Extensive use of antibiotics over recent decades has led to bacterial resistance against antibiotics, including gentamicin, one of the most effective aminoglycosides. The emergence of resistance is problematic for hospitals, since gentamicin is an important broad-spectrum antibiotic for the control of bacterial pathogens in the clinic. Previous study to identify gentamicin resistance genes from environmental samples have been conducted using culture-dependent screening methods. To overcome these limitations, we employed a metagenome-based culture-independent protocol to identify gentamicin resistance genes. Through functional screening of metagenome libraries derived from soil samples, a fosmid clone was selected as it conferred strong gentamicin resistance. To identify a specific functioning gene conferring gentamicin resistance from a selected fosmid clone (35-40 kb), a shot-gun library was constructed and four shot-gun clones (2-3 kb) were selected. Further characterization of these clones revealed that they contained sequences similar to that of the RNA ligase, T4 rnlA that is known as a toxin gene. The overexpression of the rnlA-like gene in Escherichia coli increased gentamicin resistance, indicating that this toxin gene modulates this trait. The results of our metagenome library analysis suggest that the rnlA-like gene may represent a new class of gentamicin resistance genes in pathogenic bacteria. In addition, we demonstrate that the soil metagenome can provide an important resource for the identification of antibiotic resistance genes, which are valuable molecular targets in efforts to overcome antibiotic resistance.
This study was conducted to investigate antibiotic resistance among Salmonella Typhimurium isolates from diseased pigs in Gyeongbuk province during the period 1998~2011. One hundred forty one isolates were tested for antibiotic resistance using the standard disk diffusion method and were examined for presence of resistance gene by PCR method. S. Typhimurium showed high drug resistance rates to tetracycline (95.7%), streptomycin (93.6%), ampicillin (86.5%), cephalothin (80.1%), gentamicin (79.4%), and trimethoprim/sulfamethoxazole (72.3%). Resistance gene, blaTEM, blaPSE1, tetA, tetB, tetG, sul1, sul2, aadA, strA, grm, and temA were detected among the antibiotic resistance isolates and temB, tetC, aadB gene were not detected. One hundred twenty one (89.6%) tetA, two (1.5%) tetB and one (0.7%) tetG gene were detected in the 135 tetracycline resistant isolates. Two (1.6%) temA gene were detected in one hundred twenty two ampicillin resistance isolates and temB was not detected.
본 연구의 목적은 항생제 내성 균과 유전자 및, 항생제 내성 전달을 제어하는데 필요한 살균능 (CT, 농도 * 접촉 시간)을 서로 비교하는데 있다. 이를 위하여, 이를 위해 각기 다른 염소 주입농도(C)와 접촉시간(T)에 따라 각각의 항생제 내성 제거를 산정하였다. 그 결과 항생제 내성균 90%(1 log)이상 제어를 위해서는 CT 값(176~353 mg min/L)이 필요하였으며, 항생제 내성 유전자의 제거를 위한 CT 값은 195~372 mg min/L 이었다. 또한 항생제 내성 유전자의 전이 90% 이상 제거를 위한 CT 값은 187~489 mg min/L이었다. 따라서, 본 연구조건에서는 항생제 내성 유전자 및 유전자의 전이에 대한 제어를 위해서는 항생제 내성균 제어보다 더 높은 소독능이 필요함을 알 수 있었다.
Dehbashi, Sanaz;Tahmasebi, Hamed;Arabestani, Mohammad Reza
Osong Public Health and Research Perspectives
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제9권6호
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pp.325-333
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2018
Objectives: The purpose of this study was to determine the presence of IMP and OXA genes in clinical strains of Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) that are carriers of the ampC gene. Methods: In this study, 105 clinical isolates of P. aeruginosa were collected. Antibiotic resistance patterns were determined using the disk diffusion method. The strains carrying AmpC enzymes were characterized by a combination disk method. Multiplex-PCR was used to identify resistance and virulence genes, chi-square test was used to determine the relationship between variables. Results: Among 105 isolates of P. aeruginosa, the highest antibiotic resistance was to cefotaxime and aztreonam, and the least resistance was to colictin and ceftazidime. There were 49 isolates (46.66%) that showed an AmpC phenotype. In addition, the frequencies of the resistance genes were; OXA48 gene 85.2%, OXA199, 139 3.8%, OXA23 3.8%, OXA2 66.6%, OXA10 3.8%, OXA51 85.2% and OXA58 3.8%. The IMP27 gene was detected in 9 isolates (8.57%) and the IMP3.34 was detected in 11 isolates (10.47%). Other genes detected included; lasR (17.1%), lasB (18%) and lasA (26.6%). There was a significant relationship between virulence factors and the OX and IMP genes ($p{\leq}0.05$). Conclusion: The relationship between antibiotic resistance and virulence factors observed in this study could play an important role in outbreaks associated with P. aeruginosa infections.
Small size antibiotic resistance plasmids having molecular weights less than 10 Mdal were isolated and characterized from ten clinically isolated multiple resistant Staphylococcus aureus. Agarose gel electrophoresis profiles and antibiotic resistance patterns divided these strains into four groups. Strain 2-23-6, the representative strain of a group of five strains conferred two plasmids of molecular weights $1.6{\times}10^6\;dal\;and\;2.0{\times}10^6$ dal. The small plasmid (pSBK 112) specified macrolides, lincosamides and streptogramin type B (MLS) resistance gene which are expressed constitutively. Lage plasmid (pSBK 125) specified chloramphenicol resistance gene which is inducible. Strain 10-5 conferred a $3.0{\times}10^6$ dal plasmid (pSBK 141) which carry an inducible ampicillin resistance gene and strain P-H-2 conferred and $1.6{\times}10^6$ dal plasmid (pSBK 190) which carry a constitutive MLS resistance gene. Strain D-H-1 conferred four plasmids of molecular weights $0.8{\times}10^6$ dal (pSBK 201), $1.6{\times}10^6$ dal (pSBK 202), $2.5{\times}10^6$ dal (pSBK 203), and $1.2{\times}10^7$ dal (pDBK 204), respectively. Among those four plasmids, only pSBK 203 specified chloramphenicol resistance gene. Curing of constitutive MLS resistance using acriding orange or ethidium bromide in 2-23-6 and P-H-2 strains produced 'inducible' MLS resistance strains which are less resistant to MLS than the wild type strains, suggesting that there are two resistance genes in both strains; one is constitutive and the other is inducible.
CHO BONG-GUM;KIM CHEORL-HO;LEE BOK KWON;CHO SEUNG-HAK
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제15권4호
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pp.728-733
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2005
To elucidate the question of whether biofilm formed by the intercellular adhesion (ica) gene cluster has influences on antibiotic resistance in Staphylococcus epidermidis, we compared 124 skin strains with strains isolated from 50 blood cultures that cause septicemic diseases. The results revealed that the blood culture isolates were more resistant to the antibiotics tested than the saprophytic isolates. Moreover, antibiotic multiresistance was more prevalent in the clinical isolates. In the blood culture isolates, $46\%$ of the strains were resistant to three or more antibiotics, whereas only $12\%$ of the saprophytic isolates were resistant to three or more antibiotics. Interestingly, these characteristics were highly correlated with the biofilm formed by the ica gene cluster. In biofilm-producing strains, $84\%$ of the blood culture isolates and $44\%$ of the saprophytic isolates were antibiotic multiresistant, whereas only $22\%=;and\;9\%$, respectively, were antibiotic multiresistant in biofilm-nonproducing strains. Additionally, in the biofilm-producing ica-positive strains, $89\%$ of the blood culture isolates and $57\%$ of the saprophytic isolates were antibiotic multiresistant. However, the rate of the antibiotic multiresistance in the ica-negative strains was very low, thus indicating that the biofim formed by the lea gene cluster in S. epidermidis is an important pathogenic factor in association with the antibiotic multiresistance.
The aim of this study was to isolate enterococci in Sucuk, a traditional Turkish dry-fermented sausage and to analyze isolates for their biodiversity, antibiotic resistance patterns and the presence of some antibiotic resistance genes. A total of 60 enterococci strains were isolated from 20 sucuk samples manufactured without using a starter culture and they were identified as E. faecium (73.3%), E. faecalis (11.7%), E. hirae (8.3%), E. durans (3.3%), E. mundtii (1.7%) and E. thailandicus (1.7%). Most of the strains were found resistant to rifampin (51.67%) followed by ciprofloxacin (38.33%), nitrofurantoin (33.33%) and erythromycin (21.67%). All strains were found susceptible to ampicillin. Only E. faecium FYE4 and FYE60 strains displayed susceptibility to all antibiotics. Other strains showed different resistance patterns to antibiotics. E. faecalis was found more resistant to antibiotics than other species. Most of the strains (61.7%) displayed resistance from between two and eight antibiotics. The ermB, ermC, gyrA, tetM, tetL and vanA genes were detected in some strains. A lack of correlation between genotypic and phenotypic analysis for some strains was detected. The results of this study indicated that Sucuk manufactured without using a starter culture is a reservoir of multiple antibiotic resistant enterococci. Consequently, Sucuk is a potential reservoir for the transmission of antibiotic resistance genes from animals to humans.
Park, Hyun-Eui;Shin, Min-Kyoung;Park, Hong-Tae;Shin, Seung Won;Jung, Myunghwan;Im, Young Bin;Yoo, Han Sang
대한수의학회지
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제55권3호
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pp.191-197
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2015
Escherichia (E.) coli is commensal bacteria found in the intestine; however, some pathogenic strains cause diseases in animals and humans. Although E. coli does not typically produce hydrogen sulfide ($H_2S$), $H_2S$-producing strains of E. coli have been identified worldwide. The relationship between virulence and $H_2S$ production has not yet been determined. Therefore, characteristics of $H_2S$-producing isolates obtained from swine feces were evaluated including antibiotic resistance patterns, virulence gene expression, and genetic relatedness. Rates of antibiotic resistance of the $H_2S$-producing E. coli varied according to antibiotic. Only the EAST1 gene was detected as a virulence gene in five $H_2S$-producing E. coli strains. Genes conferring $H_2S$ production were not transmissible although the sseA gene encoding 3-mercaptopyruvate sulfurtransferase was detected in all $H_2S$-producing E. coli strains. Sequences of the sseA gene motif CGSVTA around Cys238 were also identical in all $H_2S$- producing E. coli strains. Diverse genetic relatedness among the isolates was observed by pulsed-field gel electrophoresis analysis. These results suggested that $H_2S$-producing E. coli strains were not derived from a specific clone and $H_2S$ production in E. coli is not associated with virulence genes.
Lactic acid bacteria (LAB) are widely used for various food fermentation. With the recent advances in modern biotechnology, a variety of bio-products with the high economic values have been produced using microorganisms. For molecular cloning and expression studies on the gene of interest, E. coli has been widely used mainly because vector systems are fully developed. Most plasmid vectors currently used for E, coli carry antibiotic-resistant markers. As it is generally believed that the antibiotic resistance markers are potentially transferred to other bacteria, application of the plasmid vectors carrying antibiotic resistance genes as selection markers should be avoided, especially for human consump-tion. By contrast, as LAB have some desirable traits such that the they are GRAS(generally recognized as safe), able to secrete gene products out of cell, and their low protease activities, they are regarded as an ideal organism for the genetic manipulation, including cloning and expression of homologous and heterologous genes. However, the vec-tor systems established for LAB are stil insufficient to over-produce gene products, stably, limiting the use of these organisms for industrial applications. For a past decade, the two popular plasmid vectors, pAM$\beta$1 of Streptococcus faecalis and pGK12 theB. subtilis-E. coli shuttle vector derived from pWV01 of Lactococcus lactis ssp. cremoris wg 2, were most widely used to construct efficient chimeric vectors to be stably maintained in many industrial strains of LAB. Currently, non-antibiotic markers such as nisin resistance($Nis^{r}$ ) are explored for selecting recombi-nant clone. In addition, a gene encoding S-layer protein, slp/A, on bacterial cell wall was successfully recombined with the proper LAB vectors LAB vectors for excretion of the heterologous gene product from LAB Many food-grade host vec-tor systems were successfully developed, which allowed stable integration of multiple plasmid copies in the vec-mosome of LAB. More recently, an integration vector system based on the site-specific integration apparatus of temperate lactococcal bacteriophage, containing the integrase gene(int) and phage attachment site(attP), was pub-lished. In conclusion, when various vector system, which are maintain stably and expressed strongly in LAB, are developed, lost of such food products as enzymes, pharmaceuticals, bioactive food ingredients for human consump-tion would be produced at a full scale in LAB.
A tetracycline resistant Vibrio parahaemolyticus, capable of growing on TCBS medium containing tetracycline, was isolated from cultivated fishes. A gene responsible for the tetracycline resistance was cloned from chromosomal DNA of the V. parahaemolyticus strain using Escherichia coli KAM3, which lacks major multi-drug efflux pumps (${\Delta}acrB$) as host cells. The nucleotide sequence and homology analysis revealed an open reading frame (ORF) for tetracycline resistance protein (TetB). In order to characterize the antibiotic resistance of TetB originated from the V. parahaemolyticus strain, the gene was sub cloned into plasmid pSTV28. The resulting plasmid was designated as pSTVTetB and transformated into E. coli KAM3. E. coli KAM3 cells harboring the recombinant plasmid pSTVTetB are able to grow on plates containing tetracycline and oxytetracycline but not doxycycline, indicating that the tetB gene confers the tetracycline- and oxytetracycline-resistance to the host cell.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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