Kinetic studies of L-Alanine dehydrogenase from Bacillus subtilis-catalyzed reactions in the presence of $Zn^{2+}$ were carried out. The substrate (L-alanine) saturation curve is hyperbolic in the absence of the metal ion but it becomes sigmoidal when $Zn^{2+}$ is added to the reaction mixture indicating the positive cooperative binding of the substrate in the presence of zinc ion. The cooperativity of substrate binding depends on the xinc ion concentration: the Hill coefficients ($n_H$) varied from 1.0 to 1.95 when the zinc ion concentration varied from 0 to $60\;{\mu}m$. The inhibition of AlaDH by $Zn^{2+}$ is reversible and noncompetitive with respect to $NAD^+$ ($K_i\;=\;5.28{\times}10^{-5}\;M$). $Zn^{2+}$ itself binds to AlaDH with positive cooperativity and the cooperativity is independent of substrate concentration. The Hill coefficients of substrate biding in the presence of $Zn^{2+}$ are not affected by the enzyme concentration indicating that $Zn^{2+}$ binding does not change the polymerization-depolymerization equilibria of the enzyme. Among other metal ions, $Zn^{2+}$ appears to be a specific reversible inhibitor inducing conformational change through the intersubunit interaction. These results indicate that $Zn^{2+}$ is an allosteric competitive inhibitor and substrate being a non-cooperative per se, excludes the $Zn^{2+}$ from its binding site and thus exhibits positive cooperativity. The allosteric mechanism of AlaDh from Bacillus subtilis is consistent with both MWC and Koshland's allosteric model.
A sequence of 10 amino acids at the C-terminus region of methylglyoxal synthase from Escherichia coli (EMGS) provides an arginine, which plays a crucial role in forming a salt bridge with a proximal aspartate residue in the neighboring subunit, consequently transferring the allosteric signal between subunits. In order to verify the role of arginine, the gene encoding MGS from a thermophile species, Thermus sp. GH5 (TMGS) lacking this arginine was cloned with an additional 30 bp sequence at the 3'-end and then expressed in form of a fusion TMGS with a 10 residual segment at the C-terminus ($TMGS^+$). The resulting recombinant enzyme showed a significant increase in cooperativity towards phosphate, reflected by a change in the Hill coefficient (nH) from 1.5 to 1.99. Experiments including site directed mutagenesis for Asp-10 in TMGS and $TMGS^+$, two dimentional structural survey, fluorescence and irreversible thermoinactivation were carried out to confirm this pathway.
At the spermine concentration to cover the number of the binding site of spermine 0.016 per nucleotide, the Hill coefficient of the ethidium binding to the calf thymus DNA was 1.7, while the value was 0.38 in the absence of the spermine. On the basis of the data, together with other present data on the viscometric titration of the DNA with spermine and anomalous absorbance-temperature profile at 260nm and viscosity-temperature profile, it can be speculated that allosteric propagation of the conformational transition induced by the binding of the spermine may be involved in the monomolecular collapse of the DNA to a condensed structure.
L-alanine dehydrogenase from Bacillus subtilis exhibits allosteric kinetic properties in the presence of $ZN^{2+}$. $ZN^{2+}$ induces the binding of substrate (L-alanine) to be cooperative at pH 8.0. The effect of pH variation between pH 7.0 and pH 10.0 on the inhibition by $ZN^{2+}$ correlates with the pH effect on the $K_m$ values for L-alanine within these pH range indicating that $ZN^{2+}$ and substrate compete for the same site. No such cooperativity is induced by $ZN^{2+}$ when the reaction is carried out at pH 10. At this higher pH, $ZN^{2+}$ binds with the enzyme with lower affinity and noncompetitive with respect to L-alanine. Inhibition of L-alanine dehydrogenase by $ZN^{2+}$ depends on the ionic strength. Increase in KCI concentration reduced the inhibition, but allosteric property in $ZN^{2+}$ binding is conserved. A model for the regulatory mechanism of L-alanine dehydrogenase as a noncooperative substrate-cooperative cofactor allosteric enzyme, which is compatible in both concerted and the sequential allosteric mechanism, is proposed.
L-Serine dehydratase (LSD) is an iron-sulfur containing enzyme that catalyzes the conversion of L-serine to pyruvate and ammonia. Among the bacterial amino acid dehydratases, it appears that only the L-serine specific enzymes utilize an iron-sulfur cluster at their catalytic site. Moreover, bacterial LSDs are classified into four types based on structural characteristics and domain arrangement. To date, only the LSD enzymes from a few bacterial strains have been studied, but more detailed investigations are required to understand the catalytic mechanism of various bacterial LSDs. In this study, LSD type II from Mycobacterium tuberculosis (MtLSD) H37Rv was expressed and purified to elucidate the biochemical and catalytic properties using the enzyme kinetic method. The L-serine saturation curve of MtLSD exhibited a typically sigmoid character, indicating an allosteric cooperativity. The values of $K_m$ and $k_{cat}$ were estimated to be $59.35{\pm}1.23mM$ and $18.12{\pm}0.20s^{-1}$, respectively. Moreover, the plot of initial velocity versus D-serine concentration at fixed L-serine concentrations showed a non-linear hyperbola decay shape and exhibited a competitive inhibition for D-serine with an apparent $K_i$ value of $30.46{\pm}5.93mM$ and with no change in the $k_{cat}$ value. These results provide insightful biochemical information regarding the catalytic properties and the substrate specificity of MtLSD.
It has been demonstrated that mutant Hemoglobins (Hb) which have an altered ${\alpha}$1${\beta}$2 subunit interface can be designed. A compensatory mutation for a naturally occurring abnormal human Hb, Hb Kempsey (${\beta}$99Asp\longrightarrowAsn), has been designed, and this mutation allowed the molecule to regain its allosteric response. The calculated values for the difference in the free energy of cooperativity show excellent agreement with experimentally determined thermodynamic values, suggesting that the molecular dynamics simulation results can be used to obtain information about the specific interactions which contribute to the total free energy of cooperativity. These results provide encouragement to begin a systematic investigation of the molecular basis of the subunit interactions between the ${\alpha}$1 and ${\beta}$2 chains of Hb A by designing appropriate r Hbs. These studies could lead to the design of Hbs with desired cooperativity in the oxygenation process and to the restoration of functional properties of abnormal hemoglobins associated with hemoglobinopathies. Thus, the present results also have the implications in using gene therapy to treat patients with hemoglobinpathies.
The binding interaction of ethidium to a series of synthetic deoxyoligonucleotides containing a B-Z junction between left-handed Z-DNA and right-handed B-DNA, was studied. The series of deoxyoligonucleotides was designed so as to vary a dinucleotide step immediately adjacent to a B-Z junction region. Ethidium binds to the right-handed DNA forms and hybrid B-Z forms which contain a B-Z junction, in a highly cooperative manner. In a series of deoxyoligonucleotides, the binding affinity of ethidium with DNA forms which were initially hybrid B-Z forms shows over an order of magnitude higher than that with any other DNA forms, which were entirely in B-form DNA The cooperativity of binding isotherms were described by an allosteric binding model and by a neighbor exclusion model. The binding data were statistically compared for two models. The conformation of allosterically converted DNA forms under binding with ethidium is found to be different from that of the initial B-form DNA as examined by CD spectra. The ratio of the binding constant was interestingly correlated to the free energy of base unstacking and the conformational conversion of the dinucleotide. The more the base stacking of the dinucleotide is unstable, or the harder the conversion of B to A conformation, the higher the ratio of the binding constant of ethidium with the allosterically converted DNA forms and with the initial B-Z hybrid forms. DNA sequence around a B-Z junction region affects the binding affinity of ethidium. The results in this study demonstrate that ethidium could preferentially interact with unusual DNA structures.
Cr-B2, a Gram-negative hexavalent chromium [Cr(VI)] reducing bacteria, was isolated from the aerator water of an activated sludge process in the wastewater treatment facility of a dye and pigment based chemical industry. Cr-B2 exhibited a resistance for 1,100 mg/l Cr(VI) and, similarly, resistance against other heavy metal ions such as $Ni^{2+}$ (800 mg/l), $Cu^{2+}$ (600 mg/l), $Pb^{2+}$ (1,100 mg/l), $Cd^{2+}$ (350 mg/l), $ZN^{2+}$ (700 mg/l), and $Fe^{3+}$ (1,000 mg/l), and against selected antibiotics. Cr-B2 was observed to efficiently reduce 200 mg/l Cr(VI) completely in both nutrient and LB media, and could convert Cr(VI) to Cr(III) aerobically. Cr(VI) reduction kinetics followed allosteric enzyme kinetics. The $K_m$ values were found to be 43.11 mg/l for nutrient media and 38.05 mg/l for LB media. $V_{max}$ values of 13.17 mg/l/h and 12.53 mg/l/h were obtained for nutrient media and LB media, respectively, and the cooperativity coefficients (n) were found to be 8.47 and 3.49, respectively, indicating positive cooperativity in both cases. SEM analysis showed the formation of wrinkles and depressions in the cells when exposed to 800 mg/l Cr(VI) concentration. The organism was seen to exhibit pleomorphic behavior. Cr-B2 was identified on the basis of morphological, biochemical, and partial 16S rRNA gene sequencing chracterizations and found to be Acinetobacter sp.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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