In order to screen interactor(s) of the Aspergillus nidulans ${\alpha}$-COP of COPI vesicle, we performed the yeast two hybrid screening by using the gene for A. nidulans ${\alpha}$-COP as a bait and identified ${\varepsilon}$-COP of the COPI vesicle as an interacting protein. The A. nidualns gene for the ${\varepsilon}$-COP was designated $aneA^+$ ($\underline{A.}$$\underline{n}$idulans $\underline{e}$psi-lone-COP), which encoded 296 amino acid residues with high level of identity with orthologs from other fungi. Domain analyses with yeast two-hybrid system suggested that the interaction between ${\alpha}$-COP and ${\varepsilon}$-COP relied on the C-terminus of both proteins, and that the N-terminal WD domian of ${\alpha}$-COP and the TPR region of ${\varepsilon}$-COP were not essential but required for the enhancement of the interaction. These results indicate that the interaction mode between ${\alpha}$-COP and ${\varepsilon}$-COP of COPI vesicle is evolutionarily well conserved in eukaryotes.
Moon, Junghyun;Jeong, Mi Jeong;Lee, Soo In;Lee, Jun Gu;Hwang, Hyunseung;Yu, Jaewoong;Kim, Yong-Rok;Park, Se Won;Kim, Jin A
Journal of Plant Biotechnology
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v.42
no.3
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pp.245-256
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2015
In the agricultural industries, LEDs are used as supplementary, as well as main lighting sources in closed cultivation systems. In cultivation using artificial light sources, various light qualities have been tried to supplement fluorescent lamps to promote plant growth and metabolism. Microarray analysis of Brassica rapa seedlings under blue and fluorescent mixed with blue light conditions identified changes in three genes of the glucosinolate pathway. This attracted attention as functional materials highly expressed 3.6-4.6 fold under latter condition. We selected four more genes of the glucosinolate pathway from the Brassica database and tested their expression changes under fluorescent light mixed with red, green, and blue, respectively. Some genes increased expression under red and blue mixed conditions. The Bra026058, Bra015379, and Bra021429; the orthologous genes of CYP79F1, ST5a, and FMOGS-OX1 in Arabidopsis, are highly expressed in Brassica rapa under fluorescent mixed with blue light conditions. Further, Bra029355, Bra034180, Bra024634, and Bra022448; the orthologous genes of MAM1, AOP3, UGT74B1, and BCAT4 in Arabidopsis, are highly expressed in Brassica rapa under fluorescent mixed with red light conditions. The various light conditions had unique effects on the varieties of Brassica, resulting in differences in glucosinolate synthesis. However, in some varieties, glucosinolate synthesis increased under mixed blue light conditions. These results will help to construct artificial light facilities, which increase functional crops production.
Sin, Sang-Min;Cha, Jae-Young;Ha, Se-Eun;Sim, Sun-Mi;Kim, Hyoung-Do;Lee, Jung-Sup;Park, Jong-Kun
Journal of Life Science
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v.19
no.1
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pp.101-110
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2009
The regulation of gene expression plays an important role in cell cycle controls. In this study, a novel $mas2^+$ (mitosis associated protein) gene, a homolog of human SMARCAD1 was isolated and characterized from a fission yeast Schizosaccharomyces pombe (S. pombe) using gene-specific polymerase chain reaction. The isolated gene contained a complete open reading frame capable of encoding 922 amino acid residues with a typical promoter, as judged by nucleotide sequence analysis. It was also found that an SNF2 domain is located, which is involved in the chromosome remodeling. The quantitative analysis of the $mas2^+$ transcript against $adh1^+$ showed that the expression level of $mas2^+$ is high before septum formation in S. pombe. When $mas2^+$ null mutant cells were grown at 27 and $35^{\circ}C$, the cytokinesis of $mas2^+$ null mutant was greatly delayed and a large number of multi-septate and mis-segregated cells were produced. In addition, the number of multi-septate cells significantly increased. When cells were cultured in YES rich medium to increase proliferation, the abnormal phenotypes $mas2^+$ null mutant dramatically increased. These phenotypes could be rescued by an over-expression of the mast gene. The Mas2 protein localized in the nuclei of S. pombe, as evidenced by Mas2-EGFP signals. These results suggest that the $mas2^+$ is homologous to human SMARCAD1 gene and involved in septum formation and chromosome remodeling control.
A simple and rapid FoLT(formamide low temperature)-PCR, whereby human genomic DNA from blood can be amplified without DNA preparative stps, is described using human insulin genes. By applicatin of FoLT-PCR in human insulin genes, intragenic polymorphism in non-coding regions of the human insulin gene was shown after amplification and analysis by restriction enzyme digestion. All nucleotide sequences were the same as the reported, and four necleotides, at 4 different positions were polymorphic, and polymorphic alleles ${\alpha}4$, ${\alpha}5$, ${\alpha}6$, and ${\beta}2$ were identified. The new alleles were originated from homologous recombination between the ${\alpha}1$ and ${\beta}1$ alleles, and the alleles were founded in heterozygotes only. Although allele ${\alpha}1$ was dominant, the new alleles and ${\beta}1$ were recessive. From the results, it was suggested that the new method of FoLT-PCR was highly applicable in genetic variation analysis.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.39
no.1
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pp.47-53
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2010
Bacteria strains with high activities of extracellular enzymes (protease, fibrinolytic enzyme, amylase, cellulase, and lipase) were isolated from Jeju traditional fermented soybean paste (Doenjang), and characterized by 16S rRNA gene sequence analysis and physiological properties. Protease activities were higher in JR14, JR19, JR25, JR32, JR38, JR47, and JR64 than Bacillus subtilis KCCM 12027 (standard strain). Amylase activities were shown in JR6, JR25, JR38, JR56 and JR81, while not in KCCM12027. Cellulase activities were higher in JR6, JR14, JR48, and JR65 than those of other isolated strains and KCCM 12027 whereas lipase activities were the higher in JR-14 and JR-48. Thrombolytic activity in JR19 with high hemolysis activity were 192% compared with that of plasmin as a positive control. Zymogram analysis indicated that the thrombolytic active strains had 4~5 bands in the molecular weight range of 25~75 kDa. Gene sequence analysis of rRNA revealed that the isolated stains had 99% homology with Bacillus species, and the thrombolytic active stain JR19 was B. stratosphericus $41KF2a^T$.
Cellulase genes from thermophilic alkalophilic Bacillus sp. F204 a potent cellulase complex-producing bacterium, were cloned in Escherichia coli with pUC 19. Plasmids pBC191 and pBC192, isolated from transformants forming yellow zone around colony on the LB agar plate containing 0.5% carboxymethyl cellulose and ampicillin, contained 4.6 Kb and 5.8 Kb HindIII fragments, respectively. The 4.6 Kb insert of pBC191 had single sites for BamHI EcoRI, KpnI and pvuII. DNA hybridization and immunodiffusion studies showed that pBC191-encoded cellulase gene was homologous with that of host strain. pKC231, constructed by inserting 4.6 Kb insert of pBC191 at the HindIII site of pKK223-3, E. coli expression vector, and pGC711, constructed by inserting 4.6 Kb insert of pBC191 at the HindIII site of pGR71, E. coli and B. subtilis shuttle vector, had 3.2 times and 2.8 times as much cellulase activity as pBC191, respectively. Substrate specificity analysis showed that cellulases cloned were CMCase.
A mannitol dehydrogenase (MDH; EC 1.1.1.67) gene was cloned from the Sinorhizobium meliloti 1021 (KCTC 2353) genome and expressed in Escherichia coli. It was seen to have an open reading frame consisting of 1,485 bp encoding 494 amino acids (about 54 kDa), which shares approximately 35-55% of amino acid sequence identity with some known long-chain dehydrogenase/ reductase family enzymes. The recombinant S. meliloti MDH (SmMDH) showed the highest activity at $40^{\circ}C$, and pH 7.0 (D-fructose reduction) and pH 9.0 (D-mannitol oxidation), respectively. SmMDH could catalyze the oxidative/reductive reactions between D-mannitol and D-fructose in the presence of $NAD^+/NADH$ as a coenzyme, but not with NADP+/NADPH. These results indicate that SmMDH is a typical $NAD^+/NADH$-dependent mannitol dehydrogenase.
A putative cyclomaltodextrinase (LLCD) gene was cloned from the genome of Lactococcus lactis subsp. lactis KCTC 3769 (ATCC 19435), which encodes 584 amino acids with the predicted molecular mass of 68.7 kDa. KCTC 3769 shares approximately 40% of amino acid sequence identity with the CDase-family of enzymes. The dimeric enzyme with C-terminal six-histidines was heterologously expressed and purified from recombinant E. coli. LLCD showed the highest activity against ${\beta}$-cyclodextrin (CD) at pH 7.0 and $37^{\circ}C$. In particular, LLCD exhibited extremely low activity against starch and pullulan, while its CD-hydrolyzing activity was about 80 times higher than starch. Due to its much higher activity on CD over starch, LLCD has been identified as a member of CDases. However, LLCD can be distinguished from the other common CDases on the basis of its extremely low hydrolyzing activity against starch, pullulan, and acarbose.
A mannitol dehydrogenase (StMDH) gene was cloned from Salmonella typhimurium LT2 (KCTC 2421) and overexpressed in Escherichia coli. It has a 1,467 bp open reading frame encoding 488 amino acids with deduced molecular mass of 54 kDa, which shares approximately 36% of amino acid identity with known long-chain dehydrogenase/reductatse (LDR) family enzymes. The recombinant StMDH showed the highest activity at $30^{\circ}C$, and pH 5.0 and 10.0 for D-fructose reduction and D-mannitol oxidation, respectively. On the contrary, it has no activity on glucose, galactose, xylose, and arabinose. StMDH can catalyze the oxidative/reductive reactions between D-fructose and D-mannitol only in the presence of $NAD^+$/NADH as coenzymes. These results indicate that StMDH is a typical $NAD^+$/NADH-dependent mannitol dehydrogenase (E.C. 1.1.1.67).
Park, Cho Rong;Kim, Jeong Hee;Yu, Yong Man;Youn, Young Nam
Korean journal of applied entomology
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v.55
no.3
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pp.245-256
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2016
Elytra of Harmonia axyridis exhibit varied color patterns. In the present study, we deciphered the genetic basis for intraspecific diversity of elytra color patterns in H. axyridis, using amplified fragment length polymorphism (AFLP). Twenty-eight AFLP reactions were performed to generate a total of 2,741 bands. Of these, 20 bands were polymorphic for each color pattern. The polymorphic bands showed differences of genetic character among different color patterns of H. axyridis. Among them, ten candidate AFLP markers were color-linked. S1, S2, and S20 markers were detected in Succinea 1 and 2 variants of H. axyridis, whereas S3 and S5 were specifically detected in the Conspicua variant. S15, S18, and S19 were specific to the Succinea 2 variant. Polymerase chain reaction (PCR) products of these ten AFLP markers were sequenced. BLAST analysis of these sequences against the GenBank database revealed their homology to DNA fragments of unknown function. Based on the color-linked AFLP markers, sequence characterized amplified region (SCAR) markers were designed for PCR amplification of genomic DNA. Of the ten AFLP markers, five were successfully converted into SCAR markers, which could discriminate elytra color polymorphism in H. axyridis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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