근채류식물의 근부원인이 되는 토양유래의 식물병원 성진균에 대한 생물학적 방제를 위하여 저병해인삼경작 지토양으로부터 식물근부균 Fusarium solani의 생육을 강력히 길항하는 억제세균 YPL-1을 분리, 선발하였으며 이들 동정한 결과 Pseudomonas stutzeri이거나 그 근연종으로 확인하였다. 선발된 P.stutzeri YPL-1에 의해 생산된 근부균생육억제물질은 열에 민감하고 고분자의 단백질물질로서 chitinase 및 laminarinase 등 F.solani의 외막가수분해효소인 것으로 추정된다. 더욱이 chitinase 생산능과 근부균생육억제능은 정관계로 비례한다는 것도 알았다. 이는 NTG를 이용하여 얻은 chitinase 및 laminarinase 생산불능변이주 P.stutzeri YPL-M122(chi-, lam-), P.stutzeri YPL-M153(chi-)에 의해서도 확인되었다. 그러나 본 P.stutzeri YPL-1은 siderophore를 전혀 생산하지는 못하였다. 이 결과로 미루어 보아 선발된 억제균 P.stutzeri YPL-1 균주에 의한 식물근부균 F.solani의 생육억제기작은 저분자물질인 항생물질이나 siderophore가 아닌 chitinase를 주로 하는 외막가수분해효소에 의한 근부균 F.solani의 세포벽분해에 기인된 것으로 생각된다.
Background: Fusarium oxysporum (F. oxysporum) is the primary pathogenic fungus that causes Panax notoginseng (P. notoginseng) root rot disease. To control the disease, safe and efficient antifungal pesticides must currently be developed. Methods: In this study, we prepared and characterized a nanoemulsion of Foeniculum vulgare essential oil (Ne-FvEO) using ultrasonic technology and evaluated its stability. Traditional Foeniculum vulgare essential oil (T-FvEO) was prepared simultaneously with 1/1000 Tween-80 and 20/1000 dimethyl sulfoxide (DMSO). The effects and inhibitory mechanism of Ne-FvEO and T-FvEO in F. oxysporum were investigated through combined transcriptome and metabolome analyses. Results: Results showed that the minimum inhibitory concentration (MIC) of Ne-FvEO decreased from 3.65 mg/mL to 0.35 mg/mL, and its bioavailability increased by 10-fold. The results of gas chromatography/mass spectrometry (GC/MS) showed that T-FvEO did not contain a high content of estragole compared to Foeniculum vulgare essential oil (FvEO) and Ne-FvEO. Combined metabolome and transcriptome analysis showed that both emulsions inhibited the growth and development of F. oxysporum through the synthesis of the cell wall and cell membrane, energy metabolism, and genetic information of F. oxysporum mycelium. Ne-FvEO also inhibited the expression of 2-oxoglutarate dehydrogenase and isocitrate dehydrogenase and reduced the content of 2-oxoglutarate, which inhibited the germination of spores. Conclusion: Our findings suggest that Ne-FvEO effectively inhibited the growth of F. oxysporum in P. notoginseng in vivo. The findings contribute to our comprehension of the antifungal mechanism of essential oils (EOs) and lay the groundwork for the creation of plant-derived antifungal medicines.
In the present study, we determined the antifungal effect of obacunone isolated from Phellodendri Cortex against Candida ablicans, a pathogenic fungus. The antifungal effect was analyzed by an in-vitro susceptibility test and in a murine model of disseminated candidiasis. Possible mechanism of the antifungal activity was also examined. Analyses of data resulting from the susceptibility test revealed that the compound inhibited C. albicans growth. At 25 ${\mu}g$ obacunone/ml, there was app. 45% reduction of CFUs (colony forming units) as compared to obacunone-untreated C. albicans yeast cells (P<0.01). In the murine model of disseminated candidiasis due to C. albicans, obacunone enhanced resistance of mice against disseminated candidiasis. During an entire period of 30-day observation, control animals all died within 14 days, whereas 60% of obacunone-treated mice survived (P<0.05). In addition, obacunone inhibited the hyphal production, a major virulence factor of C. albicans, from the blastoconidial form. Thus, obacunone appears to have antifungal activity for C. albicans infection. This may possibly be mediated by the blockage of hyphal production.
Honokiol, a bioactive compound isolated from the cone and bark of Magnolia officinalis, has been shown to have various activities including inhibition of the growth of Candida albicans. We investigated the roles of the Hsp90-calcineurin pathway in the antifungal activity of honokiol. The pharmacologic tool was employed to evaluate the effects of Hsp90 and calcineurin in the antifungal activity of honokiol. We also evaluated the protective effects of the calcineurin inhibitor cyclosporin A (CsA) on honokiol-induced mitochondrial dysfunction by the fluorescence staining method. The Hsp90 inhibitor potentiated the antifungal activity of honokiol. A C. albicans strain with the calcineurin gene deleted displayed enhanced sensitivity to honokiol. However, co-treatment with calcineurin inhibitor CsA attenuated the cytotoxic activity of honokiol due to the protective effect on mitochondria. Our results provide insight into the action mechanism of honokiol.
The antifungal mechanism of the antifungal peptide against Aspergillus fumigatus, $K^{18,19}$-CA(l-8)-ME(l-12), derived from cecropin A(l-8)-melittin(l-12) was investigated by confocal laser scanning microscopy, cell wall regeneration, ATPase activity inhibition, and released potassium ion. By confocal laser scanning microscopy, $K^{18,19}$-CA(l-8)-ME(l-12) was detected on the surface of A. fumigatus, while cecropin A used as a negative control peptide was not detected. The protoplast of A. fumigatus treated with$K^{18,19}$-CA(1-8)-ME(1-12) failed to regenerate the fungal cell walls. Compared with cecropin A, the amount of potassium ion released by $K^{18,19}$-CA(l-8)-ME(l-12) was increased. Furthermore, $K^{18,19}$-CA(l-8)-ME(l-12) inhibited the ATPase activity on the plasma membrane. These results suggested that $K^{18,19}$-CA(l-8)-ME(1-12) acts on the plasma membrane of A. fumigatus and its antifungal action is due to the ion channel or pore formation on the plasma membrane.
Lee, Sol;Nam, Miyoung;Lee, Ah-Reum;Baek, Seung-Tae;Kim, Min Jung;Kim, Ju Seong;Kong, Andrew Hyunsoo;Lee, Minho;Lee, Sook-Jeong;Kim, Seon-Young;Kim, Dong-Uk;Hoe, Kwang-Lae
Genomics & Informatics
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제19권4호
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pp.39.1-39.8
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2021
Tamoxifen (TAM) is an anticancer drug used to treat estrogen receptor (ER)-positive breast cancer. However, its ER-independent cytotoxic and antifungal activities have prompted debates on its mechanism of action. To achieve a better understanding of the ER-independent antifungal action mechanisms of TAM, we systematically identified TAM-sensitive genes through microarray screening of the heterozygous gene deletion library in fission yeast (Schizosaccharomyces pombe). Secondary confirmation was followed by a spotting assay, finally yielding 13 TAM-sensitive genes under the drug-induced haploinsufficient condition. For these 13 TAM-sensitive genes, we conducted a comparative analysis of their Gene Ontology (GO) 'biological process' terms identified from other genome-wide screenings of the budding yeast deletion library and the MCF7 breast cancer cell line. Several TAM-sensitive genes overlapped between the yeast strains and MCF7 in GO terms including 'cell cycle' (cdc2, rik1, pas1, and leo1), 'signaling' (sck2, oga1, and cki3), and 'vesicle-mediated transport' (SPCC126.08c, vps54, sec72, and tvp15), suggesting their roles in the ER-independent cytotoxic effects of TAM. We recently reported that the cki3 gene with the 'signaling' GO term was related to the ER-independent antifungal action mechanisms of TAM in yeast. In this study, we report that haploinsufficiency of the essential vps54 gene, which encodes the GARP complex subunit, significantly aggravated TAM sensitivity and led to an enlarged vesicle structure in comparison with the SP286 control strain. These results strongly suggest that the vesicle-mediated transport process might be another action mechanism of the ER-independent antifungal or cytotoxic effects of TAM.
A potential biocontrol bacterium, YB-70 was isolated from a rhizosphere in suppressive soil and identified as a strain of Bacillus subtilis. In several biochemical and in vitro antibiosis tests on Fusarium solani with the culture filterates from B. subtilis YB-70, we found that antifungal mechanism of B. subtilis YB-70 was mediated by antibiotic substances produced from the bacterium. These antifungal substances were appeared to be hear-resistant, micromolecular, and ethy alcohol soluble. Antifungal agents produced by B. subtilis YB-70 showed strong inhibified against root-rotting fungi F. solani in in vivo pot test. An antifungal substance. YBS-1s, was purified from the culture broth of B. subtilis YB-70 by isoelectronic precipitation, silica gel column chromatography and Sephadex LH-20 column chromatography analysis by Fab-MASS, $^{1}$H-NMR, $^{13}$C-NMR, DEPT, and amino acid analyzer revealed that the YBS-1A was a peptide antibiotics of iturin class containing seven amino acids from five different groups, and the other(YBS-1B) was an analogue of iturin group composed of 11 amino acids with larher molecular weight of about 1, 500 dalton, which was lager than that of iturin A.
The aim of the present study was to evaluate the effects of two well-known natural antioxidants, vitamin C (VC) and vitamin E (VE), on the antifungal activity of honokiol against Candida albicans. The broth microdilution method was employed to test the antifungal activities of honokiol with or without antioxidants in the medium against C. albicans strain. Intracellular reactive oxygen species and lipid peroxidation were determined by fluorescence staining assay. Mitochondrial dysfunction was assessed by detecting the mitochondrial DNA and the mitochondrial membrane potential. We observed that VC could significantly potentiate the antifungal activities of honokiol while VE reduced the effectiveness of honokiol against C. albicans. In addition, VC accelerated honokiol-induced mitochondrial dysfunction and inhibited glycolysis leading to a decrease in cellular ATP. However, VE could protect against mitochondrial membrane lipid peroxidation and rescue mitochondrial function after honokiol treatment. Our research provides new insight into the understanding of the action mechanism of honokiol and VC combination against C. albicans.
The antifungal activity of fisetin against Candida albicans is explored, elucidating a mechanism centered on membrane permeabilization and ensuing disruption of pH homeostasis. The Minimum Inhibitory Concentration (MIC) of fisetin, indicative of its interaction with the fungal membrane, increases in the presence of ergosterol. Hoechst 33342 and propidium-iodide staining reveal substantial propidium-iodide accumulation in fisetin-treated C. albicans cells at their MIC, with crystal violet uptake assays confirming fisetin-induced membrane permeabilization. Leakage analysis demonstrates a significant release of DNA and proteins in fisetin-treated cells compared to controls, underscoring the antifungal effect through membrane disruption. Green fluorescence, evident in both the cytoplasm and vacuoles of fisetin-treated cells under BCECF, AM staining, stands in contrast to controls where only acidic vacuoles exhibit staining. Ratiometric pH measurements using BCECF, AM reveal a noteworthy reduction in intracellular pH in fisetin-treated cells, emphasizing its impact on pH homeostasis. DiBAC4(3) uptake assays demonstrate membrane hyperpolarization in fisetintreated cells, suggesting potential disruptions in ion flux and cellular homeostasis. These results provide comprehensive insights into the antifungal mechanisms of fisetin, positioning it as a promising therapeutic agent against Candida infections.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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