Bacterial diversity was determined by amplification and sequencing of 16S rDNA at Tancheon and Jungrang in Han river. Twenty-seven clones constructed were divided 7 groups using RFLP. Fifteen clones were classified 4 groups in Tancheon and the group (HT-1 clone) including many clones was affiliated a high similarity with Aerobacter cryaerophilus (the class Proteobacteria including members of the delta subdivisions). The other two groups (HT-6 and HT-9 clone) including several clones were classified with the class Cytophagales in Tancheon. Twelve clones were classified 3 groups in Jungrang and the group (HJ-1 clone) including many clones was affiliated a high similarity with Sphingomonas sp. (the class Proteobacteria including members of the alpha subdivisions). As a whole results, the class Proteobacteria (alpha, beta and delta subdivision), the order Cytophagales, and the order Actinomycetales were detected.
A pair of designed primers (sequences from Gene Bank) amplified 16S fRNA gene of V. vulnificus within polymerase chain reaction (PCR) machine. This PCR product is about 1.3kb DNA fragment. Six enzymes (BamH I, Alu I, Sau3A I, Hind III, Sal I, Sma I) were used for restriction pattern analysis of amplified 16S rRNA gene of V. vulnificus ATCC 27562. Digested fragments are resolved by 3% agarose gel. BamH I did not show digested fragment so, there was no cutting site of BamH I in PCR product. Alu I produced three small fragments from 400 bp to 200 bp. Sau3A I produced three fragments larger than Alu I from 70 bp and 500 bp. One of fragments of Sal I was same with 500 bp of Hind III fragment and the other was 750 bp. Sma I showed two fragments of 800 bp and 470 bp. The profile of digested fragments of 16S rRNA of V.vulnificus ATCC 27562 will may be able to use standard profile for identification of V. vulnificus.
A moderately halophilic, Gram-positive, spore-forming bacterium was isolated from the roots of Blutaparon portulacoides, a plant found in sandy soil parallel to the beach line in Restinga de Jurubatiba, Rio de Janeiro, Brazil. The strain, designated $M9^T$, was motile and strictly aerobic with rod-shaped cells. It grew in the absence of NaCl and up to 20% NaCl, and was able to hydrolyze casein and starch. Strain $M9^T$ had a cell-wall peptidoglycan based on L-Orn-D-Asp, the predominant menaquinone present was menaquinone-7 (MK-7), diaminopimelic acid was not found, and anteiso-$C_{15:0}$ and iso-$C_{15:0}$ were the major fatty acids. A phylogenetic analysis based on 16S rRNA gene sequences showed that strain $M9^T$ belonged to the genus Halobacillus and exhibited 16S rRNA gene similarity levels of 97.8-99.4% with the type strains of the other nine Halobacillus species. The DNA-DNA relatedness of strain $M9^T$ with H. trueperi, the closest relative as regards 16S rRNA gene similarity, and H. locisalis was 21% and 18%, respectively. Therefore, on the basis of phenotypic, genotypic, and phylogenetic data, strain $M9^T$ (=ATCC BAA-$1217^T$, =CIP $108771^T$, =KCTC $3980^T$) should be placed in the genus Halobacillus as a member of a novel species, for which the name Halobacillus blutaparonensis sp. nov. is proposed.
The genes for ribosomal RNA in Rhizobium meliloti and Bradyrhizobium japonicum were analyzed by southern hybridization of BamHI, EcoRI, HindIII digested chromosomal DNA with purified 5' $^{32}P$-labeled 16S and 23S rRNA. The big differences in the hybridization pattern of both rhizobia were found. The comparative results were discussed in relation to the copy number and conservativity of restriction sites in the rRNA genes of both rhizobia.
The aromatic hydrocarbon receptor (AhR) is a cytosolic protein that binds the environmental pollutant, dioxin. The liganded AhR translocates into the nucleus where it heterimerizes with a constitutive nuclear protein, AhR nuclear translocator (Arnt). The N-terminal regions of both AhR and Arnt contain basic helix-loop-helix (bHLH) and Per-AhR-Arnt-Sim (PAS) motifs that are required for DNA binding, dimerization, and ligand binding whereas the C-terminal regions of both AhR and Arnt contain transactivation domains. Here, results from the mammalian two-hybrid system indicate that Arnt can make a homodimer but AhR cannot. In the presence of dioxin, the interaction between AhR and Arnt is stronger than that of the Arnt homodimer, suggesting that Arnt prefers to make a heterodimer with the liganded AhR rather than a homodimer. Transfection analyses using the GAL4-driven reporter system suggest that AhR's N-terminal region represses its own transactivation domain, as well as exogenous transactivation domains such as Sp 1 and VP16. Interestingly, the repressed transactivation domains of AhR are activated by ligand-dependent heterodimerization with Arnt. These observations suggest that heterodimerzation with Arnt is necessary not only for DNA binding but also for activation of the repressed transactivation capability of AhR.
Acinetobacter strain $KNF2022^T$ was isolated from tobacco plant roots during the screening of antiviral substances having inhibitory effects on Tobacco mosaic virus (TMV) and examined by phenotypic, chemotaxonomic, and genetic characterization. It was a nonmotile, Gram-negative bacterium. This strain contained Q-9 as the main respiratory quinone. The major cellular fatty acids of the isolate were 16:0, 18:1 w9c, and 16:1 w7c/15 iso 2OH. The DNA base composition was 44 mol%. Phylogenetic analysis based on the 16S rRNA sequence revealed that the isolate formed an evolutionary lineage distinct from other Acinetobacter species. Based on the evaluation of morphologic, physiologic, and chemotaxonomic characteristics, DNA-DNA hybridization values, and 16S rRNA sequence comparison, we propose the new species Acinetobacter antiviralis sp. nov., the type strain of which is $KNF2022^T$ (=KCTC $0699BP^T$).
We isolated and cultured bacteria that inhabited marine biofilms, and identified them by phylogenetic analysis using 16S rDNA sequences. In the marine environment, biofilms cover most subtidal and intertidal solid surfaces such as rocks, ships, loops, marine animals, and algae. The bacteria in most biofilms are embedded in extracellular polymeric substances that comprise mainly of exopolysaccharides. The exopolysaccharides are excreted from multiple bacterial species; therefore, biofilms are a good source for screening exopolysaccharide-producing bacteria. Thirty-one strains were cultured, and a total of 17 unique strains were identified. Phylogenetic analysis using 16S rDNA sequences indicated that the 17 strains belonged to ${\alpha}$-Proteobacteria (Ochrobactrum anthropi, Paracoccus carotinifaciens); ${\gamma}$-Proteobacteria (Pseudoalteromonas agarovorans, P. piscicida, Pseudomonas aeruginosa, Shewanella baltica, Vibrio parahaemolyticus, V. pomeroyi); CFB group bacteria (Cytophaga latercula, Tenacibaculum mesophilum); high GC, Gram-positive bacteria (Arthrobacter nicotianae, Brevibacterium casei, B. epidermidis, Tsukamurella inchonensis); and low GC, Gram-positive bacteria (Bacillus macroides, Staphylococcus haemolyticus, S. warneri).
Lactic acid bacteria were isolated from silage, which produce high level of hydrogen peroxide in cell culture supernatant. The 16S rDNA sequences of the isolate matched perfectly with that of Lactobacillus fermentum (99.9%), examined by a 16S rDNA gene sequence analysis and similarity search using the GenBank database, thus named L. fermentum CS12-1. L. fermentum CS12-1 showed resistance to low pH and bile acid. The production of hydrogen peroxide by L. fermentum CS12-1 was confirmed by catalase treatment and high-performance liquid chromatography. L. fermentum CS12-1 accumulated hydrogen peroxide in culture broth as cells grew, and the highest concentration of hydrogen peroxide reached 3.5 mM at the late stationary growth phase. The cell-free supernatant of L. fermentum CS12-1 both before and after neutralization inhibited the growth of enterotoxigenic Escherichia coli K88 that causes diarrhea in piglets.
A previously unreported bacterial disease on chili pepper (Capsicum annuum L.) seedlings affecting as many as 4% of seedlings was observed in greenhouses in Chihuahua, Mexico (Delicias and Meoqui counties). Initial lesions appeared as irregular small spots on leaves and brown necrosis at margins tips were observed. Later, the spots became necrotic with a chlorotic halo. Advanced disease was associated with defoliation. A Gram negative, rod-shaped bacterium was isolated from diseased chili pepper seedlings. Three inoculation methods revealed that isolated strains produce foliage symptoms, similar to those observed in naturally infected seedlings. Pathogenic strains that caused symptoms in inoculated seedlings were re-isolated and identified to fulfill koch's postulate. Polyphasic approaches for identification including biochemical assays (API 20E and 50CH), carbon source utilization profiling (Biolog) and 16S rDNA, hsp60 and rpoB sequence analysis were done. Enterobacter cloacae was identified as the causal agent of this outbreak on chili pepper seedlings.
Six stains of plant growth promoting rhizobacteria were selected through germinating seed assay and root colonization assay. Among them, SKU-78 strain induced significant suppression of bacterial wilt disease in tomato and pepper plants. Seed treatment followed by soil drench application with this strain resulted in over 60% reduction of bacterial wilt disease compared with the control. It was suggested that SKU-78 strain activated the host defense systems in plants, based on lack of direct antibiosis against pathogen. According to Bergey's Manual of Systemic Bacteriology and 16S rDNA sequence data, SKU-78 stain was identified as Bacillus sp. SKU-78.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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