Staphylococcal enterotoxin B (SEB), which is a bacterial superantigen produced by Staphylococcus aureus, is associated with serious diseases, including food poisoning and atopic dermatitis. This study was performed to produce about 30 kDa of recombinant SEB protein and to immunize in chickens to acquire the specific egg yolk antibody (IgY) against the recombinant SEB. Chickens were immunized with the recombinant SEB intramuscularly in the breast muscle by injection 3 times at intervals of two weeks. Serum- and egg yolk-antibody titers of hens against SEB were highest at 4 weeks after first immunization. In western blot, anti-recombinant SEB IgY was reacted immunospecifically against the recombinant SEB and commercialized SEB. These results suggested that the recombinant SEB antigen could be used as an immunogen to elicit antibody (IgY) against SEB and the anti-recombinant SEB IgY could neutralized staphylococcal enterotoxin B effectively.
Han Yong-Mahn;Kang Yong-Kook;Koo Deog-Bon;Lee Kyung-Kwang
Development and Reproduction
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v.7
no.2
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pp.61-68
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2003
Zygote genome should entail a complex process of epigenetic reprogramming including a global DNA demethylation to reach a totipotency or pluripotency during early mammalian development. In this study, we have analyzed methylation patterns in cloned bovine embryos to monitor the epigenetic reprogramming process of donor genomic DNA. Aberrant DNA methylation patterns were observed in various genomic regions of cloned embryos except single-copy gene sequences. The overall genomic methylation status of cloned embryos was quite different from that of normal embryos produced in viかo or in vivo. Abnormal methylation profiles were also specifically represented in trophectoderm cells of cloned embryos, which probably result in widespread gene dysregulation in extraembryonic region or placental dysfunction familiar to cloned animals. Our findings suggest that developmental failures of cloned embryos are due to incomplete epigenetic reprogramming of donor genomic DNA. Understanding the epigenetic reprogramming processes of donor genome will clearly define the faulty development of cloned embryos.
Fermented soybeans contain microorganisms, diverse enzymes, and bioactive compounds. Few studies on cellulase in Chungkookjang exist. Oligosaccharides play diverse roles of bioactivity. Through Congo red test and activity staining, it was confirmed that the enzyme solution contained cellulase. Optimal pH and temperature of the cellulase produced by Bacillus licheniformis B1 were 10 and $40^{\circ}C$, respectively. Through TLC analysis, it was demonstrated that the enzyme solution degraded carboxymethyl cellulose (CMC), whose main products contained dimer and trimer oligosaccharides. Cellulase activity of barley-Chungkookjnag fermented by the strain increased, compared with that of Chungkookjang. The cellulase was found to be a ${\beta}$-1,4-glucanase through the analysis of the cloned gene, showing polymorphism at 32 amino acid sites in the coding range of amino acid 10 and 460.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.15
no.8
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pp.5412-5418
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2014
The red seabream iridovirus (RSIV), which belongs to the iridoviridae, causes infectious fish diseases in many Asian countries, leading to considerable economic losses to the aquaculture industry. Using the yeast surface display (YSD) technique, a new experimental system was recently developed for the detection and identification of a variety of marine viruses. In this study, a coat protein gene of RSIV was synthesized based on the nucleotide sequence database and subcloned into the yeast expression vector, pCTCON2. The expression of viral coat proteins in the yeast strain, EBY100, was detected by flow cytometry and Western blot analysis. Finally, they were isolated from the yeast surface through a treatment with ${\beta}$-mercaptoethanol. The data suggests that the YSD system can be a useful method for acquiring coating proteins of marine viruses.
Genomic DNA of Bacillus stearothemzophilus, which expressed alkalophilic and thermophilic xylanases, was partially digested with HindIII, cloned into pBR322, and subsequently transferred into the Escherichra coli HB101 cells. Three among 5, 000 transformants screened formed clear zones around their colonies. From the functional clones, three recombinant plasmids (pMG11, pMG12 and pMG13) had been isolated, and they were identified to carry the same 4 kb HindIII fragment originated from B. stearothemzophilus which was responsible for the xylanase activity. pMGl3, however, had the foreign DNA of opposite orientation compared to the other two recombinant plasmids. This recombinant plasmid gave much lower xylanase activity. B. stearothermophilus was observed to produce at least three xylanase activities as evidenced by the PAGE-xylan zymogram. The xylanase from E. coli HB101/pMG12 was judged to correspond to the largest among the three B. stearothermophilus xylanases observed in the zymogrom. The enzyme hydrolyzed xylooligosaccharides larger than xylotriose and degraded xylan to produce xylobiose and xylotriose as major products. The xylanase was considered to have trans-xylosidase activity, too.
A clone pSL 2-1, which is a recombinant plasmid believed to contain the mosquitocidal crystal-line protein gene of the Bacillus sphaericus 1593, was expressed in Escherichia coli JM83 and the product of the clone was purified and identified. The unsolubilized mosquitocidal crystal proteins from the B. sphaericus had formed 43, 58, 64, 100, 113, and 130 Kd bands in the SDS-polyacrylamide gel, but the NaOH-solublized proteins at pH 12 formed 2 protein bands of 43- and 64Kd in the gel because the larger protein (precursor) bands were cleaved. The products of the pSL 2-1 clone was purified by Sephadex G-200 and only the fractions having lethal activity to the 3rd in-star larvae of mosquito Culex pipiens were analyzed by the gel. The only single protein band of 42 Kd toxic to the larvae was formed. The major toxic protein being produced from the B. sphaericus 1593 and the pSL 2-1 clone was found to be the 42 Kd.
A bacterial isolate of DJ-12 capable of degrading 4-chlorobenzoic acid (4CBA) as well as 4-chlorobiphenyl (4CB) was used in this study. Its biodegradability of 4CBA was tested and the location of the genes coding for degradation of 4CBA was investigated by the nethod of in vivo cloning. The genes were found to be existed in the plasmid of pDJ121 which is about 65kb in size and which has 9, 11, 10, and 19 restriction sites for EcoRI, HindIII, SalI, and PstI, respectively. The hybrid plasmid of pDK450 was constructed by ligation of the EcoRI fragments of pDJ121 with pKT230 as a vector. In the recombinant cells selected through transformation of the hybrid vector into Pseudomonas putida KT2440, the 4CBA-degrading genes of DJ-12 were proved to be cloned and expressed in the Pseudomonas sp.
The $Ca^{2+}-activated$ chloride channel (CLCA) was activated by ginseng total saponin (GTS) in Xenopus oocytes. The reverse transcription PCR (RT-PCR) method was performed with gene specific primers on oocytes. The gene specific primers were deduced from spleen cDNA in expressed sequence tags (EST) database showing high homology to the mouse CLCA. Full length of cDNA sequence was completed by linkage of several 5' and 3'-half cDNA fragments have been sequenced. We named the full cDNA to oCLCA transiently. The oCLCA gene encodes a protein of 911 amino acids with $48.9\%$ identity overall to that of mouse CLCA (mCLCA4). A predicted oCLCA amino acids sequence shows the molecular weight of 108 kDa and has four or more transmembrane domains, and also the one hydrophobic Cterminal domain. oCLCA gene was expressed ubiquitously in various tissues included oocytes, also interfered in oocytes by siRNA for oCLCA. Here, we suggest that oCLCA is a endogenous chloride channel gene in oocytes. We are studying for the identification of oCLCA gene and further physiological research.
We found new type of thiol peroxidase, fused with GRX.(TPx-GRX) The TPx-GRX exists in pathogenic bacteria including -. This protein was homogeneously purified from the E.coli recombinant overexpressing TPx-GRX. In the presence of a thiol-containing electron donor such as DTT, the purified TPx-GRX has potent the antioxidant to prevent the inactivation of GS by the MCO system, which is comprised of DTT, $Fe^{3+}$, and $O^2$. The antioxidant activity is much higher that other thiol peroxidase. The investigate the peroxidase activity of TPx-GRX, we directly measured the peroxidase activity of TPx-GRX toward peroxides in terms of the removal of peroxides in the presence of GSH. This result demonstrates that the peroxidase activity of TPx-GRX. These taken together results suggest that TPx-GRX is a new member of thiol peroxidase. These observations also suggest that in the pathogenic bacteria, TPx-GRX plays an important antioxidative role as a multiple array defence mechanism against oxidative stress.
The Streptomyces peucetius OIM (Overproducing Industrial Mutant) strain is a recursively-mutated and optimally-screened strain used for the industrial production of polyketide antibiotics, such as doxorubicin (DXR). Using the S. peucetius OIM mutant strain as a surrogate host, a model minimal polyketide pathway for aloesaponarin II, an actinorhodin shunt product, was cloned in a high-copy conjugative plasmid, followed by functional pathway expression and quantitative metabolite analysis. The level of aloesaponarin II production was noted as being significantly higher in the OIM strain than in the wild-type S. peucetius, as well as in the regulatory network-stimulated S. coelicolor mutant strain. Moreover, the aloesaponarin II production level was seen to be even higher in a down-regulator $wblA_{spe}$-deleted S. peucetius OIM strain, implying that the rationally-engineered S. peucetius OIM mutant strain could be used as an efficient surrogate host for the high expression of foreign polyketide pathways.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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