CD99 is known to be involved in the regulation of cell-cell adhesion. However, it remains unclear whether CD99 controls cell-extracellular matrix adhesion. In this study, the effects of CD99 activation on cell-extracellular matrix adhesion were investigated. It was found that engagement of CD99 with the stimulating antibody YG32 downregulated the adhesion of MCF-7 cells to fibronectin, laminin and collagen IV in a dose-dependent manner. The CD99 effect on cell-ECM adhesion was inhibited by overexpression of the dominant negative form of CD99 or CD99 siRNA transfection. Treatment of cells with $Mn^{2+}$ or by ${\beta}_1$ integrin-stimulating antibody restored the inhibitory effect of CD99 on cell-ECM adhesion. Cross-linking CD99 inactivated ${\beta}_1$ integrin through conformational change. CD99 activation caused dephosphorylation at Tyr-397 in FAK, which was restored by the ${\beta}_1$ stimulating antibody. Taken together, these results provide the first evidence that CD99 inhibits cell-extracellular matrix adhesion by suppressing ${\beta}_1$ integrin affinity.
The tetradecameric peptide (K47-K60) near the NH$_2$-terminal region of epithelial-cell adhesion molecule (Ep-CAM) was chosen as antigenic site and a polyclonal antibody was generated, which could recognize Ep-CAM from the mouse colon tissue or the colon cancer cell, CT-26, in Western blot analysis. Then, the fluorescein isothiocyanate (FITC), a fluorescence dye, was conjugated with the affinity purified Ep-CAM antibody using thiocyanate and the amino groups of FITC and antibody, respectively. The molar ratio of FITC to antibody was estimated approximately 1.86 to 1.00 by measuring the optical densities at 492 nm and 280 nm. Ep-CAM antibody-FITC conjugate was then used for immunohistochemistry of the CT-26 cells. Judging from the shapes formed by fluorescence, the Ep-CAM antibody could delivered FITC to the surface of cells in which Ep-CAM was expressed. This result implies that Ep-CAM antibody could be also used for the tissue-specific delivery of the photosensitizer to the target protein via antigen-antibody interaction.
The polyclonal antibody was generated against the peptide fragment of 62 amino acid residues (D 181-T242) near the COOH-terminal region of the extracellular domain of epithelial-cell adhesion molecule (Ep-CAM) and shown to be able to recognize Ep-CAM in competitive ELISA. Then, sulforhodamine 101 acid chloride (so called Texas red), a fluorescence dye, was conjugated to the affinity-purified anti-Ep-CAM antibody utilizing the reaction between the aliphatic amines of antibody and the sulfonyl chloride of Texas red. The molar ratio of Texas red to antibody was estimated to be approximately 1.86 by measuring optical densities at 280 nm and 596 nm, implying that the two molecules of Texas red at most were conjugated to antibody. The anti-Ep-CAM antibody-Texas red conjugate was then used for immunohistochemistry of CT-26 murine colon carcinoma cells. Based upon the fluorescence microscope images, anti-Ep-CAM antibody is able to deliver Texas red specifically to the surface of CT-26 cells on which Ep-CAM was actively expressed. This result indicates that anti-Ep-CAM antibody could be useful for the tissue-specific delivery of photosensitizers via antigen-antibody interaction.
CD29 $({\beta}1-integrins)$ is one of major adhesion molecules involved in regulating cell adhesion, migration and morphological changes. In this study, we investigated the regulatory role of CD29 in monocytic functions using monocytic cell line U937 cells. CD29 was found to be one of highly expressed membrane proteins in U937 cells, according to flow cytometric analysis. The activation of CD29 by agonistic antibody MEM101A and extracellular matrix protein (ECM) fibronectin strongly induced cell-cell and cell-fibronectin adhesions. However, blocking antibodies to CD98 and CD147 showed different inhibitory features in these two adhesion events. Furthermore, U0126, an ERK inhibitor, only blocked cell-cell adhesion but not cell-fibronectin adhesion, indicating that cell-cell or cell-fibronectin adhesion events may be regulated by different molecular mechanisms. Meanwhile, CD29 activation also enhanced ROS generation but not phagocytic ability, and similarly radical scavenger N-acetyl-L-cysteine strongly blocked CD29-mediated cell-cell adhesion, implying that ROS may play a critical role in up-regulating cell-cell adhesion. Therefore, our data suggest that the activation of CD29 may be critically involved in regulating monocytic cell-mediated cell-cell adhesion and ROS generation.
Cell-cell adhesion managed by various adhesion molecules plays an important role in regulating functional activation of cells. This event mediates attachment of inflammatory cells to endothelial cells, interaction of antigen-presenting cells with T cells and metastatic adherence of cancer cells to epithelial tissue cells. Therefore, this cellular response is considered as one of therapeutic target to treat various cancers and inflammatory diseases. To develop proper model for evaluation of functional activation of adhesion molecules, the ability of U937 and Jurkat T cells responsive to various adhesion inducers such as phorbal-12-myristate-13-acetate (PMA), staurosporin and monoclonal antibodies to CD29, CD43 and CD98 was investigated using quantitative cell-cell adhesion assay. U937 cells made more cell-cell clusters by the treatment of antibodies to CD29 and CD43 than Jurkat T cells, while Jurkat T cells exhibited increased cell-cell adhesion ability in CD98 antibody treatment. In agreement, the surface levels of CD29 and CD98 were highly observed in U937 and Jurkat T cells, respectively. Therefore, our data suggest that Jurkat T and U937 cells can be used for model system to evaluate functional activation of adhesion molecules such as CD29 and CD98.
A chimeric gene encoding enhanced green fluorescent protein (EGFP) and a S-layer protein from Lactobacillus brevis KCTC3102, and/or two copies of the Fe-binding Z-domain, a synthetic analog of the B-domain of protein A, was constructed and expressed in Escherichia coli BL21(DE3). The S-layer fusion proteins produced in a 500-1 fermentor were likely to be stable in the range of pH 5 to 8 and $0^{\circ}C$ to $40^{\circ}C$. Their adhesive property enabled an easy and rapid immobilization of enzymes or antibodies on solid materials such as plastics, glass, sol-gel films, and intestinal epithelial cells. Owing to their affinity towards intestinal cells and immunoglobulin G, the S-layer fusion proteins enabled the adhesion of antibodies to human epithelial cells. In addition, feeding a mixture of the S-layer fusion proteins and antibodies against neonatal calf diarrhea (coronavirus, rotavirus, Escherichia coli, and Salmonella typhimurium) to Hanwoo calves resulted in 100% prevention of neonatal calf diarrhea syndrome (p<0.01), whereas feeding antibodies only resulted in 56% prevention.
Background : Activation of neutrophil is critical for the clearance of microorganisms and toxic host mediators during sepsis. Unfortunately the activated neutrophil and its toxic byproducts can produce tissue injury and organ dysfunction. The leucocyte CD11/18 adhesion complex regulates neutrophil-endothelial cell adhesion, the first step in neutrophil migration to sites of injection and inflammation. To investigate the potential of neutrophil inhibition as a treatment strategy for sepsis, we evaluated the effects of monoclonal antibody against CD11b (MAb 1B6) in rats intrabronchial challenged with Escherichia coli. Methods : Animals were randomly assigned to receive monoclonal antibody against CD11b (1 mg/kg, sc) and bovine serum albumin(BSA, 1 mg/kg, sc) 6 hr before, at 0 and 6 hr after intrabronchial challenge of $20x10^9$ CFU/kg E. coli 0111. Animals were randomized to treat either 24, 60 or 90% oxygen after bacterial challenge and begining 4 hr after inoculation, all animals were received 100 mg/kg ceftriaxone qd for 3 days. Peripheral and alveolar neutrophil(by bronchoalveolar lavage) counts and lung injury parameters such as alveolar-arte rial $PO_2$ difference, wet to dry lung weight ratio and protein concentration of alveolar fluid were measured in survived rats at 12 hr and 96 hr. Results : Monoclonal antibody against CD11b decreased circulating and alveolar neutrophil especially more in 12 hr than in 96 hr The lung injury parameters of antibody-treated animals were not different from those of BSA-treated animals. but It was meaningless due to small number of survived animals. The early(6 hr) mortality rate was significantly increased in antibody-treated group(51%) compared to BSA-treated group(31%) (P=0.02) but late(from 12 hr to 72 hr) mortality rate was not different in antibody-treated group(44%) from BSA-treated group(36%) (P =0.089). Conclusion : Leucocyte CD11b/18 adhesion molecule is known to regulate neutrophil migration to the site of infection and inflammation. The monoclonal antibody against CD11b decreased alveolar neutrophil in rats with pulmonary sepsis and increased early mortality rate. Therefore, we can speculate that monoclonal antibody against CD11b blocks of alveolar recruitment of neutrophils, impairs host defense mechanism and increases early mortality rate of pulmonary sepsis in rat.
Conidial adhesion and appressorium formation of Magnaporthe oryzae on the rice surface are important early events in the infection process. As an initiative step to understand the mechanisms underlying these cellular processes at a biochemical level, the effect of a human fibronectin antibody (HFA) and RGD peptides on conidial adhesion and appressorium formation was evaluated. HFA inhibited conidial adhesion and appressorium formation in a dosage-dependent manner. RGD peptides also inhibited these cellular events. Conidial adhesion and appressorium formation inhibited by RGD peptides were restored by chemicals involved in the cyclic AMP-dependent signaling pathway. These results suggest that extracellular matrix proteins might be involved in conidial adhesion and appressorium formation through integrin-like receptor mediation and modulation of cAMP-dependent signaling in the cells.
Background: CD30 is a member of TNF receptor family and expressed on lymphocytes and other hematopoietic cells following activation as well as Hodgkin and Reed-Sternberg cells in Hodgkin's lymphoma. In this study, CD30-mediated regulation of cell adhesion molecule expression on normal activated mouse T cells was investigated. Methods: Mouse T cells were activated with anti-CD3 antibody for induction of CD30, which was cross-linked by immobilized anti-CD30 antibody. Results: High level of CD30 expression on T cells was observed on day 5, but only little on day 3 even under culture condition resulting in an identical T cell proliferation, indicating that CD30 expression requires a prolonged stimulation up to 5 days. Cross-linking of CD30 alone altered neither proliferation nor apoptosis of normal activated T cells. Instead, CD30 appeared to promote cell adherence to culture substrate, and considerably upregulated ICAM-1 and, to a lesser extent, ICAM-2 expression on activated T cells, whereas CD2 and CD18 (LFA-1) expression was not affected. None of cytokines known as main regulators of ICAM-1 expression on tissue cells (IL 4, $IFN{\gamma}$ and $IFN{\alpha}$) enhanced ICAM-1 expression in the absence of CD30 signals. On the other hand, addition of $NF-{\kappa}B$ inhibitor, PDTC (0.1 mM) completely abrogated the CD30-mediated upregulation of ICAM-1 expression, but not CD2 and ICAM-2 expression. Conclusion: This results support that CD30 upregulates ICAM-1 expression of T cell and such regulation is not mediated by higher cytokine production but $NF-{\kappa}B$ activation. Therefore, CD30 may play important roles in T-T or T-B cell interaction through regulation of ICAM-1, and -2 expression.
The modulation of leukocyte cell surface adhesion molecules may influence the development of cellular events that determine the course of the inflammatory process. Direct interaction between activated T cells and monocytes resulted in a large production of $IL-1{\beta}$ by monocytes. In this reactions, adhesion molecules play an important part, yet the role of them in Tmonocytes interaction remain unclear. This study was undertaken in an effort to elucidate, 1) the influence of 1.25(OH)$_2D_3-induced$ differentiation on the monocyte responsiveness to direct contact with T lymphocytes, and 2) the role of adhesion molecules on the T-monocyte direct interaction. Initially, I observed that direct contact of monocyte cell line THP-1 with stimulated fixed T cell line HuT78 markedly induces IL-1${\beta}$ production by THP-1. $IL-1{\beta}$ production was higher when THP-1 had been previously exposed to 1.25(OH)$_2D_3$ as compared to control, with ${\alpha}$- 1.25(OH)$_2D_3$ dose-dependent and exposure time-dependent manner. It was shown that 1.25(OH)$_2D_3$ also increased the expression of ${\beta}_2$ integrin adhesion receptor Mac-1(CD11b/CD18) dose- and timedependently, but did not increase the expression of human leukocyte antigen- D(HLA-D) and intercellular adhesion molecule-1(ICAM-1). The $IL-1{\beta}$ producing activity of THP-1 cells correlated well with the ability to induce the Mac-1 expression on THP-1 surface. Monoclonal antibody raised against relevant cell surface glycoproteins on THP-1 were tested for their ability to block the response of THP-1 to T cells. Antibody to Mac-1 only partially blocked $IL-1{\beta}$ production by THP-1, whereas antibodies to ICAM-1 and HLA-D did not. These data indicate that regulation of Mac-1 expression on THP-1 cells can alter the responsiveness of these cells to contact by activated T cells, however other unknown structures on the THP-1 cells may be involved in this process also.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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