형질전환체 제작 시 발현벡터가 삽입되는 위치에 따라 발현 또는 억제되는 현상인 ‘position effect(위치효과)’를 극복하기 위해 Matrix Attachment Region(MAR)을 포함하는 발현벡터를 제작하였다 MAR는 핵 기질(nuclear matrix) 부착 부위로 발현조절에 관여하는 전사인자 등이 존재하는 핵 기질 부착부위로, 삽입된 발현벡터가 전사활성을 할 수 있는 게놈 환경을 제공해 주어 형질전환 유전자 발현을 향상시켜 준다고 보고되고 있다. 본 연구에서는 사람에서 이미 분리되어 염기서열이 밝혀진 MAR를 PCR로 증폭하였다. 증폭된 1,270 bp의 human alpha-1-antitrypsin MAR와 1,080 bp human corticosteroid binding globulin promoter MAR를 T vector에 클로닝하여 염기서열을 확인했으며 발현벡터 클로닝에 사용하였다. 유용 유전자와 세포 형질전환에 사용할 선별 유전자로 neo를 포함하며, 그 외 벡터골격은 pGL3 control vector를 사용하여 기본 발현벡터를 제작하였다. 이 벡터에 MAR를 5', 3' 양쪽 또는 한쪽만 포함하도록 클로닝하였다. 이는 MAR의 위치에 따른 게놈내 삽입 및 발현효과를 확인하여 형질전환동물 생산용 발현벡터로 활용하고자 한다.
A 3.5 kb plasmid from Lactobacillus. casei ssp. cosei NCIB 4114 was isolated and E. cali-L. casei shuttle vectors were constructed containing this plasmid. Transformation by electroporation was successful with all the plasmids constructed. Optimized condition for the electroporation was established with efficiency level of $2{\times}10^5$ transformants per $\mu$g of vector DNA. Successful introduction of those shuttle vectors enable to these vectors as food grade vector for lactic acid bacteria.
Kim, Yun-Jung;Kim, Myung-Kil;Song, Hong-Gyu;Choi, Hyoung-T.
Korean Journal of Microbiology
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v.43
no.2
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pp.147-149
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2007
White-rot fungi which degrade lignin can also degrade diverse recalcitrant compounds such as polymeric dyes, explosives, pesticides, and endocrine disrupting chemicals. Lignin degrading enzymes are involved in the degradation reactions, and introduction of foreign genes into a white-rot fungus is required in order to increase the degrading capacity. Genetic transformation experiment has been carried out in Irpex lacteus and Phlebia tremellosa to an antibiotic resistance. The transformation yields were 50-70 transformants/${\mu}g$ DNA and 15-25 transformants/${\mu}g$ DNA in I. lacteus and P. tremellosa, respectively. The stable replication of the plasmid was confirmed by PCR using the plasmid-specific primers, and many mutants were generated during this integration in both fungi.
This experiment was undertaken to investigate proper conditions for protoplast isolation and genetic transformation of the white rot fungi, Polyporus brumalis. The protoplasts were formed from mycelia at a frequency of $1{\times}10^7/ml$ with 0.5% Usukizyme. The transformation vector (pHYgpt) was constructed using hygromycin resistance gene (hph) for the selectable maker. The yield was 100-160 transformants/${\mu}g$ DNA in a transformation mediated by 40% polyethylene glycol solution with aurintricarboxylic acid, heparin and supermidine. The genomic integration of the pHYgpt was confirmed by hph-specific PCR and the expected amplified band appeared only in the transformants. These results could be an efficient tool in gene engineering of the genus polyporus.
본 연구는 생명공학 관련 기술개발에 의하여 신소재 물질을 생산하고 사람에게 안전하고 생리활성이 높은 고가의 의료용 단백질 생산기술을 체계화하며 형질전환 가축을 이용한 유용물질 생산에 따른 산업화와 부가가치의 극대화에 그 목적이 있다. 유즙으로 사람의 빈혈치료제인 EPO(Erythropoietin)를 분비할 수 있는 형질전환돼지를 생산하기 위하여 WAP(Whey Acidic Protein) Promoter(2.6kb) 하류에 사람의 조혈촉진유전자(EPO: 2.6kb)를 연결시켜 미세주입용 재조합 벡터(WAP-EPO : 약 7.8kb)를 구축하였다. 구축된 재조합 벡터를 1세포기 수정란에 약 2ng/ul 농도로 미세주입한 다음 외과적 방법으로 이식하였다. 이식 후 분만 모돈으로부터 생산된 자돈의 꼬리조직을 이용 게놈DNA를 추출하고 PCR 검정을 한 결과, 유즙으로 사람의 빈혈치료제를 생산할 수 있는 유전자가 도입된 형질전환돼지 $\boxDr$새롬이$\boxUl$ (♂)를 확인하였다. 또한 이렇게 꼬리조직으로부터 확인된 새롬이의 혈액과 정액을 채취, 게놈 DNA를 추출하여 외래 유전자 삽입여부를 PCR 방법으로 검정한 결과 꼬리조직과 마찬가지로 혈액 및 정액에서도 외래유전자가 삽입되었음을 확인할 수 있었다. 이렇게 생산된 형질전환돼지 $\boxDr$새롬이$\boxUl$를 이용 계대번식을 통한 F$_1$ 산자의 생산과 유전자 전이율을 확인하기 위하여 $\boxDr$새롬이$\boxUl$정액을 이용한 인공수정을 실시하였다. 인공수정은 1999년 7월 1일부터 2000년 9월 8일 까지 총 78두의 모돈을 이용하였으며, 그 중 21두의 모돈이 분만하여 인공수정에 의한 분만율은 26.92%로 나타났다.(Table Omitted) Table 1에서와 같이 새롬이 정액을 이용한 인공수정에 의해 형질전환된 F$_1$ 자돈의 형질전환율은 17.98%로 나타났으며, 32두의 형질전환자돈 중 8두(암:4두, 수:4두)는 분만과 동시에 폐사하였거나 사육중 폐사하여 현재 24두(암:12두, 수:12두)가 생존하여 F$_1$ 간 교배계획에 의해 사육되고 있다. 이 중 암컷 4두는 현재 F$_2$ 자돈 생산과 함께 유즙내로 사람 빈혈치료제의 분비 유무를 검정중에 있으며, FISH 법에 의한 외래 유전자 삽입 검정을 확인 중에 있다.
AL1-gene, necessary for the replication of the genome of a gemini virus TGMV, was inserted in the opposite direction to the promoter CaMV35S resulting in the construction of a plant transformation binary vector pAR35-2. The vector pAR35-2 contains the chimeric gene cassette involving the duplicated promoter CaMV35S, opposite direction of AL1-gene fusioned with hygromycin resistant gene, and the gene cassette of the neomycin phosphotransferase II gene. The plasmid was transferred to tobacco and tomato plants by leaf disk infection via Agrobacterium. The transgenic plants were selected and grown on the MS-agar medium containing kanamycin and hygromycin. The shoots induced from the calli were regenerated to the whole transgenic plants. The antisense AL1-gene was detected in the genomic DNA isolated from the leaves by using the PCR mediated Southern blot analysis. The expression of the antisense AL1-gene was also observed using the RT-PCR mediated Southern blot analysis. The observation of chloroplasts in guard cell pair indicated that the transgenic tomato plants were diploid.
동물계에서 항바이러스와관련된 dsRNA 의존성 인산화 효소(PKR)의 유전자를 식물체에서 발현시킬 경우 PKR에 의한 단백질합성 및 식물바이러스의 증식조절 가능성에 대한 기초자료를 확보하기 위하여 사람에서 분리된 PKR cDNA를 Agrobacterium 방법에 의하여 연초식물체(Nicotiana tabacum cv. Xanthi-nc)로 형질전환시켰다. HindIII/PstI처리에 의해 얻어지는 약 1.8kb의 phPKR cDNA절편을 일련의 유전자 조작 방법을 통하여 식물발현벡터인 pBI121에 도입하여, p12168을 재조합하였다. 이를 A. tumefaciens LBA 4404에 형질전환시켜 연초식물체형질 전환에 이용하였다. 2mg/l BA와 0.5mg/l NAA가 포함되고 100$\mu\textrm{g}$/ml의 kanamycin이 첨가된 MS배지에서 shooting시킨 후 phytohormone이 첨가되지 않은 MS배지상에서 rooting을 시켜 형질전환 연초식물체를 얻었으며, 형질전환식물체는 정상식물체와 유사한 생육양상을 나타내었다. 형질전환식물체의 유전자도입은 hPKR cDNA의 전사부여는 RT-PCR 방법에 의하여 확인되었다.
Bacillus thuringiensis, a gram-positive soil bacterium, is characterized by its ability to produce crystalline inclusions during sporulation. The crystal proteins exhibit a highly specific insecticidal activity. An insecticidal crystal protein (ICP), Cry II A, is specifically toxic to both lepidopteran and dipteran insects. In this study, tobacco plants transformed by the cry II A gene have been generated. The Cry II A crystal protein was purified from E. coli JM103 harboring cry II A gene by differential solubility. The activated Cry II A was prepared by tryptic digestion. The purified protoxin (70 kDa) and the activated toxin (50 kDa) were analyzed by SDS-PAGE. To generate the transgenic tobacco having cry II A gene, the cry II A gene was subcloned to a plant expression vector, pSRL2, having two CaMV 35S promoters. The recombinant plasmid was transformed into tobacco (N. tabacum var. Petit Havana SR1) by Agrobacterium-mediated leaf disc transformation. Through the regeneration, six putative transgenic tobacco plants were obtained and three transformants were confirmed by Southern blot analysis. It has been found that one plant had single copy of cry II A gene, another had two copies of the gene, and the third had a truncated gene. After the immunochemical confirmation of cry II A expression in plants, the transgenic tobacco plants will be used to study the genetics of future generation with the insecticidal crystal protein gene cry II A.
Park, Ji-Hyun;Lee, Su-Jin;Kim, Bo-Ryung;Woo, Eun-Teak;Lee, Ji-Sun;Han, Eun-Hyang;Lee, Youn-Hyung;Park, Young-Doo
Horticultural Science & Technology
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v.29
no.6
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pp.623-632
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2011
To increase the anti-carcinogens phenylethylisothiocyanate (PEITC), myrosinase (MYR), and glutathione S-transferase (GST), genes related to PEITC pathway were isolated and the gene expressions were regulated by Agrobacterium transformation. Isolated cDNAs, MYR, and GST genes were 1,647 bp and 624 bp, respectively, and the protein expression was confirmed through pET system. Thereafter, we constructed a sense-oriented over-expressing myrosinase (pBMY) and RNAi down-regulated GST (pJJGST) binary vectors for the Chinese cabbage transformation. After the transformation, thirteen over-expressing transgenic Chinese cabbage plants (IMS) with pBMY and five down-regulated ones (IGA) with pJJGST were selected by PCR analysis. Selected $T_0$ transgenic plants were generated to $T_1$ plants by self-pollination. Based on the Southern blot analysis on these $T_1$ transgenic plants, 1-4 copies of T-DNA were transferred to Chinese cabbage genome. Thereafter, RNA expression level of myrosinase gene or GST gene was analyzed through real-time RT PCR of IMS, IGA, and non-transgenic inbred lines. In case of IMS lines, myrosinase gene was increased 1.03-4.25 fold and, in IGA lines, GST gene was decreased by 26.42-42.22 fold compared to non-transgenic ones, respectively. Analysis of PEITC concentrations using GC-MS it showed that some IMS lines and some IGA lines increased concentrations of PEITC up to 4.86 fold and up to 3.89 fold respectively compared to wild type. Finally in this study IMS 1, 3, 5, 12, and 15 and IGA 1, 2, and 4 were selected as developed transgenic lines with increasing quantities of anti-carcinogen PEITC.
Heat shock protein 70 (HSP70) is known as molecular chaperone, the fundamental protein participating in various processes, from nascent protein synthesis to protection of proteins during abiotic stresses and developmental programs. However, their biological functions in plants are not yet well known. Here, NtHSP70-1 (AY372069), HSP70 of Nicotiana tabacum induced by heat stress was investigated. To analyze the protective role of NtHSP70-1, transgenic tobacco plants, which constitutively overexpressed NtHSP70-1 as well as contained either the vector alone or having NtHSP70-1 in the antisense orientation, were constructed. The altered NtHSP70-1 levels in plants were confirmed by western blotting and transgenic sense lines exhibited tolerance to heat stress. Seedlings with the constitutively expressed NtHSP70-1 grew as green or healthy plants after heat stress. In contrast, transgenic vector or antisense lines exhibited yellowing of leaves or some delay in growth, which finally led to death. Evaluation of chlorophyll contents of heat-shocked transgenic tobacco seedlings indicated that NtHSP70-1 contributes to thermotolerance by preventing chlorophyll synthesis in plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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