The gene ADH encoding NAD-dependent alcohol dehydrogenase from Bacillus stearothennophilus was cloned and overexpressed as a GST fusion protein at a high level in Escherichia coli. The expressed fusion protein was purified simply by glutathione affinity chromatography. GST fusion protein was then cleaved by thrombin, while soluble enzyme was further purified by glutathione affinity chromatography. The recombinant enzyme had the same elctrophoretic mobility as the native enzyme from Bacillus stearothennophilus. The recombinant enzyme catalyzed the oxidation of a number of alcohols and exhibited high activities towards secondary alcohols. The $K_m\;and\;V_{max}$ values of the recombinant enzyme for ethanol were 5.11 mM and 61.35 U/mg, respectively. Pyridine and imidazole notably inhibited the enzymatic activity. The activity of the recombinant enzyme optimally proceeded at pH 9.0 and $70^{\circ}C$. The midpoint of the temperature-stability curve for the recombinant enzyme was approximately $68^{\circ}C$, and the enzyme was not completely inactivated even at $85^{\circ}C$. The recombinant enzyme showed a high resistance towards denaturing agents (0.05% SDS, 0.1 M urea). Therefore, due to its stability and relatively broad substrate specificity, the recombinant enzyme could be utilized in bio-industrial processes and biosensors.
The endosperm protein, vicilin, of ginseng (Panax ginseng C.A. Meyer) was purified by ammonium sulfate precipitaion, gel permeation and ion exchange column chromatography. Vicilin is a glycoprotein composed of 2 subunits with molecular masses of 55,000 (large subunit) and 44,000 (small subunit). The anti-vicilin antibody was raised in rabbit, and purified by DEAE Affi-Gel Blue affinity chromatography. The endosperm cells of the seed were reacted with this anti-vicilin antibody and colloidal gold conjugated secondary antibody. Gold particles were labelled on the elaborating granules of Golgi complex, electron-dense granules and protein bodies in the endosperm cells. These results indicated that the vicilin, which was synthesized in rough endoplasmic reticulum and transported to Golgi, was elaborated in saccules of the Golgi and then transported into protein bodies by electron-dense granules.anules.
Gao, Yan;Kim, Doeun;Sung, Eunji;Tan, Minjia;Kwon, Tae Gyun;Lee, Jun Nyung;Lee, Sangkyu
Mass Spectrometry Letters
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v.11
no.3
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pp.52-58
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2020
Histidine phosphorylation (pHis) is increasingly recognized as an important post translational modification (PTM) in regulating cellular functions in eukaryotes. In order to clarify the role of pHis in mammalian cell signaling system, a global phosphorylation study was performed in human prostate cancer cells, PC-3M, using a TiO2 affinity chromatography. A total number of 307 pHis sites were identified on the 268 proteins among total identified 9,924 phosphorylation sites on 3,316 proteins. In addition, 22 pHis proteins were classified in enzyme category. This report provides the first database for the study of pHis in prostate cancer cells.
A recombinant Fab monoclonal antibody (Fab) C37, previously obtained by phage display and biopanning of a random antibody fragment library against Burkholderia pseudomallei protease, was expressed in different strains of Escherichia coli. E. coli strain HB2151 was deemed a more suitable host for Fab expression than other E. coli strains when grown in media supplemented with 0.2% glycerol. The expressed Fab fragment was purified by affinity chromatography on a Protein G-Sepharose column, and the specificity of the recombinant Fab C37 towards B. pseudomallei protease was proven by Western blotting, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and by proteolytic activity neutralization. In addition, polyclonal antibodies against B. pseudomallei protease were produced in rabbits immunized with the protease. These were isolated from high titer serum by affinity chromatography on recombinant-Protein A-Sepharose. Purified polyclonal antibody specificity towards B. pseudomallei protease was proven by Western blotting and ELISA.
Kim, Min-Jeong;Jung, Jae-Hoon;Choi, Eung-Chil;Park, Hae-Young;Lee, Kyung-Lim
BMB Reports
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v.34
no.6
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pp.526-530
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2001
The translationally controlled tumor protein (TCTP), also known as the IgE-dependent histamine releasing factor (HRF), was used in the yeast two-hybrid system to screen the interacting molecules. We obtained the N-terminus truncated rat fast myosin alkai light chain from the rat skeletal muscle cDNA library in the screening. Since either TCTP/HRF or the myosin light chain is known to be associated with histamine secretion from RBL-2H3 cells, we investigated the possible interaction between rat TCTP/HRF and nonmuscle myosin light chain in these cells. We used affinity chromatography and coimmunoprecipitation. Our data suggests that HRF and the myosin light chain interact, which may play an important role in histamine release in RBL-2H3 cells.
Lectin was isolated from locular fluid of tomato by affinity chromatography using Sephadex G-200, and studied its some biochemical properties. SDS-PAGE of the isolated lectin revealed a tetramer composed of two identical subunits with molecular weights of 39 and 23 kDa. The isolated lectin was agglutinated by trypsin-treated human ABO type blood erythrocytes with similar potency, and the most activity of agglutination was found at B type blood erythrocyte. This lectin showed maximum thermal stability at $70^{\circ}C$, and was relatively stable to heat with the higher activity at $40-80^{\circ}C$. The optimal temperature and pH of this lectin were $50^{\circ}C$ and pH 7.0, respectively.
The putative endochitinase gene, yheB of Escherichia coli K-12 is not expressed under lab culture conditions. The endochitinase gene was amplified by PCR and subcloned into pET28c vector and pQE9 vector, respectively. The endochitinase produced in E. coli harboring pET28c containing yheB or pQE9 vector containing yheE was partly released into the growth medium. The overproduced endochitinase was partially purified by His affinity column chromatography and DE-52 column chromatography. The apparent molecular weight of the endochitinase determined by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis was about 97,000. The purified E. coli endochitinase showed maximal chitinolytic activity at pH 6 and $40^{\circ}C$.
Kim, Seul-Ki;Kang, Ho-Joon;Kim, Jae-Joon;Kim, Woo-Yeon
Horticultural Science & Technology
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v.29
no.3
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pp.255-259
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2011
Polyphenol oxidases (PPO) are copper-containing enzymes responsible for tissue browning in fruits and vegetables including potato, apple and pears. Although these enzymes have been studied for many years, their physiological roles in plants are not yet clear. Therefore, these enzymes need to be purified to characterize further from potato tubers. The classical methods used for the purification of PPO involve several steps. So in this study, we developed a one-step chromatography process for the potato tuber PPO purification. After removal of salts from dissolved ammonium sulfate precipitates of potato tuber extracts using Sephadex-G50 gel filtration, affinity chromatography was carried out on NHS-activated Sepharose 4B using p-aminobenzoic acid as a ligand. The purified enzyme was confirmed by silver staining and a zymogram. The optimum temperature and pH for the purified potato tuber PPO were $15^{\circ}C$ and pH 6.0, respectively. The results obtained in the present study will aid to evaluate PPO from various fruits and vegetables.
Biochemical characterization of lectin isolated from fruit of cherry tomato through neutral saline extraction, ammonium sulfate precipitation, and affinity chromatography on Sephadex G-200 was studied. The lectin was agglutinated by trypsin-treated human ABO erythrocytes, and the most pronounced activity of agglutination was observed at B type erythrocyte. The analysis of the lectin by SDS-PAGE showed the high intensity band with molecular weights of 10.7 kDa. The optimal temperature and thermal stability of the lectin was $40^{\circ}C$ and $40-60^{\circ}C$, respectively. The maximal pH of this lectin was pH 7.2.
An assay system by using antibody was adopted to screen the endoinulinase producingfungi due to its high specificity toward endoinulinase, To determine whether the affinity-purified rabbit serum, which were generated against the purified endoinulinase, can react only with the endoinulinase, rocket immunoelectrophoresis was performed. The results showed that the serum specifically reacts with endoinulinase but not with exoinulinase and other proteins in the culture media. Using this polyclonal antibody, a strain from 62 fungal colonies was selected and it secreted an endoinulinase in the culture media to the amount comparable to that of Aspergillus ficuum A Tee 16882 known as a high endoinulinase producer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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