 mg L-1 thidiazuron (TDZ) produced 3 to 4 shoots per bud. However, zeatin and isopentenyl adenine (2-ip) were not successful to increase shoot number, and the combination treatments of BA with other PGRs were also not effective. Shoots were smaller than 2 cm in length, in most of the treatments. In rooting, naphthalene acetic acid (NAA) treatments in the range of 0.5 to 4.0 mg L-1 appeared to increase rooting rate by 10% to 60% approximately when compared with the control but roots developed with callus clusters. Indole butyric acid (IBA) addition had little effect on rooting (below 10%), while some roots were longer than in NAA treatments and some shoots were longer on high IBA concentrations (4.0 to 8.0 mg L-1). It is suggested that micropropagation is a highly applicable and promising to multiplication and conservation of rare and endangered endemic species.
Kim, Ok-Tae;Bang, Kyong-Hwan;In, Dong-Soo;Kim, Tae-Soo;Seong, Nak-Sul;Cha, Seon-Woo;Ahn, Jun-Cheul;Hwang, Baik
Korean Journal of Medicinal Crop Science
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v.14
no.5
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pp.278-281
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2006
The effect of plant growth regulators was investigated on in vitro shoot proliferation from axillary bud explants of Hypericum erectum. To determine the optimal cytokinin for proliferation of axillay buds, we carried out screening four cytokinins (BA, kinetin, 2iP, TDZ). When nodal segments were cultured on MS medium supplemented with $4.5\;{\mu}M$ TDZ (thidiazuron), a number of shoots were induced. Our results indicated that the addition of TDZ to culture medium resulted in the induction of significantly more axillary buds than in the addition of other cytokinins. The optimal concentration of TDZ for proliferation of axillary buds was $10\;{\mu}M$. 92% of shoots spontaneously rooted without any plant growth regulator (PGR) and formed whole plantlets within one month. More than 95% of these regenerants survived and they did not show any detectable variation in morphology or growth characteristics compared to their donor plants.
This study was conducted to compare various culture methods and evaluate economic feasibility of each method for mass propagation of new ever-bearing strawberry 'Goha'. Four different methods such as semi-solid culture, solid culture, liquid suspension culture and bioreactor culture were compared. The solid culture and bioreactor culture showed the shortest and longest root length, such as 3.6 cm and 8.3 cm, respectively. Fresh weights of plants cultured in bioreactor were 2,261 mg, which were heavier than those of cultures. Dry weights of plants cultured in bioreactor were the heavier compared to those in other cultures. The number of axillary bud developed in bioreactor was seven, but axillary bud was not developed in other cultures. Production cost through bioreactor culture was calculated to be 303 won per plant which was 542 won less than that of solid culture. As a result, we found that the bioreactor culture was the most cost effective culture method for in vitro mass propagation in new ever-bearing strawberry 'Goha'.
Effective micropropagation was achieved by axillary bud culture from stool shoots of 15-year-old Betula platyphylla var. japonica. Shoot development and proliferation from the explants were successful on WPM supplemented with 0.5 or 1.0mg/l BAP. All the regenerated shoots rooted when transfered to GD medium containing 0.2mg/l IBA. After transplaning to soil more than 95% of the plantlets survived and showed normal growth. The results demonstrate that masspropagation of selected mature trees is feasible using tissue culture technique.
Stem and petiol explants of peony culture turned to brownish black soon after placing onto medium and degenerated to death. Disroloration was caused mainly by ferrous and calcium cloride. Nitrate was a main factor for the death of culture. The culture damage was increased with the increment of the medium salt strength. A few latent axillary buds were elongated to shoots without forming callus.
Kim, Tae-Dong;Kim, Ji-Ah;Lee, Na-Nyum;Choi, Chang-Ho
Journal of Plant Biotechnology
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v.47
no.1
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pp.40-45
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2020
An efficient protocol for multiple shoot induction and plant regeneration from axillary bud culture of Magnolia 'Vulcan' was developed in the present study. Primary shoots were obtained from axillary bud explants cultured on Murashige and Skoog (MS) medium containing 1.0 mg/L 6-benzylaminopurine (BA). To induce multiple shoots effectively, primary shoot tips were cultured on MS medium supplemented with different concentrations of BA and zeatin at 0, 0.2, 0.5, and 1.0 mg/L. Of these treatments, the MS medium with 0.5 mg/L BA resulted in the highest number of shoots per explant with an average value of 5.9, and it produced the greatest shoot height at 4.8 cm after 12 weeks of culturing. In the rooting of in vitro produced shoots, the greatest percentage of explants forming roots (91.3%), number of roots per explant (9.7), and root length (2.8 cm) were obtained in half-strength MS medium supplemented with 6.0 mg/L indole-3-butyric acid (IBA). Regenerated plantlets were successfully acclimatized and hardened off inside the culture room with 87.5% survival rate. Plants were transferred to a greenhouse with a 97.2% survival rate. The highly efficient shoot multiplication and plant regeneration system reported herein can be used for large-scale clonal propagation of valuable Magnolia species or cultivars.
An efficient micropropagation was established by using axillary bud explants from two-year-old tree(Echinosphorea koreensis Nakai), which has been known as a rare and endangered species. Among various basal media tested, DKW medium was shown to be the best for axillary shoot elongation. The addition of both BA and TDZ to the medium induced 6 to 10 shoots per explant during eight weeks of culture, without showing any abnormal morphology at the shoot proliferation stage. However, high concentration of TDZ(>0.05 mg/L) appeared to cause hyperhydration on either leaf or shoot at the later developmental stage. Approximately 20% of shoots produced roots by the addition of 1.0 mg/L NAA but not by IBA($0.2{\sim}1.0$ mg/L). Ex vitro micro-cuttings were better source for root induction; up to 58.6% of the micro-cuttings rooted when 100 mg/L IBA was applied to the soil(vermiculite). More than 90% of plantlets with roots were successfully acclimatized and grew normally in the field. Therefore, we suggest that this endangered tree species can be effectively micropropagated by axillary bud culture system developed in this study.
The hormonal requirement suiting micropropagation of Morus alba during any season throughout the year was studied. Sprouting frequency from axillary buds of M. alba was greatly influenced by the time of explant collection, the highest value was achieved when nodal explants were collected at the end of bud dormancy period (late in March) and cultured on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with low concentration (0.5 mg/L) of BAP, kinetin or IBA (85-68%). In addition, they showed higher axillary bud sprouting on growth-regulators-free medium (49%) than others collected in autumn or winter and cultured on medium supplemented with various growth regulators (47-48%). Regardless of that period, young explants with greenish buds collected in summer exhibiting high sprouting frequency (66%) on MS medium supplemented with 0.5 mg/L kinetin and 0.5 mg/L GA3. Shoot multiplication via adventitious bud formation was achieved when the nodal explants were cultured on MS medium supplemented with 2 mg/L BAP and 0.2 mg/L IBA. Further multiplication via nodal explants of in vitro grown shoots was obtained on MS medium supplemented with 0.5 mglL BAP and 0.5 mg/L GA3. While half strength MS medium supplemented with low concentration (0.5 mg/L) of IBA, IAA or 2,4-D stimulated adventitious root formation, IBA was the best. After transfer the plantlets to the soil, acclimatization for three weeks was essential prerequisite for survival in high frequency (92%). Peroxidase activity is related to break of bud dormancy where maximum enzyme activity was detected when the lateral buds were induced to commence growth under field condition (early in spring) or in vitro.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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