Kim, A-Leum;Park, Son-Young;Lee, Chi-Ho;Lee, Chung-Hak;Lee, Jung-Kee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.24
no.11
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pp.1574-1582
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2014
Bacteria recognize changes in their population density by sensing the concentration of signal molecules, N-acyl-homoserine lactones (AHLs). AHL-mediated quorum sensing (QS) plays a key role in biofilm formation, so the interference of QS, referred to as quorum quenching (QQ), has received a great deal of attention. A QQ strategy can be applied to membrane bioreactors (MBRs) for advanced wastewater treatment to control biofouling. To isolate QQ bacteria that can inhibit biofilm formation, we isolated diverse AHL-degrading bacteria from a laboratory-scale MBR and sludge from real wastewater treatment plants. A total of 225 AHL-degrading bacteria were isolated from the sludge sample by enrichment culture. Afipia sp., Acinetobacter sp. and Streptococcus sp. strains produced the intracellular QQ enzyme, whereas Pseudomonas sp., Micrococcus sp. and Staphylococcus sp. produced the extracellular QQ enzyme. In case of Microbacterium sp. and Rhodococcus sp., AHL-degrading activities were detected in the whole-cell assay and Rhodococcus sp. showed AHL-degrading activity in cell-free lysate as well. There has been no report for AHL-degrading capability in the case of Streptococcus sp. and Afipia sp. strains. Finally, inhibition of biofilm formation by isolated QQ bacteria or enzymes was observed on glass slides and 96-well microtiter plates using crystal violet staining. QQ strains or enzymes not only inhibited initial biofilm development but also reduced established biofilms.
Kim, Yong Min;Kim, Jae-Jin;Kim, Mija;Park, Soon-Nang;Kim, Hwa-Sook;Kook, Joong-Ki;Kim, Hak Kyun
International Journal of Oral Biology
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v.39
no.2
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pp.87-95
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2014
The purpose of this study was to isolate and identify bacteria from the 4 patients with non-odontogenic infectious lesions (mucormycosis, chronic inflammation from wound infection, and two actinomycosis) and determine their antimicrobial susceptibility against eight antibiotics. Bacterial culture was performed under three culture conditions (anaerobic, $CO_2$, and aerobic incubator). The bacterial strains were identified by 16S rRNA gene (16S rDNA) sequence comparison analysis method. For investigating the antimicrobial susceptibility of the bacteria against eight antibiotics, penicillin G, amoxicillin, tetracycline, cefuroxime, erythromycin, clindamycin, vancomycin, and Augmentin$^{(R)}$ (amoxicillin + clavulanic acid), minimum inhibitory concentration (MIC) measurement was performed using broth microdilution assay. Nosocomial pathogens such as Enterococcus faecalis, Klebsiella pneumoniae, Bacillus subtilis, and Neisseria flavescens were isolated from mucormycosis. Veillonella parvula, Enterobacter hormaechei, and Acinetobacter calcoaceticus were isolated from chronic inflammatory lesion. Actinomyces massiliensis was isolated from actinomycosis in parotid gland. Capnocytophaga ochracea was isolated from actinomycosis in buccal region in anaerobic condition. There was no susceptible antibiotic to all bacteria in mucormycosis. Tetracycline was susceptible to all bacteria in chronic inflammation. C. ochracea was resistant to vancomycin and penicillin G; and other antibiotics showed susceptibility to all bacteria in actinomycosis. The results indicated that the combined treatment of two or more antibiotics is better than single antibiotic treatment in mucormycosis, and penicillin is the first recommended antibiotic to treat actinomycosis.
Salman, Hamzah Abdulrahman;Alhameedawi, Alaa kamil;Alsallameh, Sarah Mohammed Saeed;Muhamad, Ghofran;Taha, Zahraa
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.50
no.1
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pp.147-156
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2022
Urinary tract infections (UTIs) are one of the most common infections in different age groups, including children. Bacteria are the main etiological agents of UTIs. The aim of the present study was to isolate, identify, and determine the antibiotic susceptibility of bacteria isolated from children with UTIs from Baghdad, Iraq. Three hundred and two urine samples were collected from children aged 6 months to 12 years. The samples were cultured on blood agar and MacConkey agar. The selected colonies were subjected to biochemical tests and antibiotic susceptibility analysis using the Vitek® 2 Compact automated microbial identification system. In this sample, 299 bacteria were identified, of which, 267 were gram-negative bacteria, and 32 were gram-positive bacteria. Escherichia coli (56%) was the most commonly isolated gram-negative bacteria, followed by Pseudomonas aeruginosa (14%), Enterobacter spp. (10.48%), Klebsiella pneumoniae (9.36%), Proteus spp. (7.8%), Acinetobacter baumannii (1.5%), and Morganella morganii (0.37%). Enterococcus faecalis (62.5%) was the most commonly detected gram-positive bacteria, followed by Staphylococcus aureus (37.5%). E. coli and P. aeruginosa were the most antibiotic-resistant bacteria. Among the tested antibiotics, meropenem showed 100% sensitivity, followed by imipenem (97.4%), amikacin (91.8%), and tobramycin (83.5%). In contrast, the high frequencies of resistance were observed with cefixime (93.2%), cefotaxime (78.7%), and ceftriaxone/cefotaxime (71.2%). In conclusion, carbapenems and aminoglycosides are highly recommended for the empirical treatment of UTIs, while, Quinolones, penicillins, and cephalosporins are not suggested. Frequent antibiotics susceptibility testing are warranted to determine the resistance pattern of UTI bacteria.
The rapid spread of superbugs leads to the escalation of infectious diseases, which threatens public health. Endolysins derived from bacteriophages are spotlighted as promising alternative antibiotics against multi-drug resistant bacteria. In this study, we isolated and characterized the novel Salmonella typhimurium phage PBST08. Bioinformatics analysis of the PBST08 genome revealed putative endolysin ST01 with a lysozyme-like domain. Since the lytic activity of the purified ST01 was minor, probably owing to the outer membrane, which blocks accessibility to peptidoglycan, antimicrobial peptide cecropin A (CecA) was fused to the N-terminus of ST01 to disrupt the outer membrane. The resulting CecA::ST01 has been shown to have increased bactericidal activity against gram-negative pathogens including Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii, Escherichia coli, and Enterobacter cloacae and the most affected target was A. baumannii. In the presence of 0.25 µM CecA::ST01, A. baumannii ATCC 17978 strain was completely killed and CCARM 12026 strain was wiped out by 0.5 µM CecA::ST01, which is a clinical isolate of A. baumannii and resistant to multiple drugs including carbapenem. Moreover, the larvae of Galleria mellonella could be rescued up to 58% or 49% by the administration of CecA::ST01 upon infection by A. baumannii 17978 or CCARM 12026 strain. Finally, the antibacterial activity of CecA::ST01 was verified using 31 strains of five gram-negative pathogens by evaluation of minimal inhibitory concentration. Thus, the results indicate that a fusion of antimicrobial peptide to endolysin can enhance antibacterial activity and the spectrum of endolysin where multi-drug resistant gram-negative pathogens can be efficiently controlled.
In this study, samples were collected from the Sumummulbangdui wetland at the Halla Mountain in Jeju Island in order to isolate novel bacterial strain. Bacterial strains belonging to the class Alphaproteobacteria, and Gammaproteobacteria were isolated after spreading samples onto solid agar media. The 16S rRNA gene sequences of the strains assigned to the two classes were compared to those of type strains of the species. The strains that showed less than 98.7% 16S rRNA gene sequence similarity to the validly published species were considered to be novel species candidates. A total of 19 strains were regarded as novel strains which can be regarded as novel species candidates. In the Alphaproteobacteria, 6 novel strains were affiliated with the genera Novosphingobium, and Rhizobium. A total of 13 novel strains belong to Gammaproteobacteria that assigned to the family Moraxellaceae, Pseudomonadaceae, and Enterobacteriaceae were identified. Cultural, physiological, chemotaxonomic characteristics and fatty acids compositions have been determined for the novel species candidates, and the characteristics are described in this study.
Background: Rhizobacteria play an important role in plant defense and could be promising sources of biocontrol agents. This study aimed to screen antagonistic bacteria and develop a biocontrol system for root rot complex of Panax notoginseng. Methods: Pure-culture methods were used to isolate bacteria from the rhizosphere soil of notoginseng plants. The identification of isolates was based on the analysis of 16S ribosomal RNA (rRNA) sequences. Results: A total of 279 bacteria were obtained from rhizosphere soils of healthy and root-rot notoginseng plants, and uncultivated soil. Among all the isolates, 88 showed antagonistic activity to at least one of three phytopathogenic fungi, Fusarium oxysporum, Fusarium solani, and Phoma herbarum mainly causing root rot disease of P. notoginseng. Based on the 16S rRNA sequencing, the antagonistic bacteria were characterized into four clusters, Firmicutes, Proteobacteria, Actinobacteria, and Bacteroidetesi. The genus Bacillus was the most frequently isolated, and Bacillus siamensis (Hs02), Bacillus atrophaeus (Hs09) showed strong antagonistic activity to the three pathogens. The distribution pattern differed in soil types, genera Achromobacter, Acidovorax, Brevibacterium, Brevundimonas, Flavimonas, and Streptomyces were only found in rhizosphere of healthy plants, while Delftia, Leclercia, Brevibacillus, Microbacterium, Pantoea, Rhizobium, and Stenotrophomonas only exist in soil of diseased plant, and Acinetobacter only exist in uncultivated soil. Conclusion: The results suggest that diverse bacteria exist in the P. notoginseng rhizosphere soil, with differences in community in the same field, and antagonistic isolates may be good potential biological control agent for the notoginseng root-rot diseases caused by F. oxysporum, Fusarium solani, and Panax herbarum.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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