The aim of the present study was to investigate the cleavage pattern, its developmental ability and apoptosis of porcine embryo in vitro. Morphology data on a total of 919 embryos were analyzed retrospectively. Forty-eight hours after insemination, embryos were classified into five groups based on the cleavage state as follows; 1 cell, 2 cell, 4 cell, 5 to 8 cell and fragmentation. These groups were cultured another 120 hours and then evaluated for blastocyst formation. Blastocyst formation rates were significantly higher in 4 cell (42.5%) and 5 to 8 cell (48.6%) cleaving groups than in other groups (p<0.05). On the other hand, 2 cell and fragmentation groups produced 4.9% and 3,9% blastocysts, respectively. And we could verify that in the event of 2 cell block and fragmentation of embryo. To analyze the apoptotic frequency in preimplantation development of porcine IVF embryos, all cells of each blastocyst were performed by TUNEL assay. There were no significantly differences in the total cell numbers of embryos and apoptotic cell rate in blastocysts among the each classified groups. Data suggest that 4 cell and 5 to 8 cell cleaving embryos at 48 hour after insemination have high developmental competence, and may be an useful parameter to predict the development of preimplantation embryos and to study using preimplanation embryonic research.
In cryopreserved rat embryos, survival rates obtained in vitro are not always consistent with the rates obtained in vivo. To determine the optimal conditions for in vivo development to term, rat embryos at the 4-cell, 8-cell and morula stages were vitrified in EFS40 by a 1-step method and transferred into oviducts or uterine horns of recipients at various times during pseudopregnancy. Vitrified and fresh 4-cell embryos only developed after transfer into oviducts of asynchronous recipients on Day -1 to -2 of synchrony, i.e., at a point in pseudopregnancy that was 1-2 days earlier than the embryos. However, although about half the vitrified embryos transferred into oviducts on Day -1 developed to term, only a minority of embryos transferred at later times did so, whether vitrified (10-34%) or fresh (24-33%), suggesting that this may not be the most suitable stage for cryopreservation. Very few 8-cell embryos, either vitrified or fresh, developed when transferred into oviducts on Day 0 to -0.5. However, when transferred into uterine horns, high proportions of vitrified 8-cell embryos (-63%) developed to term in reasonably synchronous recipients (Day 0 to -0.5) but not in more asynchronous ones (6%; Day-1). A majority of vitrified morulae also developed to term (52-68%) in a wider range of recipients (Day 0 to -1), the greatest success occurring with recipients on Day -0.5. Similar proportions of vitrified and fresh 4-cell embryos, 8-cell embryos and morulae developed to term when there was appropriate synchronization between embryo and recipient. Thus vitrification of preimplantation stage rat embryos does not appear to impair their developmental potential in vivo.
This experiment was performed to develop simple practical methods for short term preservation of rabbit embryos. A total of 55 cross bred does were superovulated by intramuscular injection of PMSG and HCG. Embryos were recovered at 25~30 hrs, 60~65 hrs and 80~85 hrs after mating and selected by morphological examination. Four cell stage, morulae and blastocyst embryos were stored in PBS enrich with 1, 10, 20 and 40% heat-treated FCS at 4, 20, 30 and 37$^{\circ}C$, respectively. Embryos were examined morphologically at 24, 48 and 72 hrs following storage. The result obtained in this experiment were summarized as follows: The superovulation was induced by PMSG 200 IU and HCG 100 IU. The average number of ovulation points and embryos recovered by collection time were 19.0, 15.6(25~30 hr), 17.3, 13.5(60~65 hr) and 19.2, 14.4(80~85 hr), respectively. And recovery rates of embryos recovered at 25~30 hr, 60~65 hr and 80~85 hr after mating were 62.8%(4 cell), 84.7%(morulae) and 79.6%(blastocyst), respectively. On the other hand, the average number of ovulation points collected by the no, of operations for the repeated collection was 17.3(60~65 hr), 19.2(80~85 hr) in 1st and 9.4(60~65 hr), 10.6(80~85 hr) in 2nd surgery, respectively. There was a significant decrease(P<0.05) in the number of ovulation points the 2nd surgery as compared to the 1st surgery. All of the 4-cell stage embryos stored at 4$^{\circ}C$ for 48 hrs showed the same morphology throught the storage period, on the contrary, 4-cell stage embryos stored at 2$0^{\circ}C$ and 3$0^{\circ}C$ for 48 hrs showed degeneration embryos and stored at 37$^{\circ}C$ for 24 hrs showed degeneration embryos. Morulae and blastodcyst stored at 4, 20, 30 and 37$^{\circ}C$ for 24 hrs showed degeneration embryos. All of the blastocyst stored at 37$^{\circ}C$ for 72 hrs showed degeneration embryos.
The pig has been considered to serve as an appropriate model of human disease. Therefore, establishment of porcine embryonic stem cell lines is important. The purpose of the present study was to further work in this direction. We produced porcine parthenogenetic embryos, and separately aggregated two of each of two-cell ($2{\times}2$), four-cell ($2{\times}4$), and eight-cell ($2{\times}8$) embryos derived by parthenogenesis. After culture for 4 days, the developmental ability of the aggregates and total blastocyst cell numbers were evaluated. The percentage of blastocysts was significantly higher in both $2{\times}4$- and $2{\times}8$-aggregated embryos ($58.3{\pm}1.9%$ and $37.2{\pm}2.8%$, respectively) than in the control or $2{\times}2$-aggregated embryos ($23.6{\pm}1.1%$ and $12.5{\pm}2.4%$, respectively). Total blastocyst cell numbers were increased in the $2{\times}4$- and $2{\times}8$-aggregated embryos (by $44{\pm}3.0%$ and $45{\pm}3.3%$, respectively) compared with those of control or $2{\times}2$-aggregated embryos ($30.5{\pm}2.1%$ and $30.7{\pm}2.6%$, respectively; p<0.05). The levels of mRNA encoding Oct-4 were higher in both the $2{\times}4$- and $2{\times}8$-aggregated embryos than in the control. When blastocysts derived from $2{\times}4$- aggregated embryos or intact normal embryos were cultured on mouse embryonic fibroblast feeder cells to obtain porcine stem cells, blastocysts from aggregated embryos formed colonies that were better in shape compared with those derived from intact blastocysts. Together, the data show that aggregation of porcine embryos not only improves blastocyst quality but also serves as an efficient procedure by which porcine embryonic stem cells can become established.
Objective: We reported the overcoming effect of $Ni^{2+}$ on the in vitro 2-cell block of mouse embryos. In this study, we aim to investigate whether $Ni^{2+}$ should induce intracellular $Ca^{2+}$ transient in the mouse embryos. Materials and Methods: Embryos were collected at post hCG 32hr from the oviduct of the ICR mouse and cultured in M2 medium omitted phenol red. Intracellular $Ca^{2+}$ was checked by using a confocal laser scanning microscope and fluo-3AM by using various intracellular $Ca^{2+}$ antagonists. Results: In 1mM $Ni^{2+}$ treated medium which contained $Ca^{2+}$(1.71mM), 75.7% of the embryos showed $[Ca^{2+}]i$ transient about 200 sec later. In the $Ca^{2+}$-free medium, 69.8% of the embryos showed $[Ca^{2+}]i$ transient. In U73122, phospholipaseC(PLC) inhibitor (5uM, 10min) pretreated group, 33.3% of the embryos showed $[Ca^{2+}]i$ transient. Heparine, inositol 1, 4, 5-triphosphate receptor(IP3R) antagonist preinjected embryos showed no response with 1mM $Ni^{2+}$. In danthrolene treatment, ryanodine receptor(RyR)-antagonist, 43% embryos showed $[Ca^{2+}]i$ transient but they showed delayed response about 340sec in the presence of $Ca^{2+}$. Conclusions: Summing up the above results, $Ni^{2+}$ seems to induce $Ca^{2+}$-release from the $Ca^{2+}$-store even in the $Ca^{2+}$-free medium. IP3 receptors of the mouse 2-cell embryos might have an essential role for the intracellular $Ca^{2+}$ increase by $Ni^{2+}$.
These experiments were carried out to examine the development capacity of sexed and then bisected embryo from 8-cell to morula stage. Antisera to histocompatibility-Y(H-Y) antigen were prepared in inbred SD female rat by repeated immunization of spleen cell or testis supernatant from males of same strain. Male and female embryos were separated by delaying development of embryos against H-Y antibody. After sexing, rabbit embryos were bisected and aggregated. The results obtained from the these experiments were summuerized as follows: 1. When mouse and rabbit 8-, 16-cell and morular embryos were culature in H-Y antiserum, the ratio of embryo which has developed to hatching blastocyst was 53.4, 46.3 and 57.4% in mouse embryos, and 49.0, 52.0 and 61.0% in rabbit embryo, respectively. The ratio of mouse and rabbit embryos developed to hatching blastocyst showed nearly natural sex rate(50%), except rabbit mourla showed a little higher ratio(61.0%) as compared to natural sex ratio. 2. When rabbit demi-embryos from 8-, 16-cell embryo and morula were cultured, the percentage of demi-embryos was 70, 68 and 58% without zona pellucida removed, and 62, 69 and 51% with zona pellucida. The rate of aggregation was higher in 8- and 16-cell demi-embryos than in morula demi-embryo. 4. When sexed-demi-embryo was aggregated with another demi-embryo with demi-embryo with same sex, the rate of embryo developed to blastocyst was 60, 50 and 25%, respectively. Eight-cell demi-embryo showed highest rate. In conclusion, it showed that H-Y antiserum which was made by rat spleen cell enabled sexing rabbit embryos. And when rabbit sexed 8-, 16-cell and morula demi-embryo were aggregated, they were developed to eu-blastocyst which suggested the potential of sexed embryo manipulation.
Kim, Bitnara;So, Seongjun;Choi, Jiwan;Kang, Eunju;Lee, Yeonmi
한국동물생명공학회지
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제37권1호
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pp.48-54
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2022
Parthenogenesis is maternally uniparental reproduction through the embryonic development of oocytes without fertilization. Artificial activation of mature oocytes could generate homozygous haploid embryos with the extrusion of the second polar body. However, the haploid embryos showed low embryo development in preimplantation embryos. In this study, we investigated whether the electronic fusion of the haploid embryos could enhance embryo development and ESC establishment in mice. Haploid embryos showed the developmental delay from 4-cell to the blastocyst stage. The haploid blastomeres of the 2-cell stage were fused electronically, resulting in that the fused embryos showed a significantly higher rate of blastocysts compared to non-fused haploid embryos (55% vs. 37%). Further, the embryonic stem cells (ESCs) derived from the fused embryos were confirmed to be diploid. The rate of ESC establishment in fused embryos was significantly higher compared to non-fused ones. Based on the results, we concluded that the electronic fusion of haploid embryos could be efficient to generate homozygous ESCs.
Transcriptional activation of the embryonic genome initiates at 2-cell stage in mouse embryo and is characterized by the synthesis of TRC which is restricted to 2-cell stage. To investigate the roles of various protein kinases on the embryonic gene activation, the effects of protein kinase inhibitors on in vitro development and protein synthetic profiles of the early mouse embryos were examinded. None of ${\alpna}-amanitin$ which is a mRNA synthetic inhibitor, H8 which is a PKA inhibitor, and H7 which is a PKC inhibitor, affected on first cleavage of mouse 1-cell embryos in vitro. However, all of these drugs inhibited the second cleavage. When the drugs were removed following treatment for 6 hours, H8 or H7 treatment showed little inhibition on subsequent development of 1-cell embryos to 2-cell stage or further. In contrast, ${\alpna}-amanitin$ irreversibly inhibited the development of 1-cell embryos to 2-cell stage following removal of the drug. Genistein, a TPK inhibitor, inhibited both the first cleavage of 1-cell embryos and the second cleavage of 2-cell embryos, suggesting that TPK activity may be important during the early cleavages. All of the above four drugs inhibited TRC synthesis as shown by the fluorographic analysis of $[^{35}S]-Met$ labeled protein profiles. When late 1-cell embryos were treated with H7 and analyzed synthetic patterns of $[^{35}S]-Met$ labeled protein, the quantitative differences of protein synthesis on SDS-PAGE appeared on 77 kD and 33 kD region at $32{\sim}38$ hours post hCG. From these studies, transcriptional activation of embryonic genome is not essenting to the mouse 1-cell embryos to develop to 2-cell stage. Hawever, TPK activity is reguisite for both the first cleavage and second cleavage. Similarly, both PKC and PKA activities are required for the second cleavage of mouse embryos, but not for the first cleavage.
These experiments were carried out to obtain basic information necessary of the success of in vitro culture of blastomeres separated from mouse embryo. Total 446 single blastomeres separated from 2-, 4- and 8-cell mouse embryos by protease treatment (0.5% in Whittingham's medium), were cultured under the gas phase of 5% CO2 in air at 37$^{\circ}C$. whittingham's medium was used for culture of blastomeres. The results obtained in these experiments were summerized as follows: 1. Of total 446 blastomeres cultured, 127(87.0%), 134(73.2%) and 77(65.8%) blastomeres separated repectively from 2-, 4- and 8-cell embryos were developed to morula or blastular stages. 2. The numbers of blastomeres, being separated from 2-. 4- and 8-cell embryos and developing to blastocysts containing inner cell mass, were 97(76.4%), 86(64.2%) and 33(42.9%) respectively. 3. After in vitro culture of the blastomeres, the incidence of trophoblastic vesicles increased with the development of the cell stage of embryo. In case of blastomeres separated from 8-cell embryos, 50.6% of blastomeres that developed to blastular stage was trophoblastic vesicles.
This study was conducted to investigate the effect of S-phase synthronized nuclear transfer on the development of nuclear transplant bovine embryos. A blastomere derived from the 16~32 cell stage bovine embryos was transferred into an enucleated metaphase II(MII) oocytes or activated S-phase eggs. From the MII-phase and S-phase nuclear transfer, 6.3%(4/63) and 13.8%(9/65) of nuclear transplant embryos developed to the blastocyst stage, respectively. In the S-phase nuclear transfer, maximal proportion of embryos developed to the blastocyst stage(16.6%) was obtained after the recipient cell was activated 8 h prior to receving a donor nucleus. MII-phase nuclear transplant embryos showed the PCC state of their nuclear at 1.5~2 h after fusion, whereas, S-phase nuclear transplant embryos did not undergo PCC. The result of this study suggests that if blastomeres of unknown cell-cycle-stage are used, S-phase nuclear transplantation through the activation of enucleated oocytes prior to fusion enhances development of nuclear transplant embryos. This result also suggests that the interval time from oocyte activation to cell fusion may affect the development of nuclear transplant embryos.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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