The products of reactions catalyzed by Methanococcus. jannaschii (Mj) aldolase using various substrates were identified by gas chromatography (GC). Although Mj aldolase is considered a fuculose-1-phosphate aldolase based on homology searching after gene sequencing, it has not been proven to be a fuculose-1-phosphate aldolase based on its reaction products. Mj aldolase was found to catalyze reactions between glycoaldehyde or D, L-glyceraldehyde and DHAP (dihydroxyacetone phosphate). Before performing GC the ketoses produced were converted into peracetylated alditol derivatives by sequential reactions, i.e., dephosphorylation, $NaBH_4$ reduction, and acetylation. By comparing the GC data of final products with those of standard alditol samples, it was found that the enzymatic reactions with glycoaldehyde, D-glyceraldehyde, and D, L-glyceraldehyde produced D-ribulose-1-phosphate, D-psicose-1-phosphate, and a mixture of D-psicose and L-tagatose-1-phosphate, respectively. These results provide direct evidence that Mj aldolase is a fuculose-1-phosphate aldolase.
Prior studies have revealed that several stimulation to the muscle have released serum myoglobin into the blood vessel and increased aldolase activity. The present authors carried out a study which effect of electrical stimulation treatment (induced a isotonic wrist exerceise) on serum myoglobin(Mb) levels and aldolase(Al) activity were investigated in 6 healthy female. There were four groups of female: 1. no electrical stimulation control: 2. electrical stimulation 10min (EST10'); 3. electrical stimulation 20 min (EST20'); 4. electrical stimulation 30min (EST30'). Each groups is all the same one. Radioimmunoassay and Ultraviolet Spectrophotometry were performed to increased or decreased of serum myoglobin and aldolase. Serum myoglobin significantly increased in electrical stimulated groups[EST10' $(30.20{\pm}5.27ng/ml)$, EST20'$(31.65{\pm}3.96ng/ml)$, EST30'$(31.95{\pm}2.0ng/ml)$] to be compared with control group$(24.43{\pm}2.20ng/ml)$. Aldolase significantly increased in electrical stimulated groups [EST10' ($6.85{\pm}1.17$ Sigma U/mL), EST20'($6.70{\pm}1.46$ Sigma U/mL), EST30'($6.56{\pm}1.01$ Sigma U/mL)) to be compared with control group($5.03{\pm}1.86$ Sigma U/mL). The results of this study show that isotonic exercise result in electrical stimulation treatment increased serum myoglobin content and aldolase activity. In conclusion, our results support that stimulation release serum myoglobin and increase aldolase activity.
To elucidate the putative role of the amido group in the metal binding of the fuculose-1-phosphate aldolase from Methanococcus jannaschii, we have examined a potential targen using site-directed mutagenesis. The replacement of asparagine 25 with leucine or threonine was shown to have a negative effect, not only on catlytic efficiency, but also on substrage recognition as well. The Hill coefficient values yeilded a value of =1. All metals used with the wild-type aldolases exhibited higher activity than that of the mutants. The spectra of the mutants were quite different from the wild-type aldolase. A highly conserved amino acid of asparagine 25 in a related family of aldolase odes not appear to provide sufficient evidence for evolution.
Glycolysis is responsible for the conversion of glucose into pyruvate and for supplying reducing power and several metabolites. Fructose-1,6-bisphosphate aldolase (AtFBA1), a central enzyme in the glycolysis pathway, was isolated by functional complementation of the salt-sensitive phenotype of a calcineurin (CaN)-deficient yeast mutant. Under high salinity conditions, aldolase activity and the concentration of NADH were compromised. However, expression of AtFBA1 maintained aldolase activity and the NADH level in yeast cells. AtFBA1 shares a high degree of sequence identity with known class I type aldolases, and its expression was negatively regulated by stress conditions including NaCl. The fusion protein GFP-AtFBA1 was localized in the cytosol of Arabidopsis protoplasts. The seed germination and root elongation of AtFBA1 knock-out plants exhibited sensitivity to ABA and salt stress. These results indicate that AtFBA1 expression and aldolase activity is important for stress tolerance in yeast and plants.
Seo, Pil-Won;Ryu, Ho-Chang;Gu, Do-Heon;Park, Hee-Sae;Park, Suk-Youl;Kim, Jeong-Sun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.8
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pp.1339-1345
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2018
2-Keto-3-deoxy-6-phosphogluconate (KDPG) aldolase, which catalyzes aldol cleavage and condensation reactions, has two distinct substrate-binding sites. The substrate-binding mode at the catalytic site and Schiff-base formation have been well studied. However, structural information on the phosphate-binding loop (P-loop) is limited. Zymomonas mobilis KDPG aldolase is one of the aldolases with a wide substrate spectrum. Its structure in complex with the substrate-mimicking 3-phosphoglycerate (3PG) shows that the phosphate moiety of 3PG interacts with the P-loop and a nearby conserved serine residue. 3PG-binding to the P-loop replaces water molecules aligned from the P-loop to the catalytic site, as observed in the apostructure. The extra electron density near the P-loop and comparison with other aldolases suggest the diversity and flexibility of the serine-containing loop among KDPG aldolases. These structural data may help to understand the substrate-binding mode and the broad substrate specificity of the Zymomonas KDPG aldolase.
The enzyme Fuc aldolase from Methanococcus jannaschii that catalyzes the aldol condensation of DHAP and L-lactaldehyde to give fuculose-1-phosphate was inactivated by DEP. The inactivation was pseudo first-order in the enzyme and DEP, which was biphasic. A pseudo second-order rate constant of 120$M^{-1}min^{-1}$ was obtained at pH 6.0 and $25{\circ}C$. Quantifying the increase in absorbance at 240nm showed that four histidine residues per subunit were modified during the nearly complete inactivation. The statistical analysis and the time course of the modification suggested that two or three histidine residues were essential for activity. The rate of inactivation was dependent on the pH, and the pH inactivation data implied the involvement of the amino acid residue with a $pK_a$ value of 5.7. Fuc aldolase was protected against DEP inactivation by DHAP, indicating that the histidine residues were located at the active site of Fuc aldolase. DL-Glyceraldehyde, as an alternative substrate to L-lactaldehyde, showed no specific protection for the Fuc aldolase.
An aldolase gene has been cloned from Methanococcus jannaschii. The coding region of the gene has been expressed in E. coli using a pET system to a level of 30% of total cellular proteins. The protein was purified to more than 95 % homogeneity by heat treatment and ion exchange chromatography. The protein performed an aldol condensation reaction with glyceraldehyde as substrate and dihydroxyacetone phosphate as a carboxyl donor. The protein was determined to be a type II aldolase which requires the $Zn^{2+}$ ion as a metal cofactor. This enzyme has a broad range of optimum pH (7-9) and temperature ($50-80^{\circ}C$). It shows strong stability against heat, chemical denaturants, as well as a high percentage' of organic solvents. The half-life of this enzyme at $85^{\circ}C$ is more than 24 h and it maintains more than 90% of aldolase activity in the presence of 6 M urea, 50% acetonitrile, or 15% isopropyl alcohol.
We have investigated the expression patterns of candidates for growth stage specifically expressed genes. The expression patterns of the EPV20, aldolase A, Translationally Controlled Tumor Protein (TCTP) and Adipocyte Differentiation Related Protein (ADRP) were examined by semiquantitative RT-PCR and northern blot analysis in skeletal muscle tissues of Hanwoo, especially in the longissimus dorsi at various growth stages. The EPV20 mRNA was expressed in longissimus dorsi tissue of Hanwoo, but there was no difference of expression levels during growth stages. Though the aldolase A gene was reported to be muscle-specific and regulated at developmental stages, the expression levels of aldolase A mRNA in the longissimus dorsi tissues showed little differences at various growth stages. The expression levels of TCTP which was reported as growth-related protein regulated at translation step were gradually increased during growth of Hanwoo. The expression levels of ADRP mRNA were rapidly increased at 24-month-old longissimus dorsi tissue of Hanwoo, and decreased at 30-month-old. Our data suggest that the ADRP gene show as growth-stage dependent expression and is related to fat deposition within muscular tissue.
In order to examine efficient L-threo-2,3-Dihydroxyphenylserine (L-threo-DOPS) synthesis process using whole cell biocatalyst, a thermostable L-threonine aldolase (L-TA), which cloned from Streptomyces coelicolor A3(2) and improved for stability, was expressed in a Corynebacterium glutamicum R strain. The constructed Corynebacterium expression vector, pCG-H44(1) successfully expressed L-TA in C. glutamicum R strain, but showed very low expression level. In order to improve the expression level, the expression vector named pCG-H44(2) was reconstructed by eliminating 1 nucleotide between SD sequence and start codon of L-TA. The pCG-H44(2) vector plasmid was able to overexpress L-TA approximately 3.2 times higher than pCG-H44(1) in C. glutamicum R strain (CGH-2). When the whole cell of CGH-2 was examined in a repeated batch system, L-threo-DOPS was successfully synthesized with a yield of 4.0 mg/ml and maintain synthesis rate constantly after 30 repeated batch reactions for 130 h.
Cytokinins are adenine derivatives that regulate numerous plant growth and developmental processes, including apical and floral meristem development, stem growth, leaf senescence, apical dominance, and stress tolerance. However, not much is known about how cytokinin biosynthesis and metabolism is regulated. We identified a novel Arabidopsis gene, ALL, encoding an aldolase-like enzyme that regulates cytokinin signaling. An Arabidopsis mutant, all-1D, in which ALL is activated by the nearby insertion of the 35S enhancer, exhibited extreme dwarfism with rolled, dark-green leaves and reduced apical dominance, symptomatic of cytokinin-overproducing mutants. Consistent with this, ARR4 and ARR5, two representative primary cytokinin-responsive genes, were significantly induced in all-1D. Whereas SHOOT MERISTEMLESS (STM) and KNAT1, which regulate meristem development, were also greatly induced, expression of REV and PHV that regulate lateral organ polarity was inhibited. ALL encodes an aldolase-like enzyme that belongs to the HpcH/HpaI aldolase family in prokaryotes and is down-regulated by exogenous cytokinin, possibly through a negative feedback pathway. We propose that ALL is involved in cytokinin biosynthesis or metabolism and acts as a positive regulator of cytokinin signaling during shoot apical meristem development and determination of lateral organ polarity.
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