우리나라 재래종인 한우의 초유로부터 lactoferrin(Lf)을 분리하기 위해서 batch extraction, ion exchange chromatography, gel filtration chromatography, affinity chromatography 등의 정제과정을 실시하였다. 각 정제 단계에 의해 한우 Lf과 결합되어 있던 여러 물질들이 제거되었으며 한우 초유 1 liter에서 정제과정을 통하여 회수한 Lf의 양은 65mg로 회수율이 29.4%였다. SDS-PAGE와 HPLC를 이용해 확인한 결과, 정제 단계를 거침에 따라 순도가 높아지는 것 알 수 있었다. 정제된 한우 Lf은 분자량이 81 kDa 이고 등전점은 pI 9였으며, 철 함량이 0.56mg/g으로 철 포화도는 약 40.6%로 측정되었다. 한우 Lf과 젖소 Lf은 아미노산 조성과 ${\alpha}$-helix 함량에서 서로 다르게 나타났다. E. coli O111에 대한 항균성은 젖소 Lf이 한우 Lf 보다 높았으며, 최소저해농도(MIC)는 젖소 Lf이 1.5mg/ml, 한우 Lf은 2.75mg/ml로 젖소 Lf의 항균 활성이 더 높은 것으로 나타났다.
Sialic acid, which is contained in about 60-160 mg/kg in the edible bird's nest (EBN), is known to facilitate in the proper formation of synapses and improve memory function. The objective of this study is to extract effectively the sialic acid from edible bird's nest using affinity bead technology (ABT). After preparing the non-polar polymeric bead "KJM-278-28A" having a porous network structure, and then desorbed sialic acid was concentrated and dried. The analysis of the physicochemical properties of bead "KJM-278-28A" showed that the particle size was 400-700 ㎛, the moisture holding capacity was 67-70%, the surface area (BET) was 705-900 ㎡/g, and the average pore diameter 70-87 Å. The adsorption capacity of the bead "KJM-278-28A" for sialic acid was shown a strong physical force to bind sialic acid to the bead surface of 400 mg/L. In addition, as a result of analyzing the adsorption and desorption effects of sialic acid on water, ethanol, and 10% ethanol on the bead, it was confirmed that desorption effectively occurs from the beads when only ethanol is used. As a result of HPLC measurement of the separated sialic acid solution, a total of four sialic acid peaks of N-acetyl-neuraminic acid (Neu5Ac), α,β-anomer of Neu5Ac and N-glycoly-neuraminic acid were identified. Through these results, it was confirmed that it is possible to separate sialic acid from EBN extract with efficient and high yield when using ABT.
Proteolytic processing of the dengue virus serotype 2 polyprotein precursor is catalyzed by a host signal peptidase and a virus encoded two-component protease consisting of the nonstructural proteins, NS2B and NS3. We expressed in Escherichia coli the NS2B, NS3(pro) and NS2B-NS3 proteins from the dengue virus type 2 strain 16681 as N-terminal fusions with a hexahistidine affinity tag under the control of the inducible trc promoter. All fusion proteins were purified to >90% purity by detergent extraction of inclusion bodies and a single step metal chelate chromatography. Proteins were refolded on-column and recovered with yields of 0.5, 6.0 and 1.0 mg/l of E. coli culture that was grown to $OD_{600}=1.0$ for NS2B, NS3(pro) and NS2B-NS3, respectively. Purified proteins gave strong signals in Western blots using $Ni^{2+}-nitrilotriacetic$ acid as a probe for the presence of the polyHis tag. During the purification process, $(His)_{6}NS2B-NS3$ was apparently not autoproteolytically cleaved at the NS2B/NS3 site.
Park, Sol-Ji;Lee, Se-Hoon;Kim, Kwang-Jin;Kim, Sung-Gun;Kim, Hangun;Choe, Han;Lee, Sang Yeol;Yun, Jung-Mi;Cho, Jae Youl;Chun, Jiyeon;Choi, Kap Seong;Son, Young-Jin
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제25권2호
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pp.274-279
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2015
Receptor activator of nuclear factor-kappa B ligand (RANKL) is a critical factor in osteoclastogenesis. It makes osteoclasts differentiate and multinucleate in bone remodeling. In the present study, RANKL was expressed as a soluble maltose binding protein (MBP)-fusion protein using the Escherichia coli maltose binding domain tag system (pMAL) expression vector system. The host cell E. coli DH5α was cultured and induced by isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside for rRANKL expression. Cells were disrupted by sonication to collect soluble MBP-fused rRANKL. The MBP-fusion rRANKL was purified with MBP Trap affinity chromatography and treated with Tobacco Etch Virus nuclear inclusion endopeptidase (TEV protease) to remove the MBP fusion protein. Dialysis was then carried out to remove binding maltose from the cleaved rRANKL solution. The cleaved rRANKL was purified with a second MBP Trap affinity chromatography to separate unsevered MBP-fusion rRANKL and cleaved MBP fusion protein. The purified rRANKL was shown to have biological activity by performing in vitro cell tests. In conclusion, biologically active rRANKL was successfully purified by a simple two-step chromatography purification process with one column.
Flavin adenine dinucleotide-dependent glucose dehydrogenase (FAD-GDH) can utilize a variety of external electron acceptors and also has stricter substrate specificity than any other glucose oxidoreductases, which makes it the ideal diagnostic enzyme in the field of glucose biosensors. A gene coding for a hypothetical protein, similar to glucose oxidase and derived from Aspergillus terreus NIH2624, was overexpressed in Pichia pastoris GS115 under the control of an AOX1 promoter with a level of 260,000 U/l in the culture supernatant after fed-batch cultivation for 84 h. After a three-step purification protocol that included isopropanol precipitation, affinity chromatography, and a second isopropanol precipitation, recombinant FAD-GDH was purified with a recovery of 65%. This is the first time that isopropanol precipitation has been used to concentrate a fermentation supernatant and exchange buffers after affinity chromatography purification. The purified FAD-GDH exhibited a broad and diffuse band between 83 and 150 kDa. The recombinant FAD-GDH was stable across a wide pH range (3.5 to 9.0) with maximum activity at pH 7.5 and $55^{\circ}C$. In addition, it displayed very high thermal stability, with a half-life of 82 min at $60^{\circ}C$. These characteristics indicate that FAD-GDH will be useful in the field of glucose biosensors.
Tan Yan Peng;Ling Tau Chuan;Yusoff Khatijah;Tan Wen Siang;Tey Beng Ti
Journal of Microbiology
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제43권3호
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pp.295-300
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2005
In the present study, the performances of conventional purification methods, packed bed adsorption (PBA), and expanded bed adsorption (EBA) for the purification of the nucleocapsid protein (NP) of Newcastle disease virus (NDV) from Escherichia coli homogenates were evaluated. The conventional methods for the recovery of NP proteins involved multiple steps, such as centrifugation, precipitation, dialysis, and sucrose gradient ultracentrifugation. For the PBA, clarified feedstock was used for column loading, while in EBA, unclarified feedstock was used. Streamline chelating immobilized with $Ni^{2+}$ ion was used as an affinity ligand for both PBA and EBA. The final protein yield obtained in conventional and PBA methods was $1.26\%$ and $5.56\%$, respectively. It was demonstrated that EBA achieved the highest final protein yield of $9.6\%$ with a purification factor of 7. Additionally, the total processing time of the EBA process has been shortened by 8 times compared to that of the conventional method.
트립신과 키모트립신 혼합물은 분자량 및 화학적 구조가 유사하여 기존의 분리방법으로는 분리가 쉽지 않다. 그러므로 우수한 선택적 분리 기능이 있는 친화성 크로마토그래피와 막분리 공정의 장점을 결합한 유가식 분리동정이 연구 되었다. 트립신에 대하여 더 친화성이 있는 수용성 고분자와 제조된 셀룰로오스 아세테이트 한외여과막에 의해 트립신-친화성 고분자 복합체가 시스템 내에 유지되었으며, 결합되지 못한 효소들은 제거되었다. 사용된 한외여과막의 기공크기는 막 제조시 에탄올 농도에 의해 조절했으며, 친화성 고분자는 $4^{\circ}C$에서 아크릴아마이드와 N-아크리로일-m-아미노벤자미딘으로 중합에 의해 제조하였다. 트립신은 친화성 고분자와 제조된 UF-50 한외여과막을 이용하여 용출 완충용액으로 여과한 결과 순도 86%를 얻을 수 있었다.
N-$\varepsilon$-aminocaproyl-$\alpha$-D-galactopyranosylamine-sepharose를 담체로 하는 affinity chromatography에 의한 해바라기씨 유래 $\alpha$-galactosidase($\alpha$-D-galactoside galactohydrolase EC 3. 2. 1. 22)의 정제방법과 정제효소에 대한 효소화학적 성질을 규명하였다. N-$\varepsilon$-aminocaproyl-$\alpha$-D-galactopyranosylamine의 흡착제를 합성하여 sepharose에 coupling하였다. 기질 p-nitrophenyl $\alpha$-D-galactopyranoside에 대한 정제효소의 비활성은 291.66 units/mg였고, 조효소와 비교하여 115배의 정제 배율을 나타내었다. 정제효소의 순도는 SDS-polyacryl amide gel전기 영동법 에 의해 단일 band를 나타내었으며, 분자량은 42,000으로 추정되었다. 정제효소의 최적 pH와 온도는 4.5, 55$^{\circ}C$이며, pH 4-5, 30-55$^{\circ}C$의 범위에서 pH와 온도 안정성을 나타내었다. 또한 정제효소는 Ag$^{2+}$, Hg$^{2+}$, CO$^{2+}$의 금속에 의해 70%이상의 저해효과를 나타내었다. 정제효소는 melibiose, raffinose 및 copra galactomannan에 대한 galactose의 유리를 TLC에 의해 확인하였고, 각 기질에 대한 galactose의 가수분해 속도를 HPLC에 의해 비교하였다.
Seon, Jeong-Hoon;J.Steven Szarka;Maurice M. Moloney
Journal of Plant Biotechnology
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제4권3호
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pp.95-101
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2002
Molecular faming has the potential to provide large amounts of recombinant protein for use in diagnostics and as therapeutics. Various strategies have been developed to enhance the expression level, stability, and native folding of recombinant proteins produced in plants. Few investigations into the subcellular distribution of recombinant proteins within plant cells have been published despite the potential to increase the expression level and impact the purification process. This review article discusses the current strategies used for targeting recombinant proteins to various subcellular locations and the advantages of targeting to seed oil bodies for molecular farming applications. Specifically, the affinity capture of antibodies using recombinant oilbodies is discussed.
FcBP consisting of 13 amino acids specifically binds to Immunoglobulin G Fc domain. Initially, we utilized this peptide for preparation of antibody chip as a PEG composite for enhanced solubility. After then, the peptide conjugate was immobilized on agarose resin, resulting in highly efficient affinity column for antibody purification. The efficiency was comparable to commercial Protein A column. Recently, this peptide was conjugated with cell penetratingpeptide (CPP) on a backbone of GFP, affording antibody transducer, which carries antibody into live cells by simple mixing of antibody and the transducer in cell culture media. Antibody transduction into cells was monitored by live cell imaging. More recently, the FcBP was fused to ferritin cage, which consists of 24 ferritin protein molecules. The FcBP-ferritin cage showed greatly increased binding affinity to human IgG. Its binding was analyzed by QCM and SPR analysis. Finally, it was selectively delivered by Herceptin to SKBR3, a breast cancer cell, over MCF10A, non-tumorigenic cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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