The aim of this study was to detect the efficiency of arsenic trioxide (ATO) alone or together with bortezomib to inhibit proliferation and induce apoptosis in a multiple myeloma (MM) RPMI 8266 cells. Mechanisms of action were also investigated. RPMI 8266 cells were treated with ATO alone and in combination with bortezomib for 24 hours, and cell viability was assessed by modified MTT. Annexin V-F1TC and PI staining was used to detect the apoptosis rate and cell cycling was investigated by flow cytometry, along with expression of cell surface death receptor-4(DR4) and death receptor-5 (DR5). Western blotting was applied to detect the expression of bcl-2, caspase-3, caspase-8, and caspase-9. As a result, the ATO combined with bortezomib group showed more inhibition of RPMI 8266 cell viability than theATO group. Expression of DR4 and DR5 on the cell surfaces, and the apoptosis rate were increased after treatment by ATO alone or combined with bortezomib. The cells appeared to arrest in G2/M phase after treatment. Expression of bcl-2 was more significantly decreased in the combination group, and that of caspase-3, caspase-8 and caspase-9 was significantly increased as well. Therefore, bortezomib can enhance ATO actions to induce apoptosis in RPMI 8266 cells, with decrease in expression of bcl-2 and increase of caspase-3, caspase-8 and caspase-9 proteins.
It has been well documented that transient forebrain global ischemia causes selective neuronal degeneration in hippocampal CA1 pyramidal neurons with a delay of a few days. The mechanism of this delayed hippocampal CA1 pyramidal neuronal death (DND) is still controversial. To delineate the mechanisms of the DND, the effects of treatment with MK-801, an NMDA receptor antagonist, kynurenic acid, a NMDA/non-NMDA receptor antagonist, and/or cycloheximide, a protein synthesis inhibitor, on the DND were investigated in male Wistar rats. To examine the participation of apoptotic neuronal death in the DND, TUNEL staining was performed in ischemic brain section. Global ischemia was induced by 4-vessel occlusion for 20 min. All animals in this study showed the DND 3 and 7 days after the ischemic insult. The DND that occured 3 days and 7 days after the ischemia were not affected by pretreatment with MK-801 (1 mg/kg), but markedly attenuated by the pretreatment with kynurenic acid (500 mg/kg). Treatment with cycloheximide (1 mg/kg) also markedly inhibited the DND. The magnitudes of attenuation by the two drugs were similar. The magnitude of attenuation by co-treatments with kynurenic acid and cycloheximide was not greater than that with any single treatment. TUNEL staining was negative in the sections obtained 1 or 2 days after the ischemic insults, but it was positive at hippocampal CA1 pyramidal cells in sections collected 3 days after the ischemia. These results suggested that the DND should be mediated by the activation of non-NMDA receptor, not by the activation of NMDA receptor and that the activation of AMPA receptor should induce the apoptotic process in the DND.
Hwang, Eun Young;Jeong, Mi Suk;Sung, Minkyung;Jang, Se Bok
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.34
no.4
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pp.1089-1095
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2013
The tumor necrosis factor-receptor 1 (TNFR1)-associated death domain protein (TRADD) contains an N-terminal TRAF binding domain and a C-terminal death domain. TRADD is known to interact directly with TNF receptor 2 (TNFR2) and the Fas-associated death domain protein (FADD), which are signal transducers that activate NF-${\kappa}B$ and induce apoptosis, respectively. To date, there has been no structural information on the TRADD and FADD death domain (DDs) complex. In this study, the death domains of TRADD and FADD were co-expressed and purified from Escherichia coli for structural characterization. We found that human TRADD (hTRADD) interacted strongly with mouse FADD (mFADD) via their DDs and interacted weakly with human FADD (hFADD)-DD. Moreover, the structures of the TRADD-DD:FADD-DD complexes were separately modeled from predicted structures in the protein data bank (PDB). The results of this study will have important applications in human diseases such as cancer, AIDS, degenerative and autoimmune diseases, and infectious diseases.
Transient receptor potential melastatin 7 (TRPM7) channels are novel $Ca^{2+}$-permeable non-selective cation channels that are ubiquitously expressed. Activation of TRPM7 channels has been shown to be involved in the survival of gastric cancer cells. Here we show evidence suggesting that TRPM7 channels play an important role in $Zn^{2+}$- mediated cellular injury. Using a combination of electrophysiology, pharmacological analysis, small interfering RNA (siRNA) methods and cell death assays, we showed that activation of TRPM7 channels augmented $Zn^{2+}$-induced apoptosis of AGS cells, the most common human gastric adenocarcinoma cell line. The $Zn^{2+}$-mediated cytotoxicity was inhibited by the non-specific TRPM7 blockers $Gd^{3+}$ or 2 aminoethoxydiphenyl borate (2-APB) and TRPM7 specific siRNA. In addition, we showed that overexpression of TRPM7 channels in HEK293 cells increased $Zn^{2+}$- induced cell injury. Thus, TRPM7 channels may represent a novel target for physiological disorders where $Zn^{2+}$ toxicity plays an important role.
Curcumin a yellow pigment from Curcuma Tonga, has been known to possess antioxidative and anticarcinogenic properties, as well as to induce apoptosis in some cancer cells. There have been, however, several contradictory reports that hypothesized curcumin (a hydrophobic molecule) can bind a membrane Gpid bilayer and induce nonspecific cytotoxicity in some cell lines. Why curcumin shows these contradictory effects is unknown. In A-431 cells, growth inhibition by curcumin is due mostly to the specific inhibition of the intrinsic tyrosine kinase activity of the epidermal growth factor receptor, as reported earlier by Korutla et al. Thus, we assumed that the cell death of A-431 by curcumin might be due to the specific induction of apoptosis. In this paper we clearly show that curcumin induces apoptosis in A-431 cells. The cureumin-induced cell death of A-431 exhibited various apoptotic features, including DNA fragmentation and nuclear condensation. Furthermore, the curcumin-induced apoptosis of A-431 cells involved activation of caspase-3-like cysteine protease. Involvement of caspase-3 was further confirmed by using a caspase-3 specific inhibitor, DEVD-CHO. In another study, decreased nitric oxide (NO) production was also shown in A-431 cells treated with curcumin, which seems to be the result of the inhibition of the iNOS expression by curcumin, as in other cell lines. However, 24 h after treatment of curcumin there was increased NO production in A-431 cells. This observation has not yet been clearly explained. We assumed that the increased NO production may be related to denitrosylation of the enzyme catalytic site in caspase-3 when activated. Taken together, this study shows that the cell death of A-431 by curcumin is due to the induction of apoptosis, which involves caspase-3 activation.
Po, Wah Wah;Thein, Wynn;Khin, Phyu Phyu;Khing, Tin Myo;Han, Khin Wah Wah;Park, Chan Hee;Sohn, Uy Dong
Biomolecules & Therapeutics
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v.28
no.2
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pp.202-210
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2020
Fluoxetine is used widely as an antidepressant for the treatment of cancer-related depression, but has been reported to also have anti-cancer activity. In this study, we investigated the cytotoxicity of fluoxetine to human gastric adenocarcinoma cells; as shown by the MTT assay, fluoxetine induced cell death. Subsequently, cells were treated with 10 or 20 µM fluoxetine for 24 h and analyzed. Apoptosis was confirmed by the increased number of early apoptotic cells, shown by Annexin V- propidium iodide staining. Nuclear condensation was visualized by DAPI staining. A significant increase in the expression of cleaved PARP was observed by western blotting. The pan-caspase inhibitor Z-VAD-FMK was used to detect the extent of caspase-dependent cell death. The induction of autophagy was determined by the formation of acidic vesicular organelles (AVOs), which was visualized by acridine orange staining, and the increased expression of autophagy markers, such as LC3B, Beclin 1, and p62/SQSTM 1, observed by western blotting. The expression of upstream proteins, such as p-Akt and p-mTOR, were decreased. Autophagic degradation was evaluated by using bafilomycin, an inhibitor of late-stage autophagy. Bafilomycin did not significantly enhance LC3B expression induced by fluoxetine, which suggested autophagic degradation was impaired. In addition, the co-administration of the autophagy inhibitor 3-methyladenine and fluoxetine significantly increased fluoxetine-induced apoptosis, with decreased p-Akt and markedly increased death receptor 4 and 5 expression. Our results suggested that fluoxetine simultaneously induced both protective autophagy and apoptosis and that the inhibition of autophagy enhanced fluoxetine-induced apoptosis through increased death receptor expression.
Tumor necrosis factor ($TNF-{\alpha}$), an inflammatory cytokine that plays an important role in the control of cell proliferation, differentiation, and apoptosis, has previously been used in anti-cancer therapy. However, the therapeutic applications of $TNF-{\alpha}$ are largely limited due to its general toxicity and anti-apoptotic influence. To overcome this problem, the present study focused on the effect of active constituents isolated from a medicinal plant on $TNF-{\alpha}$-induced apoptosis in human colon adenocarcinoma (HT-29) cells. Nimbolide from Azadirachta indica was evaluated for cytotoxicity by methyl tetrazolium 3-[4,5-dimethylthiazol-2-yl]-2, 5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) assay and phase contrast microscopy. Effects on apoptotic signaling proteins were investigated using Western blot analysis. Nimbolide showed cytotoxicity against HT-29 cells that was significantly different from the control group (p<0.01), a concentration of $10{\mu}M$ significantly inducing cell death (p<0.01). In combination with $TNF-{\alpha}$, nimbolide significantly enhanced-induced cell death. In apoptotic pathway, nimbolide activated c-Jun N-terminal kinase (JNK) phosphorylation, BH3 interacting-domain death agonist (Bid) and up-regulated the death receptor 5 (DR5) level. In the combination group, nimbolide markedly sensitized $TNF-{\alpha}$-induced JNK, Bid, caspase-3 activation and the up-regulation of DR5. Our findings overall indicate that nimbolide may enhance $TNF-{\alpha}$-mediated cellular proliferation inhibition through increasing cell apoptosis of HT-29 cells by up-reglation of DR5 expression via the JNK pathway.
Kang, Kyeong-Rok;Kim, Jae-Sung;Lim, HyangI;Seo, Jeong-Yeon;Park, Jong-Hyun;Chun, Hong Sung;Yu, Sun-Kyoung;Kim, Heung-Joong;Kim, Chun Sung;Kim, Do Kyung
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.26
no.6
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pp.447-456
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2022
The present study was carried out to investigate the effect of Arctigenin on cell growth and the mechanism of cell death elicited by Arctigenin were examined in FaDu human pharyngeal carcinoma cells. To determine the apoptotic activity of Arctigenin in FaDu human pharyngeal carcinoma cells, cell viability assay, DAPI staining, caspase activation analysis, and immunoblotting were performed. Arctigenin inhibited the growth of cells in a dose-dependent manner and induced nuclear condensation and fragmentation. Arctigenin-treated cells showed caspase-3/7 activation and increased apoptosis versus control cells. FasL, a death ligand associated with extrinsic apoptotic signaling pathways, was up-regulated by Arctigenin treatment. Moreover, caspase-8, a part of the extrinsic apoptotic pathway, was activated by Arctigenin treatments. Expressions of anti-apoptotic factors such as Bcl-2 and Bcl-xL, components of the mitochondria-dependent intrinsic apoptosis pathway, significantly decreased following Arctigenin treatment. The expressions of pro-apoptotic factors such as BAX, BAD and caspase-9, and tumor suppressor -53 increased by Arctigenin treatments. In addition, Arctigenin activated caspase-3 and poly (ADP-ribose) polymerase (PARP) induced cell death. Arctigenin also inhibited the proliferation of FaDu cells by the suppression of p38, NF-κB, and Akt signaling pathways. These results suggest that Arctigenin may inhibit cell proliferation and induce apoptotic cell death in FaDu human pharyngeal carcinoma cells through both the mitochondria-mediated intrinsic pathway and the death receptor-mediated extrinsic pathway.
Membrane-anchored full-length MET stimulated by its ligand HGF/SF induces various biological responses, including survival, growth, and invasion. This panel of responses, referred to invasive growth, is required for embryogenesis and tissue regeneration in adults. On the contrary, MET deregulation is associated with tumorigenesis in many kinds of cancer. In addition to its well-documented ligand-stimulated downstream signaling, the receptor can be cleaved by proteases such as secretases, caspases, and calpains. These cleavages are involved either in MET receptor inactivation or, more interestingly, in generating active fragments that can modify cell fate. For instance, MET fragments can promote cell death or invasion. Given a large number of proteases capable of cleaving MET, this receptor appears as a prototype of proteolytic-cleavage-regulated receptor tyrosine kinase. In this review, we describe and discuss the mechanisms and consequences, both physiological and pathological, of MET proteolytic cleavages.
Park, Cheol;Jin, Cheng-Yun;Choi, Tae Hyun;Hong, Su Hyun;Choi, Yung Hyun
Journal of Life Science
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v.23
no.9
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pp.1118-1125
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2013
Naringenin, a naturally occurring citrus flavonone, is a potentially valuable candidate for cancer chemotherapy. However, the cellular and molecular mechanisms responsible for its anticancer activity are largely unknown. In the present study, we attempted to elucidate the mechanisms responsible for naringenin-induced apoptosis in human leukemic U937 cells. We found that naringenin markedly inhibited the growth of U937 cells by decreasing cell proliferation and inducing apoptosis, which was associated with the activation of caspases. A pan-caspase inhibitor, z-VAD-fmk, significantly inhibited naringenin-induced U937 cell apoptosis, indicating that caspases are key regulators of apoptosis in response to naringenin in U937 cells. Although the levels of antiapoptotic Bcl-2 and proapoptotic Bax proteins remained unchanged in naringenin-treated U937 cells, Bcl-2 overexpression attenuated naringenin-induced apoptosis. Furthermore, combined treatment with naringenin and HA14-1, a small-molecule Bcl-2 inhibitor, effectively increased the apoptosis through enhancement of XIAP down-regulation, Bid cleavage, and caspase activation, suggesting that the synergistic effect was at least partially mediated through the death receptor-mediated apoptosis pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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