Analysis of proteome in amniotic fluid was performed by 2-D PAGE (polyacrylamide gel electrophoresis). Proteins in amniotic fluid were separated by centrifugation and solubilized in buffer solution for IEF, using an IPG strip of pH 4-7L. Both a homogeneous slab gel of 12.5% and a gradient gel of 8-18%, were used. After 2-D PAGE, spots were stained with silver nitrate and picked up for in-gel digestion. Digested peptides were analyzed by MALDI-TOF and proteins were further identifical. More protein spots were detected in the gradient gels and a protein not previously reported was identified.
KIM YEON-HEE;CHOI SEUNG JUN;LEE HYUN-AH;MOON TAE WHA
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.1
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pp.25-31
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2006
Changes of CP4 5-enolpyruvylshikimate-3-phosphate synthase (CP4 EPSPS) in the glyphosate-tolerant Roundup Ready soybean were examined using purified CP4 EPSPS produced in cloned Escherichia coli as a control. CP4 EPSPS in genetically modified soybean was detected by twodimensional gel electrophoresis (2-DE) and identified by matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry (MALDI-TOF MS) and electrospray ionization tandem mass spectrometry (ESI-MS/MS) with databases. CP4 EPSPS in soybean products was resolved on 2-DE by first isoelectric focusing (IEF) based on its characteristic pI of 5.1, followed by sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) based on its molecular mass of 47.5 kDa. We quantified various percentages of soybean CP4 EPSPS. The quantitative analysis was performed using a 2D software program on artificial gels with spots varying in Gaussian volumes. These results suggested that 2-DE image analysis could be used for quantitative detection of GM soybean, unlike Western blotting.
Protein profiles of beef loin were constructed by comparing two-dimensional gel electrophoresis patterns of the proteins from different growth stages of Hanwoo, Korean cattle. Proteins from the lean muscle of 0, 6, 12 and 24 months old Hanwoo were separated by isoelectric focusing (IEF) on 16 cm tube gels, and further processed second dimensionally by 12% SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) using $18{\times}20$ cm gel. Proteins with pI values ranging 3.0 to 9.0 and molecular weight of 15 to 100 kDa could be clearly detected on gel by silver staining. Interestingly, many of the proteins significantly increased and decreased during growth happened to be low molecular ones. To isolate the increased proteins, the soluble proteins were obtained from the tissue by 1% Triton X-100 extraction, then, fractionated by 30% and 50% ammonium sulfate. The isolation condition of each particular protein was determined. According to the conditions, two of the increased proteins were isolated, and transferred to PVDF membrane and microsequenced.
De Marqui, Alessandra Bernadete Trovo;Vidotto, Alessandra;Polachini, Giovana Mussi;De Mattos Bellato, Claudia;Cabral, Hamilton;Leopoldino, Andreia Machado;De Gois Filho, Jose Francisco;Fukuyama, Erica Erina;Settanni, Flavio Aurelio Parente;Cury, Patricia Maluf;Bonilla-Rodriguez, Gustavo Orlando;Palma, Mario Sergio;Tajara, Eloiza Helena
BMB Reports
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v.39
no.2
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pp.216-222
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2006
In the present study, we compared six different solubilization buffers and optimized two-dimensional electrophoresis (2-DE) conditions for human lymph node proteins. In addition, we developed a simple protocol for 2-D gel storage. Efficient solubilization was obtained with lysis buffers containing (a) 8M urea, 4% CHAPS (3-[(3-cholamidopropyl) dimethylammonio]-1-propanesulfonate), 40 mM Tris base, 65 mM DTT(dithiothreitol) and 0.2% carrier ampholytes; (b) 5M urea, 2M thiourea, 2% CHAPS, 2% SB 3-10 (N-decyl-N, N-dimethyl-3-ammonio-1-propanesulfonate), 40mM Tris base, 65 mM DTT and 0.2% carrier ampholytes or (c) 7M urea, 2M thiourea, 4% CHAPS, 65 mM DTT and 0.2% carrier ampholytes. The optimal protocol for isoelectric focusing (IEF) was accumulated voltage of 16,500 Vh and 0.6% DTT in the rehydration solution. In the experiments conducted for the sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), best results were obtained with a doubled concentration (50 mM Tris, 384 mM glycine, 0.2% SDS) of the SDS electrophoresis buffer in the cathodic reservoir as compared to the concentration in the anodic reservoir (25 mM Tris, 192 mM glycine, 0.1% SDS). Among the five protocols tested for gel storing, success was attained when the gels were stored in plastic bags with 50% glycerol. This is the first report describing the successful solubilization and 2D-electrophoresis of proteins from human lymph node tissue and a 2-D gel storage protocol for easy gel handling before mass spectrometry (MS) analysis.
Glycinin, one of the predominant storage proteins in soybeans, was examined as to whether it could be used as a calcium-binding mediator after chemical phosphorylation and enzymatic hydrolysis. Glycinin is composed of six subunits. One of the proglycinin subunits $(A_{la}B_{lb})$ was overexpressed in E. coli to obtain nonphosphorylated proteins with homogeneity. To investigate the enhanced calcium-binding properties of the phosphopeptides, the proglycinin was purified, phosphorylated, and hydrolyzed with trypsin. The proglycinin expressed in E. coli was purified by ammonium sulfate precipitation, ion-exchange chromatography, and cryoprecipitation. Chemical phosphorylation by sodium trimetaphosphate was performed to obtain phosphorylated proglycinin. After the phosphorylation, one-dimensional isoelectric focusing gel electroanalysis confirmed the phosphorylation of the proglycinin. The phosphorylated peptides were then hydrolyzed with trypsin, followed by a binding reaction with calcium chloride. The calcium-bound phosphopeptides were finally separated using immobilized metal $(Ca^{2+})$ chromatography. Consequently, a limited tryptic hydrolysate of the isolated phosphopeptides exhibited an enhanced calcium-binding ability, suggesting the potential of glycinin phosphopeptides as a calcium-binding mediator with greater availability.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.16
no.2
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pp.37-48
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2008
The diapause and non diapause associated proteins of multivoltine silkworm eggs were analysed by two dimensional (2D) gel electrophoresis. The study was made at 0 hr, 24 hrs and 48 hrs after oviposition. A total of four protein spots in diapause eggs at 24 hrs of oviposition and two protein spots in non diapause eggs at 0 hrs of oviposition were observed. All the six protein spots were considered to have association with diapause and non diapause characters. The molecular weight (MW) and isoelectric point (PI) of these 6 protein spots were calculated. The protein spots 1 and 2 observed in 0 hr of non diapause eggs were found to have the MW of 67 and 75 KDa and PI of 8.6 and 8.4 respectively. Similarly the four protein spots observed in diapause egg at 24 hrs of oviposition exhibited MW viz., 15, 17,20 and 25 KDa and PI of 5.3, 5.8, 6.5 and 6.0 respectively. All these 6 identified protein spots were subjected to in-gel digestion and resulted tryptic peptides were analyzed by Matrix-assisted laser desorption/ionization time-of flight mass spectrometry (MALDI TOF-MS). Databases searched based on experimentally determined molecular weights of peptides for the determination of the identities of proteins. The identified proteins indicated homology of 34% to 95%. The results indicate that the proteins may playa role in development of diapause and non diapause eggs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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