Objective: Oxidative stress (OS) is a pathological process arising from the excessive production of free radicals in the body. It has the potential to alter animal gene expression and cause damage to the jejunum. However, there have been few reports of changes in the expression of long noncoding RNAs (lncRNAs) in the jejunum in piglets under OS. The purpose of this research was to examine how lncRNAs in piglet jejunum change under OS. Methods: The abdominal cavities of piglets were injected with diquat (DQ) to produce OS. Raw reads were downloaded from the SRA database. RNA-seq was utilized to study the expression of lncRNAs in piglets under OS. Additionally, six randomly selected lncRNAs were verified using quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR) to examine the mechanism of oxidative damage. Results: A total of 79 lncRNAs were differentially expressed (DE) in the treatment group compared to the negative control group. The target genes of DE lncRNAs were enriched in gene ontology (GO) terms and Kyoto encyclopedia of genes and genomes (KEGG) signaling pathways. Chemical carcinogenesis-reactive oxygen species, the Foxo signaling pathway, colorectal cancer, and the AMPK signaling pathway were all linked to OS. Conclusion: Our results demonstrated that DQ-induced OS causes differential expression of lncRNAs, laying the groundwork for future research into the processes involved in the jejunum's response to OS.
Yu, Ju Hyeong;Yeo, Joo Ho;Choi, Min Yeong;Lee, Jae Won;Geum, Na Gyeong;An, Mi-Yun;Jeong, Jin Boo
Korean Journal of Plant Resources
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v.35
no.4
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pp.417-427
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2022
In this study, we investigated in vitro immuno-stimulatory and anti-obesity activity of fruit (LIF), leaves (LIL) and stems (LIS) from Lonicera insularis Nakai in mouse macrophages RAW264.7 cells and mouse pre-adipocytes 3T3-L1 cells. LIF, LIL and LIS increased the production of immunostimulatory factors such as nitric oxide (NO), inducible nitric oxide synthase (iNOS), interleukin-1β (IL-1β), cyclooxygenase-2 (COX-2), tumor necrosis factor-α (TNF-α) and activated phagocytosis in RAW264.7 cells. Inhibition of toll-like receptor 2/4 (TLR2/4) partly blocked LIF, LIL and LIS mediated production of immunostimulatory factors. In addition, inhibition of mitogen-activated protein kinases (MAPK) signaling attenuated the production of immunostimulatory factors induced by LIF, LIL and LIS. Based on these results of this study, LIF, LIL and LIS is thought to activate macrophages the production of immunostimulatory factors and phagocytosis through toll-like receptor 2/4 (TLR2/4) and MAPKs signaling pathway. In anti-obesity study, LIF reduced the lipid accumulation in 3T3-L1 cells. LIF increased the protein phosphorylation expressions such as AMP-activated protein kinase (AMPK), hormone sensitive lipase (HSL), adipose triglyceride lipase (ATGL) related to the lipolysis of the adipocytes. In addition, LIF increased the expression of proteins involved in energy metabolism and brown adipose tissues differentiation such as peroxisome proliferator-activated receptor gamma coativator 1α (PGC-1α) and PR domain-containing16 (PRDM16). These results suggest that LIF is involved in lipid accumulation inhibition through expressing the proteins such as lipolysis and differentiation of white adipocytes to brown adipocytes.
Oxidative stress-induced mitochondrial dysfunction is implicated in the pathogenesis of intervertebral disc degeneration (IVDD). Sirtuin 3 (SIRT3), a sirtuin family protein located in mitochondria, is essential for mitochondrial homeostasis; however, the role of SIRT3 in the process of IVDD has remained elusive. Here, we explored the expression of SIRT3 in IVDD in vivo and in vitro; we also explored the role of SIRT3 in senescence, apoptosis, and mitochondrial homeostasis under oxidative stress. We subsequently activated SIRT3 using honokiol to evaluate its therapeutic potential for IVDD. We assessed SIRT3 expression in degenerative nucleus pulposus (NP) tissues and oxidative stress-induced nucleus pulposus cells (NPCs). SIRT3 was knocked down by lentivirus and activated by honokiol to determine its role in oxidative stress-induced NPCs. The mechanism by which honokiol affected SIRT3 regulation was investigated in vitro, and the therapeutic potential of honokiol was assessed in vitro and in vivo. We found that the expression of SIRT3 decreased with IVDD, and SIRT3 knockdown reduced the tolerance of NPCs to oxidative stress. Honokiol ($10{\mu}M$) improved the viability of NPCs under oxidative stress and promoted their properties of anti-oxidation, mitochondrial dynamics and mitophagy in a SIRT3-dependent manner. Furthermore, honokiol activated SIRT3 through the AMPK-PGC-$1{\alpha}$ signaling pathway. Moreover, honokiol treatment ameliorated IVDD in rats. Our study indicated that SIRT3 is involved in IVDD and showed the potential of the SIRT3 agonist honokiol for the treatment of IVDD.
Wound healing is delayed in diabetic patients. Increased apoptosis and endothelial progenitor cell (EPC) dysfunction are implicated in delayed diabetic wound healing. Melatonin, a major secretory product of the pineal gland, promotes diabetic wound healing; however, its mechanism of action remains unclear. Here, EPCs were isolated from the bone marrow of mice. Treatment of EPCs with melatonin alleviated advanced glycation end product (AGE)-induced apoptosis and cellular dysfunction. We further examined autophagy flux after melatonin treatment and found increased light chain 3 (LC3) and p62 protein levels in AGE-treated EPCs. However, lysosome-associated membrane protein 2 expression was decreased, indicating that autophagy flux was impaired in EPCs treated with AGEs. We then evaluated autophagy flux after melatonin treatment and found that melatonin increased the LC3 levels, but attenuated the accumulation of p62, suggesting a stimulatory effect of melatonin on autophagy flux. Blockage of autophagy flux by chloroquine partially abolished the protective effects of melatonin, indicating that autophagy flux is involved in the protective effects of melatonin. Furthermore, we found that the AMPK/mTOR signaling pathway is involved in autophagy flux stimulation by melatonin. An in vivo study also illustrated that melatonin treatment ameliorated impaired wound healing in a streptozotocin-induced diabetic wound healing model. Thus, our study shows that melatonin protects EPCs against apoptosis and dysfunction via autophagy flux stimulation and ameliorates impaired wound healing in vivo, providing insight into its mechanism of action in diabetic wound healing.
Hyo Lim Lee;Jong Min Kim;Min Ji Go;Seung Gyum Joo;Tae Yoon Kim;Han Su Lee;Ju Hui Kim;Jin-Sung Son;Ho Jin Heo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.34
no.3
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pp.606-621
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2024
This study evaluated the hepatoprotective effect of fermented Protaetia brevitarsis larvae (FPB) in ethanol-induced liver injury mice. As a result of amino acids in FPB, 18 types of amino acids including essential amino acids were identified. In the results of in vitro tests, FPB increased alcohol dehydrogenase (ADH) and aldehyde dehydrogenase (ALDH) activities. In addition, FPB treatment increased cell viability on ethanol- and H2O2-induced HepG2 cells. FPB ameliorated serum biomarkers related to hepatoxicity including glutamic oxaloacetic transaminase, glutamine pyruvic transaminase, total bilirubin, and lactate dehydrogenase and lipid metabolism including triglyceride, total cholesterol, high-density lipoprotein cholesterol, and low-density lipoprotein cholesterol. Also, FPB controlled ethanol metabolism enzymes by regulating the protein expression levels of ADH, ALDH, and cytochrome P450 2E1 in liver tissue. FPB protected hepatic oxidative stress by improving malondialdehyde content, reduced glutathione, and superoxide dismutase levels. In addition, FPB reversed mitochondrial dysfunction by regulating reactive oxygen species production, mitochondrial membrane potential, and ATP levels. FPB protected ethanol-induced apoptosis, fatty liver, and hepatic inflammation through p-AMP-activated protein kinase and TLR-4/NF-κB signaling pathways. Furthermore, FPB prevented hepatic fibrosis by decreasing TGF-β1/Smad pathway. In summary, these results suggest that FPB might be a potential prophylactic agent for the treatment of alcoholic liver disease via preventing liver injury such as fatty liver, hepatic inflammation due to chronic ethanol-induced oxidative stress.
Diabetes is one of the serious chronic metabolic diseases caused by Westernized eating habits, and the goal of diabetes treatment is to keep blood glucose at a normal level and prevent diabetic complications. This study was designed to investigate the anti-diabetic effects of a mealworm (Tenebrio molitor larva) extract (MWE) on hyperglycemia in an animal model with type 2 diabetes. Diabetic C57BL/Ksj-db/db mice were divided into three groups: diabetic control, rosiglitazone, and MWE. The mice supplemented with MWE showed significantly lower blood levels of glucose and glycosylated hemoglobin when compared with the diabetic control mice. The homeostatic index of insulin resistance was significantly lower in mice supplemented with MWE than in diabetic control mice. MWE supplementation significantly stimulated the phosphorylation of insulin receptor substrate-1 and Akt, and activation of phosphatidylinositol 3-kinase in insulin signaling pathway of skeletal muscles. Eventually, MWE increased the expression of the plasma membrane glucose transporter 4 (GLUT4) via PI3K/Akt activation. These findings demonstrate that the increase in plasma membrane GLUT4 expression by MWE promoted the uptake of blood glucose into cells and relieved hyperglycemia in skeletal muscles of diabetic C57BL/Ksj-db/db mice. Therefore, mealworms are expected to prove useful for the prevention and treatment of diabetes, and further studies are needed to improve type 2 diabetes in the future.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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