This study was conducted to examine the development of in vitro fertilized (IVF) and nuclear transfer (NT) embryos following vitrification IVF and NT embryos developed to the blastocyst stage were equilibrated by 3 steps, vitrified and thawed, and their survival and hatching rates were examined. In IVF embryos, higher survival (82.1%, 96/117) and hatching rates (64.1%, 75/117) were obtained respectively after thawing and culture in expanded blastocysts compared to blastocysts (p<0.05). High survival and hatching rates were also obtained by vitrification of NT blastocysts, especially in expanded and hatching blastocysts (81.1 and 78.3%, respectively). The result of this study shows that IVF and NT blastocysts, especially late stage blastocysts, are successfully cryopreserved by vitrification.
This study was to examine whether the in vitro friability, motility and intact acrosome of frozen-thawed bovine and human sperm can be improved by adding Pentoxifylline (PF) or Fertilization Promoting Peptide (FPP). Human semen was frozen ultra-rapidly using Test yolk-buffer (TYB) freezing medium. Additive (PF, FPP) effects in frozen-thawed bovine and human sperm were analyzed by microscopic count for sperm motility and coomassie brilliant blue staining method f3r sperm acrosome intact. The in vitro motility of frozen-thawed bovine sperm with 5 mM PF treatment group (50.0%) was significantly higher than that of control (34.0%) (P<0.05). In the frozen-thawed bovine sperm was examined, the intact acrosome rate of 50 nM FPP treatment (49.0%) was significantly higher than those of control (30.0%) and 25 nM FPP (38.0%) treatment groups (P<0.01). In human semen, when in vitro motility of sperm with PF addition prior to freezing was examined, the result of 5 mM treatment group (51.0%) was significantly higher than those of control and 2.5 mM treatment group (39.0, 40.0%) (P<0.01). In addition, 50 nM (75.5%) FPP adding in all treatment procedures for human semen freezing (before freezing, freezing and after thawing) was significant effect on maintenance of the sperm intact acrosome percentage (control: 45.0; 25 nM: 53.0; 100 nM: 68.0%) (P<0.01). Also, the intact acrosome rate of human sperm with FPP (65.0%) was significantly higher than that with PF (43.0%) (P<0.05), although sperm motility was slightly higher in PF treatment group. These results suggest that improved sperm motility and intact acrosome of frozen thawed bovine and human sperm can be obtained by addition of PF or FPP, and that the enhanced in vitro viability, motility and intact acrosome can be obtained by addition of FPP in all semen freezing procedures.
This study was carried out to investigate the effects of packing materials of frozen boar semen to improve reproductive performance efficiency in pig. Boars were raised at Swine Artificial Insemination Center in National Livestock Research Institute, Sunghwan, Chungnam, Korea. We compared packing protocols for frozen boar semen among 5$m\ell$ maxi-straw, 5$m\ell$ cryogenic-vial, and aluminum-pack. Cryogenic-vial packing material showed similar sperm characteristics compared with maxi-straw packing material when the sperm was frozen above 15cm from liquid nitrogen and thawed at 52$^{\circ}C$ for 190 seconds. We investigated different thawing times to find out the optimal condition of freezing and thawing protocol with cryogenic-vial. Freezing above 15cm from liquid nitrogen and thawing at 52$^{\circ}C$ for 190 seconds were the optimal protocol compared with 120 and 150 seconds. However, normal acrosome rates did not show any differences among thawing times. Post-thawing results of maxi-straw in water at 52$^{\circ}C$ for 45 seconds had better total motility and curve linear velocity than those of cryogenic-vial in water 52$^{\circ}C$ for 190 seconds. However, there were no differences on straightness and normal apical ridge of sperm between maxi-straw and cryogenic vial. Non-return rate, farrowing rate and litter size of sows inseminated with frozen boar semen of commercial farms were higher in the maxi-straw than cryogenic-vial, but there were no significant differences between maxi-straw and cryogenic-vial. In conclusion, there were no significant differences between maxi-straw and cryogenic-vial and so, we may replace cryogenic-vial packing method instead of maxi-straw packing method by improvement of freezing and thawing rate.
The objective of this study was to investigate the effect of cryopreservation by slow and rapid freezing on the sperm motility index, viability and morphology of post-thaw human spermatozoa. After rapid freezing and thawing, sperm motility index was significantly higher (MOT:47.40$\pm$20.06%, VCL : 38.12$\pm$15.58 $\mu$m/s, VSL : 28.19$\pm$14.10 $\mu$m/s, VAP:33.64$\pm$15.15 $\mu$m/s, and HYP 2.77$\pm$2.71%) than slow freezing and thawing(MOT : 43.39$\pm$ 18.79%, VCL .33.91 $\pm$ 13.50 Um/s, VSL . 19.98$\pm$0.88 $\mu$m/s, VAP : 24.60$\pm$11.72 $\mu$m/s, and HYP . 1.33$\pm$1.57% ; P<0.05). But sperm Linearity(LIN) was significantly lower(28.83 $\pm$ 10.35) comparing to the slow freezing method(34.64 $\pm$ 11.36 ; P<0.05). On the other hand, significant difference were not observed MAD, WOB, DNC and DNM by slow and rapid frozen-thawed methods. After rapid freezing and thawing, sperm viability was lower(60 $\pm$ 2.2%) than slow freezing method(62 $\pm$2.1%) and sperm morphology was higher(46$\pm$7.7%) than that(44: 8.3). But there was no significantly These results indicate that rapid freezing method was positive effect of sperm cryopreservation in human.
The aim of this study was to identify the method on extended canine semen exposed to freezing as assessed by motility, survival and acrosomal changes following different freezing ramp rates. Five ejaculates collected by digital manipulation twice weekly from three dogs (Shih-Tzu) were added Tris-Egg Yolk (TE) buffer and divided into 4 aliquots according to formulation of our laboratory. After cooling to 4$^{\circ}C$ by ramp rate of 0.6$^{\circ}C$/min, the samples frozen by ramp rates of 1.6$^{\circ}C$/min to -$25^{\circ}C$, 3$^{\circ}C$/min to -35$^{\circ}C$, 8.9$^{\circ}C$/min to -7$0^{\circ}C$ and 19$^{\circ}C$/min to -11$0^{\circ}C$, respectively, and then stored in L$N_2$for 2days. Each sample was evaluated on their motility, survivability and acrosome integrity at different thawing temperature. The ramp rate of 3$^{\circ}C$/min to -35$^{\circ}C$/h for freezing and thawing temperature of 37$^{\circ}C$ obtained the highest results to improve survivability, motile spermatozoa and intact acrosome appearance than other onditions. In conclusion, we may suggest freezing semen for canine artificial insemination is more efficient with freezing at a ramp rate of -3$^{\circ}C$/min to -35$^{\circ}C$ and thawing with a water bath adjusted to 37$^{\circ}C$.
This study was conducted to comparing on vitrification of mouse oocytes and embryos using CPS, conventional straws and CPS by evaluating in morphological survival for oocytes, and embryonic cleavages and blastocyst formation for embryos. The morphological survival in vitro after thawing of vitrified oocytes using CPS (75%) and conventional straws (72%) were significantly higher (p<0.05) than that using OPS (68%). The blastocyst formation rates of vitrified embryos using CPS (48.6%) and unfrozen control embryos (56.0%) were significantly higher (p<0.05) than those of conventional straws (43.4%) and OPS (37.7%). The rates of morula formation were also higher to control, CPS, conventional straws and OPS in orderly. These results show that CPS has the advantages of achieving a high survival and safety preservation.
This study was conducted to investigate the effects of equilibration and dilution methods on the survival rate of vitrified IVM-IVF bovine blastocysts. Vitrification solution was composed with 20% glycerol, 20% ethylene glycol, 3/8 M sucrose and 3/8 M dextrose in D-PBS supplemented with 20% FBS (GESD). Embryos were equilibrated in 1 of 3 methods: 3-step (El), 2-step (E2), or 1-step (E3), and after loading into 0.25-ml straws, were plunged into liquid nitrogen. After warming in water bath at 2$0^{\circ}C$, cryoprotectants were diluted in 1 of 3 methods: 1) D1(VS+1/2 M sucrose, 1/2 M sucrose and l/4 M sucrose), 2) D2 (1/2 M sucrose and 1/4 M sucrose), or 3) D3(1/2 M sucrose only). All procedures except warming were conducted at room temperature. Survival and hatching rates of blastocysts and expanded blastocysts following equilibration methods were 50 and 83.6%, and 27.8 and 67.3%, respectively in El, which were significantly higher (P〈0.01) than those of E2 (16.7 and 23.2%, and 7.4 and 12.5%, respectively) and 23 (0 and 3.7%, and 0 and 0%, respectively). Survival and hatching rates of expanded blastocysts were significantly (P〈0.01) higher than those of blastocysts in El. Survival rates of blastocysts and expanded blastocysts following dilution methods were 52% and 80.6% in D2, which were significantly higher (P〈0.05) than those of D1 (29.6 and 48.3%) and D3 (47.2 and 63.8%). Hatching rates of blastocysts were similar in D1, D2 and D3, however in expanded blastocysts, that of D2(61.3%) was significantly higher (P〈0.01) than that of D1(34.5%). Survival rates of expanded blastocysts in D1 and D2, and hatching rates in D2 and D3 were significantly higher(P〈0.01) than those of blastocysts. These results indicate that the viability of vitrified blastocysts was improved by the several steps of equilibration, and by 2-steps dilution after warming, independently of their stage of development. The results also indicated that the expanded blastocysts are more profitable to vitrification than blastocysts.
The present study was undertaken to investigate the effects of cooling rate and equilibration time on the survival, in vitro maturation and development to embryos of frozen-thawed bovine immature oocytes(Germinal Vesicle Stage). The cryoprotectants are used 10% ethylene glycol(EG) as permeating cryoprotectant and 0.05M soc.ose(S) or trehalose(T) as low molecular weight nonpermeating cryoprotectants and 5% ficoll(F) or polyvinylpyrrolidone(PVP) as high molecular weight nonpermeating cryoprotectants. Four freezing solution were uysed in this experiment(EFT: 10% EG + 5% F + 0.05M T, EFS: 10% EG + 5% F + 0.05M S, EPT: 10% EG + 5% P + 0.05M T, EPS: 10% EG + 5% P + 0.05M S). The best equilibration time and freezing solution was 15 min in EPT(83% survival rate of frozen-thawed bovine immature oocytes). When frozen-thawed bovine oocytes were cultured following IVM and IVF, there was no significant difference in cleavage and development rates among the EFT, EFS, EPT and EPS solutions. When 9 blastocysts derived from frozen bovine oocytes were transferred to 6 recipients, two recipients were pregnant. And one was aborted at 45 days of pregnancy and the other had a stillbirth.
In order to investigate the dynamic behavior of weathered granite soils before and after freezing-thawing, cyclic triaxial tests were conducted for the specimens not only with the variation of silt contents within 20% but with plasticity index within 20%. As the results, the dynamic shear modulus of weathered granite soils decreased with increasing silt contents. However, the change in damping ratio was negligible. The influence of freezing-thawing on shear modulus and damping ratio was minimal for the granite soils with variation of silt contents. For the case of the weathered soils with variation of plasticity index, the shear modulus increased with plasticity index within 20%, while the modulus decreased remarkably after freezing-thawing.
This study was carried out to study the viability of oocytes when vitrified at various maturation stages. Bovine cumulus-oocyte complexes were recovered from ovaries at a slaughter and then divided into five groups: control group(unvitrified oocytes), 0 hr. group(composed of oocytes vitrified before the onset of maturation) and 10, 14, and 20 hrs groups(vitrified at 10, 14 and 20 hrs after the onset of maturation, respectively). The oocytes remained vitrified for 24 hrs, and then were thawed in 3$0^{\circ}C$. Survival and cleavage rates were investigated by results of in vitro culture and aceto-orcein staining or FDA test. No difference in the incidence of diploid oocytes was observed among the control, non-vitrified group(3.6%) and oocytes vitrified at 14 hrs(6.7%) or 20 hrs(1.7%). However, more diploid oocytes were detected after vitrification at 0 hr.(26.7%) and 10 hrs(21.7%) post maturation. The survival rate of all vitrified immature oocytes(12.0~38.0%) was low, 48.0% of unvitrified oocytes and oocytes vitrified before maturation or 0~ 10 hrs after the onset of maturation were higher than that of other groups. The overall fertilization and cleavage rates of vitrified immature oocytes (32.3 ~ 64.6% and 4.6 ~ 32.3%) were low, and 55.0% of unvitrified oocytes and the rate of immature oocytes were very higher than that of mature oocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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